四川高效大豆根瘤菌的篩選及初步應(yīng)用研究

周濤，陳遠學(xué)，鄒依霖，李克祥，汪鵬，蔣攀，徐開未

(四川農(nóng)業(yè)大學(xué)資源環(huán)境學(xué)院，四川雅安625014)

四川是我國南方大豆的主產(chǎn)區(qū)，但四川大豆需求量遠大于產(chǎn)量，年消耗量在200萬噸左右，而年產(chǎn)量僅有50萬噸，缺口150萬噸以上［1］。近年來“小麥/玉米/大豆”旱作新三熟種植模式在四川山地丘陵區(qū)得到大力推廣，四川大豆種植面積隨之大幅度增加［2］。作為主要豆科作物，大豆有較強的共生固氮能力。豆科植物與根瘤菌共生固氮量占全球每年生物固氮量的70%，高效根瘤菌劑的使用可以減少化學(xué)氮肥的施用量，節(jié)約生產(chǎn)成本，降低化學(xué)氮肥過量施用造成的環(huán)境污染，且能提高大豆產(chǎn)量與品質(zhì)［3］。土壤中75%以上的土著根瘤菌是低效或無效菌株，且競爭結(jié)瘤能力強，是高效固氮根瘤菌發(fā)揮生物固氮作用的重要限制因素［3－4］。優(yōu)良菌株的篩選一般以菌株的固氮能力、與品種的匹配性和與土著菌的競爭能力作為評價指標(biāo)，并還需在種植區(qū)進行田間試驗確證后方可在生產(chǎn)上推廣應(yīng)用［3－6］。而至目前，四川大豆根瘤菌與大豆主栽品種的匹配性，高效菌株的篩選及田間應(yīng)用的研究還鮮見報道。為此，本研究利用分離自四川33個市縣區(qū)35個采樣點的70株大豆根瘤菌株，采用無氮水培初篩，盆栽、田間試驗復(fù)篩，通過比較供試根瘤菌的結(jié)瘤能力、共生固氮能力，以及田間小區(qū)試驗的大豆產(chǎn)量為主要指標(biāo)，篩選與四川主栽大豆品種“貢選1號”匹配性好的菌株，為該地區(qū)高效大豆根瘤菌劑的研制與應(yīng)用提供科學(xué)依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

大豆品種為“貢選1號”，由四川省自貢市農(nóng)科所選育。供試菌種是從采集自四川省33個市縣35個采樣點的根瘤中分離出的70個根瘤菌株，其基本狀況見表1。

供試土壤：盆栽試驗用土為采自四川雅安草壩鎮(zhèn)青衣江的潮濕雛形土(潮土)，基本養(yǎng)分狀況：pH 5.9，有機質(zhì)含量13.3 g/kg，全氮0.30 g/kg，堿解氮70.2 mg/kg，有效磷 30.2 mg/kg，速效鉀 26.9 mg/kg。大田試驗在四川農(nóng)業(yè)大學(xué)雅安校區(qū)農(nóng)場進行，土壤為紫色濕潤雛形土(紫色大土)，其pH 6.7，有機質(zhì)含量35.4 g/kg、全氮0.70 g/kg、堿解氮95.2 mg/kg、有效磷 31.2 mg/kg、速效鉀 54.4 mg/kg。

1.2 試驗方法

1.2.1 第一次水培篩選 第一次水培實驗：將從四川21個市縣區(qū)23個采樣點分離純化獲得的52個大豆根瘤菌株(見表1)，于2008年12月3日至2009年1月6日用無氮水培法進行大豆回接實驗。對照不接種，每個處理重復(fù)3次。催芽和播種方法按參考文獻［7］進行。溫室培養(yǎng)35 d后收獲，測定植株鮮重、干重和總瘤數(shù)。

1.2.2 盆栽復(fù)篩 2009年5月12日至2009年8月2日，用第一次水培實驗篩選到的6個高效菌株(S8，S22，S36，S46，S55，S65)分別制成 6 種根瘤菌劑，菌劑的生產(chǎn)及質(zhì)量檢測方法同參考文獻［8］，貯存48 d(活菌數(shù)均在5億/g以上)進行盆栽試驗。每盆裝土6 kg，根瘤菌劑采用拌種法，用量為1 g/盆，播種深度2 cm左右，每盆播種4粒，定苗2株，以不接種為對照，共7個處理，重復(fù)3次。盛花期(生育期83 d)測定植株鮮重、干重、株高、總瘤數(shù)，方法同參考文獻［8］。

