張紅艷,王春玉,姚 遠,李彥姝,王 迪,李 豐
(1.中國醫科大學細胞生物學教研室 衛生部細胞生物學重點實驗室 教育部醫學細胞生物學重點實驗室 遼寧 沈陽 110001;2.遼寧省人民醫院消化內科,遼寧 沈陽 110016)
轉化生長因子β(TGF-β)超家族是一類作用繁多的細胞因子,參與細胞增殖、分化、細胞外基質改建及胚胎發育等多種細胞活動,并在多種疾病尤其是腫瘤、纖維變性類疾病及自身免疫性疾病的發病中扮演著重要角色[1-2]。TGF-β超家族包括TGF-β、骨形態發生蛋白(BMP)和活化素(activins)等亞類,可以通過激活多個下游信號通路行使其功能,其中Smads信號通路被認為是最關鍵的。Smads蛋白家族包括8個成員,分為R-Smads,Co-Smad和I-Smads 3類[3]。R-Smads包括Smad1/2/3/5/8,能夠與受體結合并被受體磷酸化而激活;Co-Smad指Smad4,能夠與活化了的R-Smads結合形成復合體,該復合體可進核結合DNA并與多種轉錄輔因子共同作用調控基因轉錄;I-Smads包括Smad6/7,作為R-Smads的競爭性抑制子,負向調控TGF-β通路。TGF-β信號通路受精密的調控,不同的上游配體激活不同的下游分子。TGF-β1屬于TGF-β超家族的TGF-β亞類,Smad2/3/4參與該信號通路。Smad2/3/4在細胞質中與多種蛋白相互作用,如SARA[4]和PDK1[5]等。作為TGF-β1通路的重要下游蛋白,Smad2/3/4與某些相互作用蛋白的結合受TGF-β1調控。在TGF-β1作用下,PDK1與Smad2/3/4的結合減弱[5];而Smad2與SARA的結合依賴于TGF-β1刺激[4]。本研究旨在利用基因重組技術構建pcDNA3.1myc-HisA Smad2/3/4真核表達質粒,使用標簽抗體建檢測Smad2/3/4在細胞中的表達,同時使用標簽抗體進行免疫沉淀,質譜分析Smad2/3/4新的相互作用蛋白,進一步探索其生物學功能及在TGF-β信號通路中的功能。
1.1 菌株、細胞和質粒大腸桿菌DH5α感受態為本實驗室制備;HEK293細胞為本實驗室保存;pcDNA3.1myc-HisA載體購自Invitrogen公司,pcDNA3.1-Smad2/3受贈于Sabelle van Seuningen教授,pGEX2T-Smad4受贈于Koichi Shimada教授。
1.2 試 劑PyrobestTMDNA polymerase、dNTP、限制性核酸內切酶EcoRⅠ和KpnⅠ均購自大連 TaKaRa公司;質粒提取及DNA電泳凝膠回收試劑盒購自Promega公司;DNA 和蛋白 marker購自GenScript公司;T4 DNA連接酶購自NEB公司;Myc抗體購自Santa公司;HRP標記的羊抗鼠IgG購自北京中杉金橋公司;引物合成和DNA測序測定由Invitrogen公司完成;Lipofectamine 2000購自Invitrogen公司;DMEM及胎牛血清購自Gibco公司;ECL發光試劑盒購自GE Healthcare 公司;其他試劑均為國產分析純。
1.3 Smad2/3/4全長基因擴增設計Smad2/3/4擴增的PCR引物,并在引物中加入EcoRⅠ和KpnⅠ2個限制性酶切位點。引物序列見表1。以質粒為模板,利用pyrobest酶,通過PCR擴增,獲得Smad2/3/4全長編碼序列。

表1 引物序列及酶切位點
1.4 pcDNA3.1myc-HisA-Smad2/3/4表達載體的構建將pcDNA3.1myc-HisA載體和Smad2/3/4 PCR片段用EcoRⅠ和KpnⅠ雙酶切后,酶切產物經瓊脂糖凝膠電泳分離,凝膠回收純化產物。回收產物摩爾比按照1∶5(載體∶片段 )比例,利用T4 DNA連接酶,將2個片段常溫連接2 h,然后16℃連接過夜,取5 μL連接產物轉化到DH5α大腸桿菌感受態細胞中,涂于LB/Amp平板,37℃培養過夜。挑取菌落,接種于含氨芐西林的LB培養基中,37℃振蕩過夜。一部分菌液用來保存菌種,另一部分用堿裂解法提取質粒DNA,用EcoRⅠ和KpnⅠ雙酶切鑒定外源基因的插入,質粒DNA送Invitrogen公司進行測序分析。
1.5 pcDNA3.1myc-HisA-Smad2/3/4瞬時轉染HEK293細胞系HEK293細胞用10%胎牛血清的高糖DMEM高糖培養基培養,細胞鋪于6孔板至70% ~ 80%融合,按照Invitrogen公司提供的Lipofectamine 2000轉染6孔板的說明書進行操作。
1.6 蛋白質提取與Western blotting鑒定轉染24 h后,棄掉培養基,用PBS清洗2次。在細胞中加入60 μL含有蛋白酶抑制劑的RIPA裂解液,用橡皮刮刀將細胞緩慢刮下。收集所有液體至新的離心管中,冰上放置10 min,裂解細胞。13 000 g、4℃離心30 min,將上清轉到新的離心管中,取上清5 μL,利用考馬斯亮藍G250染液和0.5 g·L-1BSA,繪制標準曲線,測量595 nm的吸光度(A)值,以結果做直線回歸方程:Y = aX + b。測量蛋白樣品與對照在595 nm的A值,差值代入標準曲線方程,求出相應蛋白濃度。
