李 順,劉 泉,魏學斌,黃世明,徐留玉,黃生亮,趙慶利,李 青
(山東大學附屬千佛山醫院,濟南 250014)
膀胱癌是泌尿系統最常見的惡性腫瘤之一,手術切除雖可取得較好的近期療效,但術后復發率高,3~5年內復發率為50% ~70%,并且30% ~40%復發腫瘤惡性程度增高、浸潤能力增強。膀胱腔內灌注化療是當前預防膀胱癌復發最常用的方法,但其常用的化療藥物對癌細胞殺傷缺乏靶向性,毒副作用大,且存在不同程度的多藥耐藥。因此,尋找高效低毒的灌注藥物對提高膀胱腫瘤療效具有積極意義。近年研究證實,氧化苦參堿(OMT)對體外乳腺癌、胰腺癌等腫瘤細胞有明顯的抑制作用[1,2]。2010年6月~2012年6月,我們觀察了OMT對體外培養膀胱癌T24細胞生長的抑制作用,并初步探討其可能機制。現報告如下。
1.1 材料 膀胱癌T24細胞,重慶醫科大學實驗診斷教研室惠贈;OMT,寧夏啟元藥業有限公司;絲裂霉素 C(MMC),Kyowa Hakko Kogyo Co.Ltd.;RMPI 1640培養液,Gibco公司;四甲基偶氮唑鹽(MTT),Sigma公司;蛋白提取試劑盒、SDS-PAGE凝膠試劑盒,碧云天公司;倒置熒光顯微鏡(Motie,China),酶聯免疫分析儀(Techan,Austria),凝膠成像系統(Bio-Rad)。
1.2 方法
1.2.1 人膀胱癌T24細胞培養及實驗分組 將T24細胞置于含10%新生小牛血清和雙抗RMPI 1640培養液,37℃、5%CO2、飽和濕度的孵育箱內培養。取對數生長期細胞配成4×104/mL懸液,接種于96孔培養板,設8個復孔,接種3板,繼續培養24 h。以 OMT 0.625、1.25、2.5、5、10 mg/mL 分為 5個實驗組,另設陽性對照組(MMC 20 mg/L)、陰性對照組(不加處理因素)、空白對照組(不加入細胞,其他同實驗組),溶劑對照組(生理鹽水代替處理因素)。加入不同的處理因素作用24 h后,取出1板加入MTT培養4 h,加入 DMSO 200 μL/孔,振蕩溶解。
1.2.2 膀胱癌T24細胞抑制率檢測 酶標儀用空白對照組調零,檢測波長600 nm處吸光度(OD值),計算細胞存活率和抑制率。存活率=處理組OD值/陰性對照OD值×100%,抑制率=(1-存活率) ×100%。以 OMT 0.625、1.25、2.5、5、10 mg/mL分為5個實驗組,作用24、48、72 h后分別取一培養板,測定OMT在24、48、72 h對膀胱癌 T24細胞的抑制率,重復3次。
1.2.3 膀胱癌T24細胞的形態學觀察 以 OMT 1.25 mg/mL分為實驗組,設立陰性對照組。取膀胱癌T24細胞制備細胞爬片,常規HE染色及瑞氏染色,分別在低倍和高倍鏡及油鏡下觀察細胞形態變化并攝相。6孔培養板分兩組(OMT 1.25 mg/mL組、陰性對照組)加入不同處理因素,培養72 h收集細胞。分別加入4%戊二醛、1%鋨酸固定,再用乙醇丙酮梯度脫水,618環樹脂包埋后超薄切片。經枸櫞酸鉛染色,透射電鏡下觀察細胞形態學變化。
1.2.4 流式細胞術(FCM)檢測凋亡細胞 將細胞同步化培養24 h,以分為實驗組、陰性對照組。實驗組加入1.25 mg/mL OMT。再培養72 h收集細胞,1000 r/min離心5 min,棄去上清液,把細胞緩慢加入到-20℃預冷的70%乙醇固定。將等體積的細胞懸液和PI染液混勻,染色30 min。混合液過300目尼龍網。把樣品放入FCM的樣品室,以激發波長為488 nm測定,并用MODFIT2.0軟件分析細胞周期分布及凋亡情況。
1.2.5 Western blot檢測 Survivin、Caspase-3 的表達培養瓶培養膀胱癌T24細胞,將OMT按0.625、1.25、2.5 mg/mL 濃度梯度加藥于培養瓶中,培養48 h后胰酶消化細胞,取干預后的細胞于EP管。每管加入100 μL細胞裂解液(含PMSF)吹勻。于冰上放置30 min后,4℃ 14000 g離心10 min,取上清并定量,采用BCA法測定蛋白濃度。每管取30 μg總蛋白加入上樣緩沖液煮沸 5 min,經 SDS/PAGE凝膠電泳,然后電轉移至PVDF膜,5%脫脂奶粉封閉2 h。一抗1∶1000稀釋4℃孵育過夜,二抗1∶5000稀釋室溫孵育2 h后,二氨基聯苯胺顯色并對結果進行灰度掃描分析。重復實驗3次,取平均值。
1.2.6 統計學方法 采用 SPSS10.0統計軟件,計量資料以表示,組間比較行方差分析。檢驗水準 a=0.05。
2.1 OMT對T24細胞增殖的抑制作用 見表1。
2.2 細胞形態學觀察 1.25 mg/mL OMT作用后,光鏡下可見到細胞變為不規則狀,體積縮小,胞質濃縮,胞核凝聚,染色質致密聚集成板塊狀,位于核周膜成新月狀,形成凋亡小體(圖1A)。電子顯微鏡下,癌細胞核質比例縮小,胞質濃縮(圖1B),核染色質濃縮呈半月形,染色質聚集靠近于核膜周邊,進而細胞膜內陷細胞自行分割為多個具有完整膜性結構,內含各種細胞成分的凋亡小體(見圖1C)。
2.3 T24細胞凋亡檢測結果 FCM分析T24細胞DNA含量,1.25 mg/mL OMT處理組T24細胞與陰性對照組相比,出現G0/G1期阻滯,S期細胞較陰性對照組下降(P <0.05),1.25 mg/mL OMT 處理72 h后,G1期前出現呈特征性的亞二倍峰(凋亡峰)。細胞凋亡率為5.37%。見圖2。