1.2.3 第二次水培篩選 以從四川另外12個市縣區(qū)12個采樣點分離的18個大豆根瘤菌菌株(見表1)為供試菌，以盆栽復(fù)篩出的2個高效大豆根瘤菌株(S8，S36)作陽性對照，以不接種CK作陰性對照，于2010年4月29日至2010年6月16日進行第二次水培回接篩選實驗。溫室培養(yǎng)49 d收獲，測定植株鮮重、干重和總瘤數(shù)。

1.2.4 大田試驗 盆栽試驗和第二次水培實驗共篩選到5株與四川主栽大豆品種“貢選1號”結(jié)瘤能力和共生固氮能力均強的大豆根瘤菌株(S8，S149，S150，S151，S152)，將這 5 個菌株制成 5 種根瘤菌劑，方法同1.2.2，于2010年6月26日至2010年11月6日進行田間隨機區(qū)組試驗。試驗共設(shè)5個根瘤菌劑處理和1個不接種(對照)處理，小區(qū)面積2 m2，每個處理重復(fù)3次。根瘤菌劑采用拌種法，每小區(qū)用量2.5 g，在貯存期10 d(活菌數(shù)均在5億/g以上)進行。窩距33 cm、行距35 cm，每窩播6粒，定苗3株。盛花期(生育期 80 d)測定植株鮮重、干重、株高、總瘤數(shù)、平均單瘤重;收獲期(生育期134 d)測定飽莢數(shù)、癟莢數(shù)、植株干重(收獲時植株葉子基本掉完，干重僅為植株莖莢干重)、豆粒產(chǎn)量、飽癟比(飽癟比=飽莢數(shù)/癟莢數(shù))，地上部植株樣品用 H2SO4－H2O2消煮聯(lián)合測定氮、磷、鉀含量［9］。

試驗數(shù)據(jù)用Excel 2007和SPSS 17.0進行統(tǒng)計分析。

表1 供試菌株基本狀況Table 1 Rhizobia strains used in this study

2 結(jié)果與分析

2.1 第一次水培篩選結(jié)果分析

第一次無氮水培初篩結(jié)果表明，52個根瘤菌處理全部結(jié)瘤，結(jié)瘤數(shù)為0.7～30.7個/株，CK未結(jié)瘤;植株干重高于 CK(0.47 g/株)的有31個(占59.6%)菌株處理，但顯著或極顯著高于CK的僅有S8、S22、S36、S46、S55、S65 6 個菌株處理，其植株干重為 0.65～0.70 g/株，結(jié)瘤數(shù)為 17.3～28.3個/株;另有2株(S16、S26)的植株鮮重顯著低于CK，其結(jié)瘤數(shù)為1.3～2.7個/株?？梢姡诒敬嗡鄬嶒炛校仓旮芍馗叩奶幚砥浣Y(jié)瘤量中等，結(jié)瘤能力過弱或過強的菌株表現(xiàn)低效或無效，可能是結(jié)瘤能力過弱的菌株，即使固氮能力強但固氮量也有限;相關(guān)研究表明，絕大多數(shù)土著根瘤菌形成的根瘤的固氮效率不高，為大豆生長提供的氮素營養(yǎng)有限［5，6］，若結(jié)瘤能力過強，消耗宿主營養(yǎng)多，故表現(xiàn)為低效或無效。在第一批供試的52株根瘤菌中，僅有11.5%是高效菌株，大多數(shù)(88.5%)是低效、無效菌株。為此初步篩選出與“貢選1號”共生匹配性好的大豆根瘤菌為 S8、S22、S36、S46、S55、S65，這6個菌株作為后續(xù)盆栽復(fù)篩試驗的供試菌株。

2.2 盆栽復(fù)篩結(jié)果分析

2.2.1 接種根瘤菌對大豆結(jié)瘤的影響 將第一次水培篩選獲得的6個高效大豆根瘤菌株(S8、S22、S36、S46、S55、S65)接種“貢選 1 號”進行土壤盆栽試驗，植株結(jié)瘤情況見表2，除S55外，其他5個菌株(S8、S22、S36、S46、S65)處理的結(jié)瘤數(shù)均高于CK，其中S8和S36處理的根瘤數(shù)顯著、極顯著高于CK，分別比 CK增加86.6%和72.2%。說明 S8、S36結(jié)瘤能力強，或可促進土著根瘤菌結(jié)瘤。

