999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

兩種鐮刀菌葡萄糖淀粉酶部分酶學(xué)性質(zhì)研究

2013-12-31 00:00:00張強(qiáng)遲建國(guó)邱維忠等
湖北農(nóng)業(yè)科學(xué) 2013年24期

摘要:對(duì)串珠鐮刀菌(Fusarium moniliforme)和禾谷鐮刀菌(F. graminearum)所產(chǎn)葡萄糖淀粉酶部分酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行了研究,結(jié)果表明這2種鐮刀菌產(chǎn)的葡萄糖淀粉酶的性質(zhì)較為相似。50~60 ℃酶活性較高,最高酶活性出現(xiàn)在50 ℃,串珠鐮刀菌比禾谷鐮刀菌所產(chǎn)生的酶熱穩(wěn)定性稍高。pH 5.0~6.0之間酶活性較高,pH 5.0~8.0之間穩(wěn)定。金屬離子Mn2+、Cu2+對(duì)2種鐮刀菌產(chǎn)酶的酶活性有較強(qiáng)的激活作用,其中Mn2+激活作用最強(qiáng)烈,Mn2+作用后禾谷鐮刀菌和串珠鐮刀菌葡萄糖淀粉酶的活性分別為對(duì)照的176%和173%。金屬離子Na+、Ca2+及Fe2+則會(huì)抑制這2種鐮刀菌產(chǎn)葡萄糖淀粉酶的活性。

關(guān)鍵詞:串珠鐮刀菌(Fusarium moniliforme);禾谷鐮刀菌(F. graminearum);葡萄糖淀粉酶;酶學(xué)性質(zhì)

中圖分類號(hào):TQ925 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):0439-8114(2013)24-6026-04

葡萄糖淀粉酶(E.C 3.2.1.3)從淀粉的非還原端水解α-1,4糖苷鍵產(chǎn)生β-D-葡萄糖,由于葡萄糖淀粉酶對(duì)淀粉的水解以葡萄糖為惟一產(chǎn)物[1],因此葡萄糖淀粉酶在以葡萄糖為原料的一些生物行業(yè)有廣泛應(yīng)用,特別是在食品、醫(yī)藥、發(fā)酵等領(lǐng)域[2,3]。

工業(yè)上應(yīng)用的葡萄糖淀粉酶主要來(lái)自于曲霉屬(Aspergillus)及根霉屬(Rhizopus)[4-10], 鐮刀菌屬(Fusarium)的葡萄糖淀粉酶報(bào)道較少。曲霉屬及根霉屬菌株葡萄糖淀粉酶及其酶學(xué)性質(zhì)的研究較多[6-10],鐮刀菌屬的葡萄糖淀粉酶,如半裸鐮刀菌(F. pallidoroseum)[11]、尖孢鐮刀菌(F. oxysporum)[11]、茄腐皮鐮刀菌(F. solani)[12]、蔗草鐮刀菌(F. scirpi)[12]等也有報(bào)道,不同來(lái)源的酶性質(zhì)存在很大差異。這些絲狀真菌能夠?qū)⒑铣傻拿傅鞍追置诘桨猓阌诿傅奶崛〖兓2煌瑏?lái)源的葡萄糖淀粉酶性質(zhì)不同,在耐熱性、pH穩(wěn)定性以及催化活性上都存在差別,而不同的生物加工過程需要不同性質(zhì)的酶,因此對(duì)新型的葡萄糖淀粉酶進(jìn)行篩選并開展性質(zhì)研究顯得特別重要。

前期對(duì)幾十株真菌進(jìn)行了淀粉降解酶的篩選工作,從中得到產(chǎn)酶活性較高的一株串珠鐮刀菌(Fusarium moniliforme)以及一株禾谷鐮刀菌(Fusarium graminearum),本研究對(duì)其中的部分酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行了研究。

1 材料與方法

1.1 材料

串珠鐮刀菌以及禾谷鐮刀菌由山東省應(yīng)用微生物重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室篩選并保存。生化試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。

1.2 方法

1.2.1 固態(tài)發(fā)酵 250 mL三角瓶中裝麥麩5 g,加水5 mL,121 ℃蒸汽滅菌。用7 mm打孔器從長(zhǎng)滿菌絲的PDA平板上打出3個(gè)菌斑接種至三角瓶,28 ℃靜置培養(yǎng)。分別于72 h以及96 h搖動(dòng)一次,120 h時(shí)測(cè)定酶活性。發(fā)酵結(jié)束后固體產(chǎn)酶培養(yǎng)基中加滅菌蒸餾水100 mL,搗碎,28 ℃搖床振蕩浸提1 h,4 ℃、6 000 r/min 離心10 min,上清液為粗酶液。

