王艷艷,鄧啟華
(北京燕京啤酒股份有限公司技術(shù)中心,北京 101300)
納豆激酶(Nattokinase)是1987年由日本學(xué)者從納豆中提取的一種絲氨酸蛋白酶,該酶不僅具有明顯的溶栓能力,還可以激活體內(nèi)的纖溶酶原,從而增加內(nèi)源性纖溶酶的量與作用[1-3]。目前臨床上使用的治療心腦血管栓塞的藥品如尿激酶(urokinase,UK),鏈激酶(streptokinase,SK),組織型纖溶酶原激活物(tissue-type plasminogenactivator,tpA)等均在不同程度上存在一定的缺陷(毒性較強(qiáng),副作用較大;體內(nèi)半衰期短,難以發(fā)揮藥效;來(lái)源緊缺,價(jià)格昂貴),而納豆激酶有望彌補(bǔ)這些缺陷,成為新一代的溶栓藥物[4-8]。納豆激酶是納豆芽孢桿菌(Bacillus subtilisNatto)的代謝產(chǎn)物,納豆激酶的生產(chǎn)普遍采用固體發(fā)酵大豆制備納豆,然后從納豆中分離純化的方法得到,而在固體發(fā)酵過(guò)程中染菌,散熱問(wèn)題一直未能得到很好的解決[9-10]。相對(duì)而言,納豆激酶液體發(fā)酵生產(chǎn)工藝簡(jiǎn)單,成本低廉,因此進(jìn)行納豆激酶液體發(fā)酵工藝的研究是非常有必要的,而對(duì)納豆激酶液體發(fā)酵條件進(jìn)行全面優(yōu)化是這一研究工作的關(guān)鍵所在。
本實(shí)驗(yàn)對(duì)納豆激酶的液體發(fā)酵條件進(jìn)行了系統(tǒng)研究,通過(guò)正交試驗(yàn)確定最佳發(fā)酵培養(yǎng)基,并運(yùn)用響應(yīng)面分析法對(duì)發(fā)酵條件進(jìn)行了優(yōu)化,利用Box-Benhnken的中心組合試驗(yàn)設(shè)計(jì),對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行響應(yīng)面分析[11-12],并對(duì)擬合數(shù)學(xué)模型進(jìn)行了較為詳細(xì)的描述,最終對(duì)納豆激酶液體發(fā)酵工藝進(jìn)行了優(yōu)化。
1.1.1 菌種
納豆芽孢桿菌來(lái)自于燕京中發(fā)生物技術(shù)有限公司。
1.1.2 試劑
蚓激酶:中國(guó)藥品生物制品檢定所;凝血酶、纖維蛋白原:中國(guó)食品藥品檢定研究院;瓊脂糖、葡萄糖、木糖、玉米淀粉、大豆蛋白胨、動(dòng)物蛋白胨、KH2PO4、K2HPO4、CaCl2及MgSO4·7H2O等均為國(guó)產(chǎn)試劑。
1.1.3 培養(yǎng)基
斜面培養(yǎng)基:平板計(jì)數(shù)培養(yǎng)基。
種子培養(yǎng)基:營(yíng)養(yǎng)肉湯培養(yǎng)基。
基礎(chǔ)培養(yǎng)基:葡萄糖2%,大豆蛋白胨4%,KH2PO40.1%,K2HPO40.1%,CaCl20.02%,MgSO4·7H2O 0.05%,pH 7.0~7.2。
培養(yǎng)條件:從斜面上挑取一環(huán)菌苔接入種子培養(yǎng)基中,37℃、150r/min振蕩培養(yǎng)至對(duì)數(shù)期,隨后將種子液按一定比例接種于裝有100mL培養(yǎng)基的500mL錐形瓶中,培養(yǎng)48h結(jié)束后離心取上清液測(cè)定酶活。
ZHWY-111C型恒溫培養(yǎng)振蕩器:上海智誠(chéng)分析儀器制造有限公司;5804R型離心機(jī):德國(guó)Eppendorf公司;LDZH-150KBS立式壓力滅菌器:上海申安醫(yī)療器械廠;SPECORD205型紫外可見(jiàn)分光光度計(jì):德國(guó)Anylytikjena公司;8417型pH計(jì):意大利Hanna公司;BX-240H電子天平:日本島津公司;LRH-250生化培養(yǎng)箱:日本SANYO公司。