2.2.2 接種根瘤菌對大豆植株生長的影響 從表2知，S8、S36處理的植株鮮重、干重均明顯高于CK，S36植株鮮重比CK顯著增加32.1%;S46、S65的植株干重、鮮重均低于CK，但差異不顯著。綜合結(jié)瘤能力和共生固氮能力，S8、S36結(jié)瘤能力最強，且其植株鮮重、干重比CK的增加量最大，說明在有土著根瘤菌存在的情況下，S8、S36與“貢選1號”的共生匹配性最好。

表2 接種根瘤菌對大豆生長的影響(盆栽試驗)Table 2 Effect of rhizobia inoculation on soybean growth(pot experiment)

2.3 第二次水培篩選結(jié)果與分析

將第二次分離純化得到的18株根瘤菌(表1)，以盆栽復(fù)篩得到的S8、S36和不接種CK分別作為陽性和陰性對照，用水培法回接“貢選1號”，從中篩選高效菌株。18個菌株全部結(jié)瘤，植株結(jié)瘤數(shù)為26.3～68.0個/株。所有菌株處理的植株干重均高于CK，其中顯著或極顯著高于CK(0.91 g/株)的有6個菌株(S149、S150、S151、S152、S159、S163)處理，其植株干重為 1.15～1.36 g/株。且 S149、S150、S151、S152 4個處理的植株干重高于陽性對照S8(1.28 g/株)、S36(1.23 g/株)，但差異未達顯著水平;其植株結(jié)瘤數(shù)為30.0～39.0個/株。植株干重和單瘤重的相關(guān)系數(shù)(r=0.381＊＊)達極顯著水平，可見單瘤重對植株的固氮能力影響較大。

兩次水培實驗均表明結(jié)瘤數(shù)太少或太多的菌株是中、低效菌株，而共生固氮效果顯著的菌株其結(jié)瘤量中等。從第二次水培實驗中篩選到的 S152、S151、S150、S149 4個菌株是與“貢選1號”大豆品種共生匹配性好的菌株。

2.4 田間試驗結(jié)果分析

綜合前期篩選結(jié)果，選擇5個菌株S152、S151、S150、S149、S8進行田間隨機區(qū)組試驗作進一步篩選應(yīng)用。

2.4.1 接種根瘤菌對大豆植株生長的影響 接種不同根瘤菌對盛花期大豆植株生長影響較大。接種S152、S151、S150的植株株高、鮮重和干重均高于CK，其干重分別比 CK增加11.8%、8.1%、6.6%，但與CK的差異未達顯著水平。S8和S149的盛花期大豆的株高、鮮重和干重均低于CK。5個接種處理的大豆根瘤數(shù)均未高于CK(表3)。但從表3可以看出，根瘤菌處理的收獲期植株干重均高于CK，且S152最高。植株莖氮、磷、鉀含量均高于CK。接種S152的植株氮、磷、鉀含量最高，比CK分別增加26.9%、22.2%、38.6%。說明接種根瘤菌不僅能促進寄主植物對氮的吸收，還能促進對磷、鉀的吸收，這與徐開未等［8，10］的研究結(jié)果一致。

2.4.2 接種根瘤菌對大豆產(chǎn)量的影響 接種不同根瘤菌對大豆產(chǎn)量的影響存在顯著差異。表4顯示，除S151外，其他菌劑處理的大豆產(chǎn)量均高于CK。S152、S150處理的大豆產(chǎn)量比CK高33.5%、18.5%，達顯著水平，且顯著高于S8、S149、S151處理。接種處理的植株結(jié)莢數(shù)均高于CK，但差異不顯著;S152、S150以結(jié)二粒莢為主，S152飽莢數(shù)極顯著高于CK，癟莢數(shù)低于其他5個處理，S152、S150飽癟比(飽莢數(shù)和癟莢數(shù)之比)分別為3.79、3.05，明顯高于其他接種菌株和CK;以結(jié)單粒莢為主的S151、S149結(jié)莢量最大，飽莢數(shù)、癟莢數(shù)均明顯高于CK，但產(chǎn)量與CK間的差異不顯著。飽癟比與產(chǎn)量相關(guān)性達顯著水平(r=0.548*)?？梢?，高效根瘤菌的增產(chǎn)主要是通過增加大豆的二粒飽莢數(shù)，提高飽莢率來實現(xiàn)的。