1.2.2 硫酸銨沉淀蛋白 向葡萄糖淀粉酶粗酶液中加入硫酸銨,不斷地緩慢攪拌,直至硫酸銨濃度達(dá)到80 %飽和度,置于4 ℃冰箱過夜;10 000 r/min離心15 min,棄上清,將沉淀蛋白用蒸餾水溶解,透析后用于測(cè)定粗酶的酶學(xué)性質(zhì)。

1.2.3 酶活測(cè)定[13] 底物為用0.1 mol/L pH 6.0磷酸鹽緩沖液體配制的1%可溶性淀粉溶液。25 mL刻度試管中加底物0.9 mL,在測(cè)定溫度下預(yù)熱10 min,加0.1 mL適當(dāng)稀釋的粗酶液準(zhǔn)確反應(yīng)5 min,加2 mL DNS溶液,煮沸5 min,流水冷卻,稀釋至25 mL,540 nm測(cè)定吸光值。1 h 釋放1 mg 還原糖(以葡萄糖計(jì))的酶量定義為1個(gè)酶活力單位(U)。

1.2.4 最適反應(yīng)溫度和熱穩(wěn)定性[14] 于不同溫度下測(cè)定酶活,最高酶活定為100%,其余酶活與之相比計(jì)算相對(duì)酶活,尋找酶的最適反應(yīng)溫度。取適量酶液不同溫度下保溫,保溫結(jié)束立即置于冰水中冷卻,測(cè)定殘余酶活,研究酶的熱穩(wěn)定性,以不經(jīng)熱處理的酶活為100%。

1.2.5 最適反應(yīng)pH和pH穩(wěn)定性 分別用不同pH的磷酸緩沖液配制可溶性淀粉溶液,測(cè)定酶活,最高酶活定為100%,其余酶活與之相比計(jì)算相對(duì)酶活,尋找最適反應(yīng)pH。取適量酶液分別在不同pH緩沖液中30 ℃保溫6 h,測(cè)定殘余酶活,研究酶的pH穩(wěn)定性;以未處理的酶活力為100%,計(jì)算相對(duì)酶活。

1.2.6 金屬離子對(duì)酶活力的影響[14] 在反應(yīng)體系中分別加入(鹽酸鹽或硫酸鹽)Cu2+、K+、Mg2+、Mn2+、Zn2+、Fe2+、Ca2+、Na+,使其終濃度為2 mmol/L,室溫下靜置30 min,測(cè)定酶活;以不加金屬離子的空白對(duì)照酶活為100%。

1.2.7 酶解產(chǎn)物的薄層層析[15] 在0.5 mL 1%可溶性淀粉中加入適當(dāng)稀釋的硫酸銨沉淀的酶液0.1 mL,30 ℃反應(yīng)1 h,然后在硅膠板上進(jìn)行薄層層析,展開液為丁醇∶乙醇∶水=5∶3∶2,碘缸內(nèi)染色24 h。

2 結(jié)果與分析

2.1 酶活性

對(duì)2種鐮刀菌進(jìn)行固體培養(yǎng)并測(cè)定酶活性,以實(shí)驗(yàn)室保存的一株黑曲霉為對(duì)照,結(jié)果如圖1所示。黑曲霉葡萄糖淀粉酶酶活為1 206 U/g,串珠鐮刀菌和禾谷鐮刀菌分別為783 U/g以及1 065 U/g,比黑曲霉低。

2.2 淀粉酶對(duì)淀粉的酶解產(chǎn)物分析

對(duì)硫酸銨沉淀后的粗酶酶解可溶性淀粉的產(chǎn)物進(jìn)行薄層層析,結(jié)果表明,葡萄糖是惟一可見的酶解產(chǎn)物(圖2),此作用方式為典型的葡萄糖淀粉酶的作用方式,因此串珠鐮刀菌和禾谷鐮刀菌產(chǎn)生的淀粉分解酶主要為葡萄糖淀粉酶。

2.3 葡萄糖淀粉酶的最適反應(yīng)溫度

不同溫度下測(cè)定2種鐮刀菌所產(chǎn)葡萄糖淀粉酶的活性(圖3),結(jié)果顯示此酶在50~60 ℃范圍內(nèi)酶活性最高,30~50 ℃有70%以上的活性,溫度達(dá)到60 ℃時(shí)以上酶活性降低。