1.3.1 繪制納豆芽孢桿菌的生長(zhǎng)曲線
將培養(yǎng)好的種子液接入基礎(chǔ)培養(yǎng)基中,37℃、150r/min振蕩培養(yǎng),每隔2h取樣,以未接種的培養(yǎng)基為空白,測(cè)波長(zhǎng)600nm處的吸光度值(OD600nm),繪制納豆芽孢桿菌的生長(zhǎng)曲線,根據(jù)納豆芽孢桿菌的對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期確定最適種齡。
1.3.2 發(fā)酵培養(yǎng)基配方的優(yōu)化
發(fā)酵培養(yǎng)基的碳氮源及碳氮比優(yōu)化:通過(guò)單因素試驗(yàn)對(duì)基礎(chǔ)培養(yǎng)基的碳、氮源及碳氮比進(jìn)行了初步研究,確定出產(chǎn)酶量比較高的3種碳源、氮源及碳氮比。在此基礎(chǔ)上采用L9(34)正交試驗(yàn)法對(duì)碳源、氮源及碳氮比3個(gè)影響因素進(jìn)一步研究,最終確定出發(fā)酵培養(yǎng)基的最佳碳氮源配方。
發(fā)酵培養(yǎng)基的無(wú)機(jī)鹽濃度優(yōu)化:采用L9(34)正交試驗(yàn)對(duì)基礎(chǔ)培養(yǎng)基的無(wú)機(jī)鹽(MgSO4,CaCl2及K2HPO4/KH2PO4)的濃度進(jìn)行優(yōu)化,確定出發(fā)酵培養(yǎng)基的最佳無(wú)機(jī)鹽組成。
1.3.3 響應(yīng)面分析法確定最佳液體發(fā)酵條件
以優(yōu)化后的發(fā)酵培養(yǎng)基培養(yǎng)納豆芽孢桿菌,通過(guò)單因素試驗(yàn)對(duì)發(fā)酵的條件(接種量,裝液量,發(fā)酵溫度,初始pH值)進(jìn)行初步分析,隨后依據(jù)Box-Benhnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)對(duì)發(fā)酵條件進(jìn)行3因素3水平的響應(yīng)面分析試驗(yàn),包括12個(gè)析因試驗(yàn)和3個(gè)中心試驗(yàn)。利用統(tǒng)計(jì)軟件Minitab15[13-14]對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,確定出最佳發(fā)酵條件。
1.3.4 納豆激酶活力測(cè)定
納豆激酶的酶活采用瓊脂糖纖維蛋白平板法[15]進(jìn)行測(cè)定,以蚓激酶作酶活的標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.3.5 酶活定義酶活定義為:在37℃,pH 7.8的條件下,1min內(nèi)溶解1μmol纖維蛋白所需的酶量為1U。
從發(fā)酵開(kāi)始連續(xù)測(cè)定OD值大約30h,最終得到的納豆芽孢桿菌的生長(zhǎng)曲線見(jiàn)圖1。
由圖1可知,納豆芽孢桿菌在0~6h時(shí)為停滯期,6h后開(kāi)始進(jìn)入對(duì)數(shù)期,大約至24h時(shí)對(duì)數(shù)期結(jié)束。由于納豆芽孢桿菌在對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期時(shí)菌體生命力極為旺盛,此時(shí)將種子液進(jìn)行轉(zhuǎn)接既可以避免生長(zhǎng)緩慢、發(fā)酵周期過(guò)長(zhǎng),又不會(huì)導(dǎo)致菌體過(guò)早自溶,因此可以確定納豆芽孢桿菌在種子液中培養(yǎng)18h~20h后接入發(fā)酵培養(yǎng)基中最為適宜,選取18h~20h作為納豆芽孢桿菌的種齡。