表3 接種根瘤菌對大豆生長及莖氮、磷、鉀含量的影響Table 3 Effects of rhizobia inoculation on soybean growth and total N，P and K contents in plant stems

表4 接種根瘤菌對收獲期大豆產(chǎn)量的影響Table 4 Effects of rhizobia inoculation on yield of the soybean at the harvest stage

綜上，從接種根瘤菌對供試大豆品種的生長性狀及產(chǎn)量的影響來看，S152和S150是與四川主栽大豆品種“貢選1號”和供試土壤匹配性好的菌株，且S152最佳。

3 討論

高效根瘤菌的篩選工作繁瑣又復(fù)雜。首先用大量菌株針對作物品種以無菌基質(zhì)(無氮水培或蛭石)在溫室中篩選一批共生效果高的菌株;然后以種植區(qū)土壤為基質(zhì)，篩選出與土著菌競爭結(jié)瘤能力強的菌株;最后在種植地區(qū)進行田間小區(qū)試驗確證后方能推廣應(yīng)用接種［3］。土壤理化性質(zhì)、肥力水平、土著根瘤菌的數(shù)量等因素都直接影響根瘤菌的競爭結(jié)瘤能力［11－12］，氮素水平較低的土壤能夠提高接種劑的成功率［13］。本研究正是應(yīng)用無氮水培、盆栽和田間試驗篩選菌株，而在不同試驗條件下有的菌株共生有效性表現(xiàn)不一致。如S8在兩次水培實驗和盆栽試驗中均表現(xiàn)較好，說明S8與供試大豆品種的共生匹配性好，但在田間試驗中對大豆的增產(chǎn)效果不明顯，可能與土著根瘤菌的競爭結(jié)瘤能力有關(guān)，可見，高效菌株的篩選必須要在種植區(qū)進行田間試驗確證后方能推廣應(yīng)用。在肥力水平相差較大的不同土壤中可能競爭結(jié)瘤能力差別較大。在第二次水培實驗中，結(jié)瘤能力較強且植株干重極顯著高于對照的5個菌株，其植株干重表現(xiàn)為S151＞S152＞S149＞S150=S8＞CK，說明這些菌株與四川大豆主栽品種“貢選1號”具有良好的親和性，但在大田試驗中這5個菌株共生固氮能力有明顯的差異，S152、S150的產(chǎn)量顯著高于對照，而S151的產(chǎn)量還略低于對照，可能是因為與供試大豆共生匹配性好的這5個菌株中，S152和S150比供試土壤土著根瘤菌的競爭能力強，而S151最差，這需要后續(xù)的競爭結(jié)瘤試驗加以證實。菌株的競爭結(jié)瘤能力是接種成功的關(guān)鍵［3，5，11］，為此，本研究也將繼續(xù)對田間試驗篩選到的高效菌株進行分子標(biāo)記用以檢測其占瘤率，考察接種菌與四川大豆種植土壤的適應(yīng)性和與土著根瘤菌的競爭結(jié)瘤能力，以期獲得適應(yīng)四川大豆種植區(qū)土壤、與四川主栽大豆品種“貢選1號”匹配性最佳的高效菌株。

在考察根瘤菌與宿主的共生固氮效果時，經(jīng)常用盛花期植株地上部分鮮重、干重等指標(biāo)評價菌株的共生有效性［8，10］。本試驗所得高效菌株在水培實驗、盆栽試驗中盛花期植株干重、鮮重均比對照明顯增加;大田試驗中盛花期植株鮮重、干重與對照相當(dāng)或略有增加，可能是因為試驗田在種植雙胞蘑菇后土壤較肥沃，高效根瘤菌的共生固氮效果在生長前期還沒顯著體現(xiàn)出來。而到生殖生長期，高效菌株的固氮效率得以顯著體現(xiàn)：接種S152和S150的大豆產(chǎn)量均顯著高于對照和其他三個接種菌株S151、S149、S8。眾所周知，根瘤菌的共生固氮能力，在含氮量越低的土壤中表現(xiàn)得越明顯，而本研究篩選到的S152和S150兩個菌株在較肥沃土壤中接種“貢選1號”，其產(chǎn)量仍與對照的差異達顯著水平，說明這兩個菌株在四川大豆生產(chǎn)中有良好的應(yīng)用前景。而S151、S149、S8雖在水培試驗中表現(xiàn)為高效菌株，但在田間試驗中表現(xiàn)無效或低效，可能也與該土壤的肥力水平和土著根瘤菌的競爭結(jié)瘤能力的影響有關(guān)。

