王 敏 楊 軍 尚 軍 張 羅*
(1.首都醫(yī)科大學(xué)附屬北京同仁醫(yī)院耳鼻咽喉頭頸外科,北京100730;2.北京市耳鼻咽喉科研究所基礎(chǔ)室,耳鼻咽喉頭頸科學(xué)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京100005;3.首都醫(yī)科大學(xué)附屬北京同仁醫(yī)院中心實(shí)驗(yàn)室,北京100730)
過敏性鼻炎(allergic rhinitis,AR)是鼻科常見病之一,嚴(yán)重影響了患者的生活質(zhì)量,并且與哮喘、鼻竇炎和呼吸道感染等多種疾病的發(fā)生密切相關(guān)。
近期研究[1-2]表明呼吸道重塑是過敏性鼻炎的重要特征。呼吸道重塑可導(dǎo)致呼吸道結(jié)構(gòu)性變化,包括平滑肌肥大,杯狀細(xì)胞增生、上皮下纖維化、炎性細(xì)胞浸潤(rùn)和血管生成增多。其中血管生成在呼吸道重塑中起著關(guān)鍵作用[3]。目前比較明確在過敏性鼻炎中參與血管生成的因子有血管內(nèi)皮細(xì)胞生長(zhǎng)因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)和血小板來源的生長(zhǎng)因子(platelet-derived growth factor,PDGF)[3-4]。
腫瘤壞死因子α誘導(dǎo)蛋白2(tumor necrosis factor-α-inducible protein-2,TNFAIP2),又稱 B94,最早發(fā)現(xiàn)是內(nèi)皮細(xì)胞經(jīng)TNF α刺激后表達(dá)的主要基因[5]。隨后的研究[6-7]顯示多種細(xì)胞經(jīng)過多種物質(zhì)刺激后均可誘導(dǎo)TNFAIP2的表達(dá)。目前認(rèn)為TNFAIP2與多種腫瘤的形成有關(guān)[8-10],且功能主要是影響血管生成[8]。但是,血管生成因子 TNFAIP2在過敏性鼻炎中的作用目前尚不清楚,本研究將對(duì)此進(jìn)行探討,以期加深對(duì)AR發(fā)病機(jī)制的理解,并為AR治療靶點(diǎn)的選擇提供重要理論依據(jù)。
性鼻炎小鼠模型的建立
用BALB/c小鼠進(jìn)行AR動(dòng)物模型的建立,具體建模方案參考文獻(xiàn)[11]并作簡(jiǎn)單修改。在1 d和7 d用含50 μg OVA和5 mg Al(OH)3佐劑的0.9%氯化鈉注射液400 μL進(jìn)行致敏(i.p.)。1周后連續(xù)3周每周 3 d(14~35 d)鼻局部給予含 50 μg OVA的0.9%氯化鈉注射液20 μL方式進(jìn)行激發(fā)。最后一次激發(fā)2 h后處理小鼠收集血清和鼻黏膜,一部分鼻黏膜用于提取RNA,另一部分過夜固定用于免疫組織化學(xué)分析。上述為實(shí)驗(yàn)組,即OVA組。對(duì)照組,用0.9%氯化鈉注射液代替OVA致敏和激發(fā)。實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組各6只小鼠。具體見圖1。