2.4 葡萄糖淀粉酶的熱穩(wěn)定性

串珠鐮刀菌產(chǎn)生的葡糖淀粉酶在40 ℃以下很穩(wěn)定(圖4),40 ℃保溫90 min酶活性基本沒有損失;50 ℃保溫酶活損失很快,保溫90 min損失70%以上;60 ℃條件下酶活迅速喪失,保溫10 min酶活性已經(jīng)損失90%以上,表明此酶的熱穩(wěn)定性較差。

禾谷鐮刀菌所產(chǎn)葡萄糖淀粉酶與串珠鐮刀菌所產(chǎn)酶的熱穩(wěn)定性基本一致(圖5),可能是由于兩株菌進(jìn)化關(guān)系較近,所產(chǎn)酶的結(jié)構(gòu)也可能較為類似,因此導(dǎo)致其熱穩(wěn)定性基本一致。

2.5 酶的最適反應(yīng)pH

對(duì)葡萄糖淀粉酶的最適反應(yīng)pH研究結(jié)果發(fā)現(xiàn)(圖6),串珠鐮刀菌和禾谷鐮刀菌葡萄糖淀粉酶最高酶活出現(xiàn)在pH 5.0附近,微酸性環(huán)境中酶活性較高,pH小于4.0時(shí)酶活性迅速下降。

2.6 葡萄糖淀粉酶的pH穩(wěn)定性

研究了2種鐮刀菌葡萄糖淀粉酶的pH穩(wěn)定性(圖7),結(jié)果表明,2種酶在pH 5.0~7.0之間穩(wěn)定性較好,pH 5.0~7.0之間30 ℃放置6 h酶活性保持90%以上,pH 4.0以下酶活性喪失較快。

2.7 不同金屬離子對(duì)2種鐮刀菌葡萄糖淀粉酶活性的影響

研究了不同金屬離子對(duì)葡萄糖淀粉酶活性的影響(圖8),結(jié)果發(fā)現(xiàn),Mn2+、Cu2+對(duì)2種鐮刀菌葡萄糖淀粉酶活性都有較強(qiáng)的激活作用,其中Mn2+激活作用最強(qiáng)烈,Mn2+作用后禾谷鐮刀菌和串珠鐮刀菌葡萄糖淀粉酶的活性分別為對(duì)照的176%和173%。Na+、Ca2+、Fe2+對(duì)酶活性有抑制作用;而K+、Mg2+、Zn2+對(duì)酶活性有輕微激活作用。

3 討論

有關(guān)曲霉屬及根霉屬菌株葡萄糖淀粉酶及其酶學(xué)性質(zhì)的研究較多[6-10],鐮刀菌屬的半裸鐮刀菌[11]、尖孢鐮刀菌[11]、茄腐皮鐮刀菌[12]、蔗草鐮刀菌[12]、串珠鐮刀菌[16,17]等產(chǎn)葡萄糖淀粉酶也有報(bào)道,不同來(lái)源的酶性質(zhì)存在很大差異。

茄腐皮鐮刀菌[12]產(chǎn)的葡萄糖淀粉酶在50 ℃時(shí)穩(wěn)定,50 ℃保溫60 min 酶活性仍保留79%;Tochukwu等[14]篩選的一株鐮刀菌所產(chǎn)葡萄糖淀粉酶在40~70 ℃之間酶活性都比較高,最高酶活出現(xiàn)在50 ℃,而且熱穩(wěn)定性非常高,70 ℃保存30 min酶活性仍保留78%;尖孢鐮刀菌和蔗草鐮刀菌[9]的最適反應(yīng)溫度分別為30 ℃和40 ℃。本試驗(yàn)中2種鐮刀菌在50 ℃時(shí)有最高酶活性,50~60 ℃之間酶活性較高;然而熱穩(wěn)定性較差,50 ℃保溫1 h酶活力剩余不到50%,其最適反應(yīng)溫度以及熱穩(wěn)定性與報(bào)道的曲霉菌及鏈霉菌屬中葡萄糖淀粉酶的性質(zhì)較為相近[7,8]。