植株氮、磷、鉀的吸收是產(chǎn)量形成的基礎(chǔ)，大豆是需鉀量較高的作物［14］。接種根瘤菌能為植株提供氮素，同時促進磷、鉀的吸收。焦如珍等［15］認(rèn)為根瘤菌有溶磷能力，且同一屬種的根瘤菌不同菌株之間溶磷能力相差巨大。張慧等［16］用根瘤菌接種大葉相思幼苗的研究表明，6個供試菌株的溶鉀效果均較明顯，但僅有1個菌株有較好的溶磷能力。而本研究中，兩高效菌株S152、S150接種的植株氮、磷、鉀含量明顯高于對照，且全鉀含量的增幅最大，分別比對照增加38.5%、40.7%，而田間試驗表現(xiàn)無效的菌株S151接種植株的含鉀量還略低于對照，可能是這兩個高效根瘤菌(S152、S150)有一定的溶鉀溶磷能力，且高效菌株的共生固氮與鉀的協(xié)同作用好。這兩株高效菌的溶鉀溶磷能力有待進一步研究和開發(fā)利用。

紫色土是四川最重要的旱耕地，潮土也是較重要的旱耕地之一［17］，四川大豆種植區(qū)土壤主要是紫色土和潮土等，若能篩選到與這兩種未滅菌的自然土壤適應(yīng)性均好的高效菌株，在四川應(yīng)有較好的應(yīng)用潛力。本研究從四川33個市縣35個采樣點分離獲得的70個大豆根瘤菌株中通過無氮水培、盆栽(潮土)和大田小區(qū)試驗(紫色土)篩選出了與四川大豆主栽品種“貢選1號”匹配性最佳的菌株S152和S150，這為四川大豆高效根瘤菌的進一步篩選鑒定，高效根瘤菌劑的研制與應(yīng)用奠定了良好基礎(chǔ)，具有重要的生產(chǎn)應(yīng)用價值。

［1］雍太文，楊文鈺，任萬軍，等．發(fā)展套作大豆促進四川大豆產(chǎn)業(yè)發(fā)展［J］．作物雜志，2007，6：5－8.

Yong T W，Yang W Y，Ren W Jet al．Promotion of soybean industry by popularization of relay-planting soybean in Sichuan Province［J］．Crops，2007，6：5 －8.

［2］楊文鈺，雍太文，任萬軍，等．發(fā)展套作大豆，振興大豆產(chǎn)業(yè)［J］．大豆科學(xué)，2008，27(1)：1－7.

Yang W Y，Yong T W，Ren W Jet al．Develop relay-cropping soybean，revitalize soybean industry ［J］．Soybean Sci．，2008，27(1)：1－7.

［3］李俊，沈德龍，林先貴．農(nóng)業(yè)微生物研究與產(chǎn)業(yè)化進展［M］．北京：科學(xué)出版社，2011.289－292.

Li J，Shen D L，Lin X G．Agricultural microbiology research and industrialized progress［M］．Beijing：Science Press，2011.289－292.

［4］馬中雨，李俊，張永芳，等．大豆根瘤菌與大豆品種共生匹配性研究［J］．大豆科學(xué)，2008，27(2)：221－227.

Ma Z Y，Li J，Zhang Y Fet al．Symbiotic matching between soybeanrhizobiumand soybean cultivars［J］．Soybean Sci．，2008，27(2)：221－227.

［5］李濤，關(guān)大偉，李俊，等．黃淮海地區(qū)優(yōu)良大豆根瘤菌株的篩選與接種方式研究［J］．大豆科學(xué)，2010，29(4)：645－649.

Li T，Guan D W，Li Jet al．Screening of superior soybean rhizobial strains and approach to inoculation methods for region of HuangHuaiHai［J］．Soybean Sci．，2010，29(4)：645 －649.

［6］Marta A，Dulce N R – N，F(xiàn)rancisco J T．Soybean inoculation：Dose N fertilizer supplementation and rhizobia persistence in soil［J］．Field Crops Res．，2009，113：352 －356.