圖1 過敏性鼻炎小鼠的建模方案Fig.1 Experimental protocol of allergic rhinitis mouse model
最后一次激發(fā)后立即計(jì)數(shù)20 min內(nèi)撓鼻和噴嚏的次數(shù)。血清中OVA特異性IgE用ELISA法檢測(cè),具體方法參考文獻(xiàn)[12]。
鼻黏膜組織總RNA用Trizol提取,用oligo(dt)反轉(zhuǎn)錄成cDNA。實(shí)時(shí)定量PCR儀器為Rotor-GeneTM6200 HRM(Corbett Life Science,Sydney,Australia)。Platinum SYBR Green qPCRSuperMixUDG購(gòu)自美國(guó)Invitrogen公司。小鼠TNFAIP2引物QuantiTect Primer Assay QT00154812購(gòu)自德國(guó) Qiagen公司,小鼠CD31的引物序列參考文獻(xiàn)[13];看家基因GAPDH的引物序列參考文獻(xiàn)[14]。結(jié)果用delta delta Ct法分析。
鼻黏膜組織用10%的中性甲醛固定,然后石蠟包埋,切成厚度為4 μm的切片。HE染色用于觀察嗜酸細(xì)胞,甲苯胺藍(lán)染色用于觀察肥大細(xì)胞,免疫組化染色用于觀察TNFAIP2的表達(dá)。一抗TNFAIP2抗體購(gòu)自美國(guó)Santa Cruz Biotechnology公司,HRP標(biāo)記的二抗和底物DAB購(gòu)自北京中杉金橋公司。
用SPSS 13.0進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(ˉ±s)表示,組間比較用t-test。相關(guān)性采用Pearson相關(guān)系數(shù)描述。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
過敏性鼻炎小鼠的撓鼻癥狀和血清OVA-specific IgE水平均顯著高于對(duì)照小鼠,且鼻黏膜組織中有明顯的嗜酸細(xì)胞和肥大細(xì)胞浸潤(rùn),表明過敏性鼻炎小鼠動(dòng)物模型已成功建立(圖2)。
過敏性鼻炎小鼠鼻黏膜中TNFAIP2基因的表達(dá)比對(duì)照小鼠顯著升高(P<0.01,圖3)。
對(duì)照小鼠鼻黏膜僅有少量TNFAIP2蛋白表達(dá),而過敏性鼻炎小鼠中TNFAIP2蛋白的表達(dá)顯著升高,而且在上皮層和皮下均有表達(dá)(圖4)。
過敏性鼻炎小鼠鼻黏膜中CD31基因的表達(dá)也比對(duì)照小鼠顯著升高(P<0.05),且鼻黏膜中CD31和TNFAIP2基因的表達(dá)存在顯著正相關(guān)(r=0.6399,P=0.025,圖 5)。
鼻黏膜局部反應(yīng)的研究往往比全身系統(tǒng)反應(yīng)的研究更能反映疾病的本質(zhì)。然而,由于過敏性鼻炎患者的鼻黏膜組織正常情況下無法獲得,限制了對(duì)此疾病局部反應(yīng)的研究。過敏性鼻炎小鼠模型的建立解決了這一難題,本課題組通過建立OVA誘導(dǎo)的過敏性鼻炎小鼠模型對(duì)鼻黏膜局部TNFAIP2的表達(dá)進(jìn)行了觀察。
鼻部癥狀的出現(xiàn)、過敏原特異性IgE的產(chǎn)生、嗜酸細(xì)胞和肥大細(xì)胞的浸潤(rùn)是過敏性鼻炎的重要特征[15]。與此一致,筆者用OVA致敏和激發(fā)的小鼠其撓鼻次數(shù)、OVA特異性IgE濃度和鼻黏膜局部嗜酸細(xì)胞和肥大細(xì)胞的聚集均明顯高于正常對(duì)照,表明過敏性鼻炎小鼠模型建模成功。

圖2 過敏性鼻炎小鼠模型的特征Fig.2 Characteristic of allergic rhinitis mouse model

圖3 過敏性鼻炎小鼠鼻黏膜上皮組織TNFAIP2基因的表達(dá)Fig.3 Expression of TNFAIP2 gene in nasal mucosa
本研究發(fā)現(xiàn)過敏性鼻炎小鼠鼻黏膜局部TNFAIP2的表達(dá)顯著升高。血管生成是過敏性鼻炎鼻黏膜組織重塑的重要特征之一,過敏性鼻炎患者鼻組織血管生成因子VEGF和PDGF表達(dá)水平顯著升高[16-17],應(yīng)用血管生成因子VEGF和PDGF受體阻斷劑可改善過敏性鼻炎小鼠鼻氣道重塑[3]。TNFAIP2也與血管生成有關(guān),早期研究[18]發(fā)現(xiàn)血管生成的體外模型中TNFAIP2表達(dá)顯著升高。另外,近期在鼻咽癌研究[8]中發(fā)現(xiàn)TNFAIP2的表達(dá)與微血管的密度相關(guān)。CD31是血管內(nèi)皮細(xì)胞的標(biāo)志分子,本研究中過敏性鼻炎小鼠鼻黏膜同樣高表達(dá) CD31,且與 TNFAIP2基因的表達(dá)相關(guān)。因此,TNFAIP2很可能通過影響血管生成參與了過敏性鼻炎的發(fā)生。
總之,本研究結(jié)果提示TNFAIP2可能參與了過敏性鼻炎的發(fā)生,且可能與血管生成相關(guān),但具體機(jī)制如何,還有待進(jìn)一步探討。