圖1 納豆芽孢桿菌的生長(zhǎng)曲線Fig.1 The growth curve ofBacillus subtilis Natto
2.2.1 發(fā)酵培養(yǎng)基的最佳碳氮源及碳氮比確定
通過(guò)前期的單因素試驗(yàn)確定出相對(duì)產(chǎn)酶量比較高的碳源為玉米淀粉、葡萄糖、木糖;比較適宜的氮源為大豆蛋白胨、動(dòng)物蛋白胨及大豆粉;碳氮比確定為4%/2%、4%/4%、2%/4%。采用正交試驗(yàn)對(duì)發(fā)酵培養(yǎng)基的碳源、氮源及碳氮比進(jìn)行了優(yōu)化。正交試驗(yàn)因素水平見(jiàn)表1,試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表2。

表1 發(fā)酵培養(yǎng)基碳氮源配方正交試驗(yàn)因素水平Table 1 Factors and levels of the orthogonal test for the optimization of carbon and nitrogen formula in the medium

表2 發(fā)酵培養(yǎng)基碳氮源配方正交試驗(yàn)結(jié)果Table 2 Results of the orthogonal test for the optimization of carbon and nitrogen formula in the medium
由表2可知,3個(gè)因素對(duì)產(chǎn)酶影響的順序?yàn)锳>B>C。由k值得到的最佳配比為玉米淀粉2%,動(dòng)物蛋白胨4%;從表2結(jié)果來(lái)看,酶活最高的配比為玉米淀粉4%,動(dòng)物蛋白胨4%。
對(duì)這2種碳氮源配比進(jìn)行發(fā)酵驗(yàn)證試驗(yàn),試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表3。

表3 發(fā)酵培養(yǎng)基碳氮比配方正交試驗(yàn)驗(yàn)證試驗(yàn)Table 3 Verification test of the orthogonal test for the optimization of carbon and nitrogen formula in the medium
由表3可知,通過(guò)驗(yàn)證試驗(yàn)確定最佳碳氮源配比為玉米淀粉2%,動(dòng)物蛋白胨4%。
2.2.2 發(fā)酵培養(yǎng)基的無(wú)機(jī)鹽濃度確定
微生物在生長(zhǎng)繁殖和生產(chǎn)過(guò)程中,需要某些無(wú)機(jī)鹽和礦物質(zhì)元素作為其生理活性物質(zhì)的組成或生理活性作用的調(diào)節(jié)物。這些物質(zhì)一般在低濃度時(shí)對(duì)微生物生長(zhǎng)和產(chǎn)物合成有促進(jìn)作用,在高濃度時(shí)常表現(xiàn)出明顯的抑制作用。因此選擇合適的無(wú)機(jī)離子濃度是非常重要的。在眾多無(wú)機(jī)離子中,鉀、鈣、鎂等陽(yáng)離子是許多酶的激活劑,影響蛋白質(zhì)的合成。通過(guò)正交試驗(yàn)研究了MgSO4·7H2O,CaCl2及K2HPO4/KH2PO4對(duì)產(chǎn)酶的影響,因素水平見(jiàn)表4,試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表5。

表4 發(fā)酵培養(yǎng)基無(wú)機(jī)鹽濃度正交試驗(yàn)因素水平Table 4 Factors and levels of the orthogonal test for the optimization of medium inorganic concentration

表5 發(fā)酵培養(yǎng)基無(wú)機(jī)鹽濃度正交試驗(yàn)結(jié)果Table 5 Results of the orthogonal test for the optimization of medium inorganic concentration
由表5可知,CaCl2對(duì)產(chǎn)酶有明顯的促進(jìn)作用。通過(guò)k值得到無(wú)機(jī)鹽的最佳濃度為MgSO4·7H2O 0.05%,CaCl20.01%,K2HPO4/KH2PO40.1%/0.1%。由正交試驗(yàn)直觀分析結(jié)果可知,產(chǎn)酶最高的無(wú)機(jī)鹽濃度為MgSO4·7H2O 0.05%,CaCl20.01%,K2HPO4/KH2PO40.3%/0.1%。對(duì)所得結(jié)論進(jìn)行驗(yàn)證試驗(yàn),試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表6。

表6 發(fā)酵培養(yǎng)基無(wú)機(jī)鹽濃度的驗(yàn)證試驗(yàn)Table 6 Verification test of the medium inorganic salt concentration
由表6的酶活結(jié)果來(lái)看,最佳的無(wú)機(jī)鹽濃度為MgSO4·7H2O 0.05%,CaCl20.01%,K2HPO4/KH2PO40.3%/0.1%。
通過(guò)正交試驗(yàn)確定了納豆激酶液體發(fā)酵的最佳培養(yǎng)基為玉米淀粉2%,動(dòng)物蛋白胨4%,MgSO4·7H2O 0.05%,CaCl20.01%,K2HPO4/KH2PO4為0.3%/0.1%。
以優(yōu)化后的培養(yǎng)基液體發(fā)酵納豆芽孢桿菌,通過(guò)單因素試驗(yàn)考察了接種量、裝液量、發(fā)酵溫度、初始pH值對(duì)產(chǎn)酶的影響。由單因素試驗(yàn)結(jié)果可知,最佳裝液量為50mL/500mL錐形瓶。接種量、發(fā)酵溫度、初始pH值對(duì)產(chǎn)酶影響顯著。
根據(jù)Box-Benhnken的中心組合試驗(yàn)設(shè)計(jì)原理,并結(jié)合單因素試驗(yàn)結(jié)果,進(jìn)行3因素3水平的響應(yīng)面分析試驗(yàn)。因素水平見(jiàn)表7。