［7］徐開未，張小平，陳遠學(xué)，等．GUS基因標(biāo)記法對慢生花生根瘤菌競爭結(jié)瘤和接種效果的研究［J］．中國土壤與肥料，2006，(3)：51－53.

Xu K W，Zhang X P，Chen Y Xet al．Studies on competitive nodulation and efficiency ofbradyrhizobiumsp．(Arachis)using GUS marker gene［J］．China Soils Fert．，2006，(3)：51 －53.

［8］徐開未，陳遠學(xué)，張小平，等．Mo與花生根瘤菌的復(fù)合菌劑對盛花期花生生長的影響［J］．水土保持學(xué)報，2009，23(2)：198－201.

Xu K W，Chen Y X，Zhang X Pet al．Effects of combined inoculant with peanut bradyrhizobium and molybdate on peanut growth in florescence stage［J］．J．Soil Water Conserv．，2009，23(2)：198－201.

［9］鮑士旦．土壤農(nóng)化分析(第三版)［M］．北京：中國農(nóng)業(yè)出版社，2000．263－270.

Bao S D．Soil and agricultural chemistry analysis(Third edition)［M］．Beijing：China Agriculture Press，2000．263－270.

［10］徐開未，張小平，陳遠學(xué)．“根瘤菌+Mo”菌劑和AM菌劑對花生生長和產(chǎn)量的影響［J］．中國油料作物學(xué)報，2009，31(2)：228－232.

Xu K W，Zhang X P，Chen Y X ．Effects of co-inoculation of bradyrhizobium with molybdate and arbuscular mycorrhizal fungi on growth and yield of peanut plants［J］．Chin．J．Oil Crop Sci．，2009，31(2)：228 －232.

［11］何慶元，胡艷，玉永雄．生態(tài)環(huán)境對根瘤菌競爭結(jié)瘤影響的研究進展［J］．大豆科學(xué)，2004，23(1)：66－70.

He Q Y，Hu Y，Yu Y X．Advance the study of the nodulation competition of rhizobium in environment［J］．Soybean Sci．，2004，23(1)：66－70.

［12］劉曉云，郭振國，李喬仙，等．南苜蓿高效共生根瘤菌土壤的篩選［J］．生態(tài)學(xué)報，2011，31(14)：4034－4041.

Liu X Y，Guo Z G，Li Q Xet al．Screening of highly-effective rhizobial strains on alfalfa(Medicago polymorpha)in soil［J］．Acta Ecol．Sin．，2011，31(14)：4034 －4041.

［13］Bushby H V A．Colonization of rhizospheres by bradyrhizobim sp．in relation to strain persistence and nodulation of some pasture legumes［J］．Soil Biol．Biochem．，1993，25(5)：597－605.

［14］金曉梅，СИНеГОВ ская ВТ，趙念力．根瘤菌、微肥和作物生長調(diào)節(jié)劑對大豆氮磷鉀積累和產(chǎn)量的影響［J］．大豆科學(xué)，2009，28(4)：751－754.

Jin X M，Sinegovskaya V T，Zhao N L．Influence of rhizobium，trace fertilizer and crop growth regulators on nitrogen，phosphorous，potassium accumulation and yield of soybean ［J］．Soybean Sci．，2009，28(4)：751 －754.

［15］焦如珍，彭玉紅．海南島熱帶木本豆科植物根瘤菌的溶磷作用［J］．林業(yè)科學(xué)，2010，46(10)：1－5.

Jiao R Z，Peng Y H．Phosphate solubilization by rhizobia isolated from woody legume plants in Hainan island ［J］．Sci．Silv．Sin．，2010，46(10)：1－5.

［16］張慧，余永昌，黃寶靈，等．接種根瘤菌對直桿型大葉相思幼苗生長及土壤營養(yǎng)元素含量的影響［J］．東北林業(yè)大學(xué)學(xué)報，2005，33(5)：47－48，50.

Zhang H，Yu Y C;Huang B Let al．Effects of rhizobia inoculation on the growth of straight-stemAcacia auriculaeformisseedlings and the contents of soil nutritive elements［J］．J．Northeast For．Univ．，2005，33(5)：47 －48，50.

［17］劉世全，張明．區(qū)域土壤地理［M］．成都：四川大學(xué)出版社，1996．220－224.

Liu S Q，Zhang M．Regional soil geography［M］．Chengdu：Sichuan University Press，1996．220 －224.