圖4 過敏性鼻炎小鼠鼻黏膜上皮組織TNFAIP2免疫組化染色結(jié)果Fig.4 Expression of TNFAIP2 protein in nasal mucosal(400×)

圖5 CD31基因的表達(dá)及其與TNFAIP2的相關(guān)性Fig.5 Expression of CD31 and correlation between CD31 and TNFAIP2
[1]Lim Y S,Won T B,Shim W S,et al.Induction of airway remodeling of nasal mucosa by repetitive allergen challenge in a murine model of allergic rhinitis[J].Ann Allergy Asthma Immunol,2007,98(1):22-31.
[2]Nakaya M,Dohi M,Okunishi K,et al.Prolonged allergen challenge in murine nasal allergic rhinitis:nasal airway remodeling and adaptation of nasal airway responsiveness[J].Laryngoscope,2007,117(5):881-885.
[3]Moon I J,Kim D Y,Rhee C S,et al.Role of angiogenic factors in airway remodeling in an allergic rhinitis murine model[J].Allergy Asthma Immunol Res,2012,4(1):37-45.
[4]Kirmaz C,Ozbilgin K,Yuksel H,et al.Increased expression of angiogenic markers in patients with seasonal allergic rhinitis[J].Eur Cytokine Netw,2004,15(4):317-322.
[5]Sarma V,Wolf F W,Marks R M,et al.Cloning of a novel tumor necrosis factor-alpha-inducible primary response gene that is differentially expressed in development and capillary tube-like formation in vitro[J].J Immunol,1992,148(10):3302-3312.
[6]Ma Y,Koza-Taylor P H,DiMattia D A,et al.Microarray analysis uncovers retinoid targets in human bronchial epithelial cells[J].Oncogene,2003,22(31):4924-4932.
[7]Cooper P,Potter S,Mueck B,et al.Identification of genes induced by inflammatory cytokines in airway epithelium[J].Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol,2001,280(5):L841-852.
[8]Chen L C,Chen C C,Liang Y,et al.A novel role for TNFAIP2:its correlation with invasion and metastasis in nasopharyngeal carcinoma[J].Mod Pathol,2011,24(2):175-184.
[9]Liu Z,Wei S,Ma H,et al.A functional variant at the miR-184 binding site in TNFAIP2 and risk of squamous cell carcinoma of the head and neck[J].Carcinogenesis,2011,32(11):1668-1674.
[10]Kondratiev S,Duraisamy S,Unitt C L,et al.Aberrant expression of the dendritic cell marker TNFAIP2 by the malignant cells of Hodgkin lymphoma and primary mediastinal large B-cell lymphoma distinguishes these tumor types from morphologically and phenotypically similar lymphomas[J].Am J Surg Pathol,2011,35(10):1531-1539.
[11]KleinJan A,Willart M,van Nimwegen M,et al.United airways:circulating Th2 effector cells in an allergic rhinitis model are responsible for promoting lower airways inflammation[J].Clin Exp Allergy,2010,40(3):494-504.
[12]Wang M,Zhang W,Shang J,et al.Immunomodulatory effects of IL-23 and IL-17 in a mouse model of allergic rhinitis[J].Clin Exp Allergy,2013,43(8):956-966.
[13]Konno M,Hamazaki T S,F(xiàn)ukuda S,et al.Efficiently differentiating vascular endothelial cells from adipose tissuederived mesenchymal stem cells in serum-free culture[J].Biochem Biophys Res Commun,2010,400(4):461-465.
[14]Liu Y,Lu X,Yu H J,et al.The expression of osteopontin and its association with Clara cell 10 kDa protein in allergic rhinitis[J].Clin Exp Allergy,2010,40(11):1632-1641.
[15]Baraniuk J N.Pathogenesis of allergic rhinitis[J].J Allergy Clin Immunol,1997,99(2):S763-772.
[16]Matsune S,Ohori J,Sun D,et al.Vascular endothelial growth factor produced in nasal glands of perennial allergic rhinitis[J].Am J Rhinology,2008,22(4):365-370.
[17]Mori S,F(xiàn)ujieda S,Sunaga H,et al.Expression of plateletderived endothelial cell growth factor and vascularity in the nasal mucosa from allergic rhinitis[J].Clin Exp Allergy,2000,30(11):1637-1644.
[18]Sarma V,Wolf F W,Marks R M,et al.Cloning of a novel tumor necrosis factor-alpha-inducible primary response gene that is differentially expressed in development and capillary tube-like formation in vitro[J].J Immunol,1992,148(10):3302-3312.