表7 響應(yīng)面試驗(yàn)因素與水平Table 7 Factors and levels of the response surface test
以接種量(A)、發(fā)酵溫度(B)、初始pH值(C)為自變量,以培養(yǎng)48h后測(cè)得納豆激酶酶活為響應(yīng)值(Y),進(jìn)行響應(yīng)面分析,試驗(yàn)方案及結(jié)果見(jiàn)表8。
利用Minitab15對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行二次多項(xiàng)回歸擬合,建立二次響應(yīng)面回歸模型,優(yōu)化各因素水平。具體的分析結(jié)果見(jiàn)表9、表10。
由表9可知,B的線性項(xiàng),A、B、C的平方項(xiàng)對(duì)納豆激酶酶活具有顯著作用。另外,B與C的交互作用也是比較顯著的。該模型的決定系數(shù)R2=0.912,說(shuō)明回歸方程的擬合程度較好。根據(jù)表9得到納豆激酶酶活(Y)對(duì)接種量、發(fā)酵溫度、初始pH值的二次回歸方程式:


表8 響應(yīng)面分析方案及試驗(yàn)結(jié)果Table 8 Scheme and results of the response surface test

表9 納豆激酶酶活的估計(jì)回歸系數(shù)Table 9 Estimated regression coefficient of Natto kinase activity

表10 納豆激酶酶活的估計(jì)回歸系數(shù)表的方差分析Table 10 Variance analysis of estimated regression coefficient of Nattokinase activity
由表10可知,該模型的p值為0.003,小于0.01,說(shuō)明該模型的回歸顯著。失擬的p值為0.072,大于0.05,這說(shuō)明該模型的失擬不顯著。
利用Minitab15所生成的響應(yīng)曲面分析圖見(jiàn)圖2~圖4。

圖2 納豆激酶酶活與發(fā)酵溫度,接種量的曲面圖及等值線圖Fig.2 Response surface and contour plot of natto kinase activity,fermentation temperature,and inoculation size

圖3 納豆激酶酶活與初始pH值,接種量的曲面圖及等值線圖Fig.3 Response surface and contour plot of natto kinase activity,initial pH and inoculation size
圖2~圖4表明,當(dāng)某一因素達(dá)到最佳水平時(shí),其他2個(gè)獨(dú)立因素之間的相互作用。從3個(gè)響應(yīng)面曲面圖看出,發(fā)酵溫度對(duì)納豆激酶酶活的影響比較顯著。由相應(yīng)的等高線圖可知,發(fā)酵溫度與接種量、初始pH值與接種量的等高線圖接近圓形,交互作用不顯著,而發(fā)酵溫度與初始pH值的等高線圖呈橢圓形,交互作用顯著。