表1 各組不同時間膀胱癌T24細胞增殖抑制情況比較(n=3,%)

圖1 1.25 mg/mL OMT作用后光鏡及電鏡下細胞形態學觀察

圖2 1.25 mg/mL OMT作用72 h后T24細胞周期分布
2.4 各組Survivin、Caspase-3表達比較 見圖3、表2。

圖3 Caspase-3、Survivin蛋白免疫印跡帶灰度
保留膀胱的膀胱癌術后患者,2年內超過半數要復發,并且有惡性程度增加趨勢。絲裂霉素C、結核菌素、阿霉素、喜樹堿等相繼應用于膀胱灌注,但復發率仍居高不下,并且具有不同程度的毒副作用。因此,尋找高效低毒的灌注藥物具有廣闊的臨床應用前景。
表2 各組Survivin、Caspase-3表達比較()

表2 各組Survivin、Caspase-3表達比較()
組別 n Caspase-3 Survivin空白對照組8 0.052 ±0.0018 0.632 ±0.00970.625 mg/mL OMT 組 8 0.084 ±0.0019 0.465 ±0.00751.25 mg/mL OMT 組 8 0.165 ±0.0023 0.257 ±0.00262.5 mg/mL OMT 組 8 0.298 ±0.0087 0.142 ±0.0092 P 0.014 0.008
OMT又名苦參素,分子式為C15H24N2O2·H2O,分子量為282,是從中藥苦豆子中提取的一種生物堿。苦豆子,別名苦甘草、苦參草、苦豆根及西豆根,早在《神農本草經》就已載入藥,全株味極苦、性寒,具有清熱解毒、抗菌消炎作用。近年研究發現,OMT有抗腫瘤作用[3],但國內外尚未見其用于膀胱癌的報道。本研究結果顯示,不同濃度OMT隨著濃度的增長、作用時間的延長對人膀胱癌T24細胞的抑制率逐漸增強,1.25 mg/mL OMT對人膀胱癌T24細胞的抑制率明顯高于陰性對照組、溶劑對照組、0.625 mg/mL OMT 組(P 均 <0.05),≥2.5 mg/mL OMT各組對人膀胱癌T24細胞的抑制率比較差異無統計學意義。1.25 mg/mL OMT作用人膀胱癌T24細胞后,在光鏡、電鏡下均可見到細胞皺縮,胞質濃縮,胞核凝聚,核染色質濃縮呈半月形,染色質聚集靠近核膜周邊,核仁裂解,細胞膜內陷細胞自行分割為多個具有完整膜性結構,內含各種細胞成分的凋亡小體;FCM可見癌細胞株出現典型的調亡峰。提示OMT可以誘導膀胱癌T24細胞的凋亡。
細胞凋亡機制十分復雜,至今尚未完全清楚。近年研究發現,細胞凋亡與凋亡相關蛋白Survivin、Caspase-3表達有關。Survivin基因是新近發現的一種凋亡抑制基因,同時也是迄今發現的作用最強的凋亡抑制因子。膀胱癌組織中Survivin表達量明顯高于正常組織中表達,且其表達與膀胱癌患者的臨床分期和腫瘤分化程度均有一定相關性,在低分化和臨床分期越高的膀胱癌患者中,其表達水平越高[4]。細胞凋亡的發生需激活Caspase。Caspase屬于半胱氨酸蛋白酶,具有嚴格的底物特異性,Caspase-3是細胞凋亡過程中必不可少的蛋白酶,是凋亡發生的直接限速酶,表達的高低決定了凋亡的發生和多少[5,6]。Survivin 蛋白通過 Caspase 通路抑制凋亡,可以直接抑制凋亡終末效應器,干擾Caspase 9的活化及Caspase3、Caspase7,從而阻斷各種刺激誘導的細胞凋亡過程。競爭性結合p21-cdk4復合物上的cdk4,釋放的p21與Caspase 3形成復合物,抑制Caspase 3的活性,從而間接抑制細胞凋亡。提示Survivin基因可通過多重途徑抑制凋亡,促進腫瘤的形成[7,8]。本研究結果顯示,隨著 OMT濃度升高,Caspase-3蛋白表達顯著增高,Survivin蛋白表達顯著下降,并且呈一定的劑量依賴性。提示OMT能明顯抑制T24膀胱癌細胞增殖,誘導凋亡,其誘導凋亡機制與抑制Survivin蛋白表達,提高Caspase-3在的表達有關,但其確切機制還有待進一步研究。