將蛋白定量后,取80 μg總蛋白經10% SDS-PAGE凝膠分離,4℃過夜,40 V恒壓轉移到PVDF膜上,5% 脫脂奶粉封閉1 h。用Flag抗體(1∶1 000稀釋)室溫孵育2 h,然后TBST洗膜3次,每次10 min。再用辣根過氧化物酶標記的羊抗鼠(1∶5 000稀釋)二抗孵育2 h,然后TBST洗膜3次,每次10 min。ECL顯影,Western blotting成像系統采集圖像。
2.1 PCR擴增Smad2/3/4基因全長以pcDNA3.1-Smad2/3和pGEX2T-Smad4質粒為模板,特異性引物進行PCR擴增Smad2/3/4基因全長。擴增條件為95℃、5 min預變性;95℃、1 min,55℃、1 min,72℃、1 min,進行30個循環;72℃、10 min,溫度降至4℃。1%瓊脂糖凝膠電泳,溴化乙啶染色后,在紫外燈下觀察結果。見圖1。
2.2 重組質粒pcDNA3.1myc-HisA-Smad2/3/4的構建及鑒定每個質粒挑取2個克隆,將重組質粒pcDNA3.1myc-HisA-Smad2/3/4用EcoRⅠ和KpnⅠ雙酶切后,圖2中1和2泳道為Smad2,得到5 400和1 401 bp 的2條帶;3和4泳道為Smad3,得到5 400和1 275 bp的2條帶;5和6泳道為Smad4,5泳道得到5 400和1 656 bp的2條帶,6泳道未得到目的片段。重組質粒的酶切鑒定表明質粒構建成功,經過測序分析,外源系列在NCBI-Blast比對結果與Smad2/3/4編碼序列一致。

圖1 Smad2/3/4基因PCR產物的擴增

圖2 重組質粒pcDNA3.1myc-HisA-Smad2/3/4酶切分析
2.3 Western blotting檢測蛋白表達分別將pcDNA3.1myc-HisA空載和pcDNA3.1myc-HisA-Smad2/3/4轉染HEK293細胞,24 h后收集細胞,提取蛋白,經SDS-PAGE凝膠電泳,Western blotting檢測蛋白表達,轉染pcDNA3.1myc-HisA-Smad2/3/4,有一明顯條帶(圖3),空載體對照組未出現反應條帶,結果表明構建的真核表達質粒在HEK293細胞中表達。
TGF-β對上皮細胞生長有抑制作用。在腫瘤早期,可以抑制腫瘤的發生。但是,在腫瘤晚期,TGF-β1的生長抑制作用被限制,并通過引起細胞的上皮向間質轉化促進癌細胞遷移和侵襲[6]。一些腫瘤中存在TGF-β信號通路蛋白(如TβRⅡ,Smad4)的突變,從而逃避TGF-β引起的生長抑制。利用細胞系進行研究發現:僅40%的胃癌細胞中存在TGF-β信號通路蛋白的突變,但在外源轉入突變蛋白對應的野生型蛋白后,其中75%的細胞仍然不能恢復對TGF-β的反應性,這提示胃癌細胞內存在重要的TGF-β通路抑制因子。有學者[7-8]發現一些TGF-β通路的抑制因子,如在骨髓瘤中CDK2通過磷酸化Smad2的MH1區破壞TGF-β引起的轉錄調節功能;Cam kinaseⅡ通過磷酸化Smad2/3/4抑制TGF-β/Smads的轉錄調節功能;PKB通過結合Smad3抑制其轉錄活性及核轉位。但是,還可能存在未被發現的TGF-β通路抑制因子。

圖3 Western blotting檢測pcDNA3.1myc-HisA-Smad2/3/4 融合蛋白在HEK293細胞中的表達
經典的Smads信號通路是TGF-β作為配體與相應膜受體結合,進而激活相應下游信號蛋白Smads,行使對應的生物學功能,形成一個嚴格而精密的信號網絡。TGF-β1屬于TGF 超家族的TGF 亞類,能夠結合并激活細胞膜上的TGF-β受體Ⅱ(TβRⅡ),活化的TβRⅡ進而結合并磷酸化同樣位于細胞膜上的TGF-β受體Ⅰ(TβRⅠ,AKL5)。具有活性的受體復合體形成后,細胞質內的Smad2/3 C末端的SSXS序列被TβRⅠ磷酸化,與Smad4形成復合體,進入細胞核并行使基因轉錄調控功能[9]。
最近有研究表明:雖然經典的Smads作用是由R-Smads與Smad4形成復合體來完成,但也存在不依賴Smad4的情況。在角質細胞中,IKKalpha能夠結合Smad2/3并促進Mad1、Mad2等介導TGF-β引起的細胞生長抑制基因的表達,這種促進不依賴于Smad4[10]。在造血干細胞中,核蛋白轉錄中介因子1γ(TIF1γ)能夠與Smad4競爭和Smad2/3的結合,介導TGF-β/Smads引起的不同作用:Smad2/3-TIF1γ介導細胞分化,而Smad2/3-Smad4介導細胞的生長抑制[11]。
目前,腫瘤已經成為威脅人類健康的重要疾病,其發病率逐年上升,但其發生發展的分子機制仍未完全闡明,TGF-β/ Smads 信號轉導通路在機體組織中生物學作用廣泛,與腫瘤的發生發展密切相關。因此,本實驗利用DNA重組技術將Smad2/3/4重組到pcDNA3.1myc-HisA載體中,通過酶切和測序保證擴增片段的正確性,并采用Western blotting方法證實融合蛋白的表達。融合蛋白中含有myc標簽,可用于目標蛋白的純化和檢測。