真菌葡萄糖淀粉酶的最適反應(yīng)pH多為酸性,而且一般在酸性及中性pH時(shí)穩(wěn)定[8,12,14]。茄腐皮鐮刀菌[12]在pH 3.0~5.0有較高的酶活性;尖孢鐮刀菌和蔗草鐮刀菌[18]分泌淀粉酶的最適反應(yīng)pH為6.9; Tochukwu等[14]篩選的鐮刀菌在pH 6.5~8.5有較高的酶活性,pH 4.5~7.0穩(wěn)定。而本試驗(yàn)結(jié)果表明,禾谷鐮刀菌和串珠鐮刀菌在弱酸性條件下酶活性較高,最高酶活性出現(xiàn)在pH 5.0~6.0。在本研究pH 5.0~7.0條件下酶活性都保留90%以上,pH 4.0以下處理酶活性喪失很快。

大部分淀粉酶的活性都需要有金屬離子的參與,特別是二價(jià)金屬離子對(duì)淀粉酶的活性有激活作用。文獻(xiàn)報(bào)道真菌葡糖淀粉酶一般被Cu2+、Mg2+、Zn2+、Ca2+等不同程度地激活[9,10,12],但不同金屬離子對(duì)不同來(lái)源的酶的作用有所差異[5]。茄腐皮鐮刀菌[12]葡萄糖淀粉酶酶活性被Cu2+、Mg2+激活,被Hg2+、Pb2+、Zn2+、Ni2+以及Fe3+抑制;Tochukwu等[14]篩選的菌株所產(chǎn)酶被Mg2+、Ca2+、Zn2+、Cu2+等激活,被Mn2+以及Fe2+抑制。本試驗(yàn)中,Mn2+、Cu2+對(duì)2種鐮刀菌都有較強(qiáng)的激活作用,其中Mn2+激活作用最為強(qiáng)烈,Na+、Ca2+、Fe2+對(duì)酶活性有抑制作用。

可見,不同來(lái)源的菌株所產(chǎn)的葡萄糖淀粉酶性質(zhì)不同,通過對(duì)不同菌株的篩選研究發(fā)掘不同性質(zhì)的酶可以應(yīng)用于不同的行業(yè)。本試驗(yàn)對(duì)禾谷鐮刀菌以及串珠鐮刀菌所產(chǎn)生的葡萄糖淀粉酶的部分酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行了研究,以期對(duì)這2種菌葡萄糖淀粉酶的開發(fā)利用提供一定的借鑒作用。

參考文獻(xiàn):

[1] MERTENS J A, SKORY C D. Isolation and characterization of a second glucoamylase gene without a starch binding domain from Rhizopus oryzae[J]. Enzyme and Microbial Technology, 2007, 40(4):874-880.

[2] MARLIDA Y, HASSAN S N, RADU S Z, et al. Purification and characterization of sago starch degrading glucoamylase from Acremonium sp. endophytic fungus[J]. Food Chemistry, 2000, 71(2):221-227.

[3] SWIFT R J, KARANDIKAR A, GRIFFEN A M, et al. The effect of organic nitrogen sources on recombinant glucoamylase production by Aspergillus niger in chemostat culture[J]. Fungal Genetics and Biology,2000,32(2):125-133.

[4] COUTINHO P M, REILLY P J. Glucoamylase structural, functional and evolutionary relationships[J]. Proteins,1997,29(3):334-347.

[5] PANDEY A, NIGAM P, SOCCOL C R, et al. Advances in microbial amylases[J]. Biotechnology and Applied Biochemistry,2000,31(2):135-152.

[6] ALVA S, ANUPAMA J, SAVLA J, et al. Production and characterization of fungal amylase enzyme isolated from Aspergillus sp. JGI 12 in solid state culture[J]. African Journal of Biotechnology,2007,6(5):576-581.

[7] ABOU-ZEID A M. Partial purification and some properties of extra cellular glucoamylase from Aspergillus niger ATCC 1015 grown in dextrin-limited fed-batch culture[J]. African Journal of Mycology and Biotechnology,1999,7(3):79-93.

[8] STAMFORD T L, STAMFORD N P, COELHO L C, et al. Production and characterization of a thermostable glucoamylase from Streptosporangium sp. endophyte of maize leaves[J]. Bioresource Technology,2002,83(2):105-109.

[9] GHOSH A, CHATERGEE B, DAS A. Purification and characterization of glucoamylase from Aspergillus terreus. NA-170 mutant[J]. Journal of Applied Bacteriology,1991,71(2):162-169.