圖4 納豆激酶酶活與初始pH值,發(fā)酵溫度的曲面圖及等值線圖Fig.4 Response surface and contour plot of natto kinase activity,initial pH and fermentation temperature
由Minitab15對(duì)回歸方程進(jìn)行分析得到優(yōu)化后的條件:接種量3.14%,發(fā)酵溫度36.05℃,初始pH值為6.83。為方便操作,優(yōu)化后的條件改為接種量3.1%,發(fā)酵溫度36℃,初始pH值為6.8。納豆激酶酶活的最大估計(jì)值為32.22kU/mL。在所得的優(yōu)化條件下進(jìn)行3次驗(yàn)證試驗(yàn),所得的納豆激酶酶活分別為31.32kU/mL、33.25kU/mL、33.61kU/mL,平均值為32.73kU/mL,實(shí)驗(yàn)值與理論預(yù)測(cè)值非常接近,這說(shuō)明該模型可以較好地預(yù)測(cè)實(shí)際發(fā)酵情況,并證明了利用響應(yīng)面優(yōu)化納豆激酶液體發(fā)酵條件的可行性。
本實(shí)驗(yàn)利用正交試驗(yàn)法和響應(yīng)面分析法對(duì)納豆激酶液體發(fā)酵條件進(jìn)行了系統(tǒng)研究。通過(guò)監(jiān)測(cè)納豆芽孢桿菌的生長(zhǎng)曲線確定出18h~20h為最適種齡。利用正交試驗(yàn)對(duì)培養(yǎng)基組成進(jìn)行了優(yōu)化,確定出發(fā)酵的最佳培養(yǎng)基為玉米淀粉2%,動(dòng)物蛋白胨4%,MgSO4·7H2O 0.05%,CaCl20.01%,K2HPO4/KH2PO40.3%/0.1%。隨后由響應(yīng)面分析法對(duì)納豆激酶液體發(fā)酵條件進(jìn)行了優(yōu)化,根據(jù)Box-Benhnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)建立了發(fā)酵條件的二次多項(xiàng)數(shù)學(xué)模型,并利用Minitab15軟件對(duì)模型進(jìn)行了顯著性檢驗(yàn),得到了優(yōu)化后的發(fā)酵條件:初始pH值為6.8,裝液量50mL/500mL錐形瓶,接種量3.1%,發(fā)酵溫度36℃。經(jīng)過(guò)優(yōu)化,發(fā)酵48h后的納豆激酶酶活從12.47kU/mL提高為32.73kU/mL。
[1]SUMI H,HAMADA H,TSUHIMA H,et al.A novel fibrinolytic enzyme(nattokinase) in the vegetable cheese Natto:a typical and popular soybean food in the Japanese diet[J].Experientia,1987,43(20):1110-1111.
[2]SUMI H,HAMADA H,NAKANISHI K,et al.Enhancement of the fibrinolytic activity in plasma by oral administration of nattokinase[J].Acta Haematol-Basel,1990,84(3):139-143.
[3]TOSHIO H,HAMADA H,NAKANISHI K,et al.A simple,easy and routine assay of thrombolytic enzyme activity[J].Nippon Kagaku Kashi,1996,43(2):172-175.
[4]周俐梅.鏈激酶的性質(zhì)及其研究發(fā)展[J].國(guó)外醫(yī)學(xué)分子生物學(xué)分冊(cè),1993,15(6):272-275.
[5]鄒和昌.溶栓劑的發(fā)展及研究[J].中國(guó)藥學(xué)雜志,1997,32(5):263-267.
[6]STUMP DC,THIENPONT M,COLLEN D.Urokinase-related proteins in human urine.Isolation and characterization of single-chain urokinase(pro-urokinase)and urokinase-inhibitor complex[J].J Biol Chem,1986,261(15):6972-6985.
[7]KURZ K D,MAIN B W,SANDUSKY G E,et al.Rat modle of arterial thrombosis induced by ferric chloriode[J].Thromb Res,1990,60(4):269-280.
[8]謝秋玲,郭 勇,林 劍.一種潛在的溶血栓藥物—納豆激酶[J].藥物生物技術(shù),2001,8(1):51-53.
[9]陽(yáng)承利,刑建民,劉俊果,等.納豆激酶分離純化技術(shù)的研究進(jìn)展[J].現(xiàn)代化工,2004,24(2):23-25.
[10]陳麗娟,沙長(zhǎng)青,等.國(guó)外納豆激酶的開(kāi)發(fā)現(xiàn)狀[J].生物技術(shù),2003,13(6):44-45.
[11]桂勁松,康海貴.結(jié)構(gòu)可靠度分析的響應(yīng)面法及其Matlab 實(shí)現(xiàn)[J].計(jì)算力學(xué)學(xué)報(bào),2004,21(6):684-687.
[12]朱 靜,郭 軍.一種新的結(jié)構(gòu)可靠性計(jì)算方法—響應(yīng)面法[J].上海交通大學(xué)學(xué)報(bào),1995,29(2):26-31.
[13]毛 君,尹 航,崔 闖,等.基于Minitab 確定最佳參數(shù)的實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)[J].煤礦機(jī)械,2008,29(8):14-16.
[14]梁 艷,盧文玉,聞建平.Minitab 軟件在多殺菌素發(fā)酵條件優(yōu)化中的應(yīng)用[J].中國(guó)抗生素雜志,2008,33(11):659-662.
[15]ASTRUP T,MULLERTZ S.The fibrin plate method for estimating fibrinolytic activity[J].Arch Biochem Biophys,1952,40(2):346-351.