綜上所述,本實驗成功構建pcDNA3.1myc-HisA- Smad2/3/4真核表達質粒,為進一步研究其在信號轉導通路中的作用提供了實驗基礎。
[參考文獻]
[1]Lin X,Chen Y,Meng A,et al.Termination of TGF-beta superfamily signaling through SMAD dephosphorylation--a functional genomic view [J].J Genet Genomics,2007,34(1): 1-9.
[2]Wrighton KH,Lin X,Feng XH.Phospho-control of TGF-beta superfamily signaling [J].Cell Res,2009,19(1): 8-20.
[3]Brown KA,Pietenpol JA,Moses HL.A tale of two proteins: differential roles and regulation of Smad2 and Smad3 in TGF-b signaling [J].J Cell Biochem,2007,101(1):9-33.
[4]Runyan CE,Schnaper HW,Poncelet AC.The role of internalization in transforming growth factor beta1-induced Smad2 association with Smad anchor for receptor activation (SARA) and Smad2-dependent signaling in human mesangial cells [J].J Biol Chem,2005,280(9): 8300-8308.
[5]Seong HA,Jung H,Kim KT,et al.3-phosphoinositide-dependent PDK1 negatively regulates transforming growth factor-beta-induced signaling in a kinase-dependent manner through physical interaction with Smad proteins [J].J Biol Chem,2007,282(16): 12272-12289.
[6]Wakefield LM,Roberts AB.TGF-beta signaling: positive and negative effects on tumorigenesis [J].Curr Opin Genet Dev,2002,12(1): 22-29.
[7]Baughn LB,Di Liberto M,Niesvizky R,et al.CDK2 phosphorylation of Smad2 disrupts TGF-beta transcriptional regulation in resistant primary bone marrow myeloma cells [J].J Immunol,2009,182(4): 1810-1817.
[8]Remy I,Montmarquette A,Michnick SW.PKB/Akt modulates TGF-beta signalling through a direct interaction with Smad3 [J].Nat Cell Biol,2004,6(4): 358-365.
[9]Schmierer B,Hill CS.TGFbeta-SMAD signal transduction: molecular specificity and functional flexibility [J].Nat Rev Mol Cell Biol,2007,8(12): 970-982.
[10]Descargues P,Sil AK,Sano Y,et al.IKKalpha is a critical coregulator of a Smad4-independent TGFbeta-Smad2/3 signaling pathway that controls keratinocyte differentiation [J].Proc Natl Acad Sci USA,2008,105(7): 2487-2492.
[11]He W,Dorn DC,Erdjument-Bromage H,et al.Hematopoiesis controlled by distinct TIF1gamma and Smad4 branches of the TGFbeta pathway [J].Cell,2006,125(5): 929-941.