[10] SELVAKUMAR P,ASHAKUMARY L, HELEN A, et al. Purification and characterization of glucoamylase produced by Aspergillus niger in solid state fermentation[J]. Letters in Applied Microbiology,1996,23(6):403-406.

[11] ALTAF H, ZAFAR I K, DR E R. Isolation and screening of amylolytic and pectinolytic fungi from soil[J]. Pakistan Journal of Biological Sciences,1999,2(3):974-975.

[12] BHATTI H N, RASHID M H, NAWAZ R, et al. Purification and characterization of a novel glucoamylase from Fusarium solani[J]. Food Chemistry,2007,103(2):338-343.

[13] MILLER G L. Use of dinitrosalicylic acid reagent for determination of reducing sugar[J]. Analytical Chemistry,1959,31(3):426-429.

[14] TOCHUKWU N N, BARTHOLOMEW N O. Extracellular amylase production of a thermotolerant Fusarium sp. isolated from Eastern Nigerian soil[J]. Brazilian Archives of Biology and Technology,2011,54(4):649-658.

[15] FONTANNA J D, GEBARA M, BLUMEL M, et al. α-4-O-methyl-D-glucoronidase component of xylanolytic complexes[J]. Methods in Enzymology,1988,160:560-571.

[16] BHATTI H N, MUSTAFA G, ASGHER M. Production of glucoamylase by Fusarium moniliforme under solid-state fermentation[J]. Journal of the Chemical Society of Pakistan,2007, 29(2):161-165.

[17] FIGUEIRA ELE, HIROOKA EY. Culture medium for amylase production by toxigenic fungi[J]. Brazilian Archives of Biology and Technology,2000,43(5):461-467.

[18] CHARY S J, REDDY S M. Starch-degrading enzymes of two species of Fusarium[J]. Folia Microbiologica,1985,30(5):452-457.

主站蜘蛛池模板: 国产精品观看视频免费完整版| 国产91丝袜在线播放动漫 | 99热最新网址| 亚洲有码在线播放| 国产成人精品一区二区秒拍1o| 欧美日韩成人在线观看| 亚洲有无码中文网| 久久精品中文字幕少妇| 亚洲av综合网| 国产精品久久自在自2021| 亚洲第一视频免费在线| 国产00高中生在线播放| 久久视精品| 波多野结衣国产精品| 另类重口100页在线播放| 91福利在线看| 凹凸精品免费精品视频| 国产无码精品在线播放| 午夜毛片福利| 国产情侣一区二区三区| 国产精品露脸视频| 日韩中文无码av超清| 亚洲婷婷丁香| 伊伊人成亚洲综合人网7777| 免费国产高清精品一区在线| 国产尤物jk自慰制服喷水| 国产日韩欧美精品区性色| 国产尤物jk自慰制服喷水| 亚洲无线观看| 91国内外精品自在线播放| 国产喷水视频| 波多野结衣视频网站| 国产成人亚洲精品无码电影| 国产女人水多毛片18| 亚洲国产一区在线观看| 国产在线精品人成导航| 日韩精品无码免费专网站| 国产在线97| 国产成人精品一区二区不卡 | 波多野结衣一二三| 五月天天天色| www亚洲天堂| 欧美亚洲日韩中文| 天天躁夜夜躁狠狠躁图片| 在线观看免费国产| 自偷自拍三级全三级视频| 日本a级免费| 99成人在线观看| 国产又色又爽又黄| 欧美成在线视频| 国模粉嫩小泬视频在线观看| 亚洲精品无码不卡在线播放| 色婷婷久久| 五月婷婷伊人网| 免费国产高清精品一区在线| 99久久性生片| 九九视频免费在线观看| 国产免费羞羞视频| 亚洲欧美日韩久久精品| 一级片一区| 蜜臀AVWWW国产天堂| AV无码国产在线看岛国岛| 狠狠久久综合伊人不卡| 精品视频第一页| 亚洲品质国产精品无码| 亚洲成a人片7777| 日韩资源站| 亚洲精品爱草草视频在线| 在线观看无码a∨| 日韩欧美在线观看| 国产成年无码AⅤ片在线| 欧美一级黄片一区2区| 国产拍在线| 亚洲色图欧美在线| 伊人大杳蕉中文无码| 亚洲国产综合精品一区| 国产美女精品在线| 亚洲精品无码高潮喷水A| 国产欧美日韩综合在线第一| 精品一區二區久久久久久久網站 | 99re这里只有国产中文精品国产精品| 国产99免费视频|