綜上所述,OMT對體外培養人膀胱癌T24細胞生長有強烈的抑制作用,其機制可能與抑制Survivin表達、上調Caspase-3表達等誘導細胞凋亡有關。
[1]Ling Q,Xu X,Wei X,et al.Oxymatrine induces human pancreatic cancer PANC-1 cells apoptosis via regulating expression of Bcl-2 and IAP families,and releasing of cytochrome c[J].J Exp Clin Cancer Res,2011,30:66.
[2]Zhang Y,Piao B,Zhang Y,et al.Oxymatrine diminishes the side population and inhibits the expression of β-catenin in MCF-7 breastcancer cells[J].Med Oncol,2011,28(Suppl 1):S99-S107.
[3]李順,張毅,黃世明,等.苦參素對膀胱癌T24細胞影響的研究[J].山東醫藥,2007,47(8):29-30.
[4]Al-Azayzih A,Gao F,Goc A,et al.TGFβ1 induces apoptosis in invasive prostate cancer and bladder cancer cells via Akt-independent,p38 MAPK and JNK/SAPK-mediated activation of caspases[J].Biochem Biophys Res Commun,2012,427(1):165-170.
[5]Kunze D,Kraemer K,Erdmann K,et al.Simultaneous siRNA-mediated knockdown of antiapoptotic BCL2,Bcl-xL,XIAP and survivin in bladder cancer cells[J].Int J Oncol,2012,doi:10.3892/ijo.2012.1549.[Epub ahead of print]
[6]Zheng QY,Jin FS,Yao C,et al.Ursolic acid-induced AMP-activated protein kinase(AMPK)activation contributes to growth inhibition and apoptosis in human bladder cancer T24 cells[J].Biochem Biophys Res Commun,2012,419(4):741-747.
[7]Lin X,Wu G,Huo WQ,et al.Resveratrol induces apoptosis associated with mitochondrial dysfunction in bladder carcinoma cells[J].Int J Urol,2012,19(8):757-764.
[8]Kawata N,Tsuchiya N,Horikawa Y,et al.Two survivin polymorphisms are cooperatively associated with bladder cancer susceptibility[J].Int J Cancer,2011,129(8):1872-1880.