劉吉利,吳娜
(1.寧夏大學新技術應用研究開發中心,寧夏 銀川750021;2.寧夏大學農學院,寧夏 銀川750021)
土壤鹽漬化是影響農業生產的主要因素之一[1-2]。當前,全球不同類型鹽漬土面積約為10億hm2,其中堿土和堿化土壤約占60%[3]。龜裂堿土,俗稱白僵土[4],是一種具有不良理化性質的堿化土壤,其礦物組成以伊利和高嶺為主,質地粘重,土壤濕時吸水膨脹,泥濘不易透水,干時收縮板結,土壤肥力很低,其他營養元素的含量也偏低[5-6]。寧夏銀川平原是我國龜裂堿土的主要分布區之一,該區域雖然土壤理化性狀不良,但地勢平坦,土層深厚,毗鄰黃河,開發利用潛力巨大[7]。
能源作物甜高粱(Sorghumbicolor)屬于C4植物,具有高能、高光效、高生物產量和高含糖量等特點,同時具有較強的抗旱、耐瘠、耐鹽堿特性,可在鹽堿干旱等邊際土地上種植[8-9],是適于龜裂堿土種植的侯選作物之一。充分利用寧夏銀川平原鹽漬化邊際性土地種植甜高粱,發展生物質能源,符合我國“不與糧爭地、不與人爭糧”大力發展非糧生物質能源的政策導向,對于提高邊際土壤的利用效率、緩解能源緊張、發展農村區域經濟等都具有重要意義[10-11]。
植物耐鹽性是一個復雜的反應過程,涉及組織器官結構、生理生化反應等多方面的因素。鹽堿脅迫條件下,植物生長發育受到抑制,在內部結構和外部形態上將發生一系列的改變[12]。植物為了適應鹽堿環境、抵抗鹽堿脅迫也產生了一系列適應機制,主要包括質膜透性改變、滲透調節、增加保護酶系統活性等途徑來抵御鹽堿脅迫[13-15]。目前關于甜高粱鹽堿脅迫的研究較少,并且相關研究主要集中在NaCl脅迫方面[2,10,16]。但目前甜高粱對堿化土壤鹽堿脅迫的響應以及不同品種間的差異研究較少[17],尤其是甜高粱對典型龜裂堿土的適應性研究鮮有報道。為此,研究了龜裂堿土對5個不同基因型甜高粱幼苗生長和光合速率、保護酶活性等生理指標的影響,旨在探明甜高粱幼苗對龜裂堿土脅迫的生理響應機制,為寧夏銀川平原龜裂堿土的開發利用和耐鹽堿甜高粱育種與栽培提供理論依據。
試驗于2012年5-8月在寧夏大學溫室內進行。試驗材料采用醇甜2號(CT-2)、ZNH05、ZNH07、ZNH12、ZNH18等5個不同基因型的甜高粱,均為雜交種。供試材料由中國農業大學非糧生物質原料研發中心提供。
5個不同基因型的甜高粱分別設置龜裂堿土脅迫和對照(無鹽堿脅迫)2個處理,隨機區組試驗設計,重復3次。采用盆栽試驗,花盆直徑為15cm,高度為25cm,每個花盆裝入1.0kg土壤,每盆播種甜高粱6粒,待出苗后每盆定苗3株,每重復6盆。對照和龜裂堿土脅迫處理所用土壤分別采自寧夏大學西大灘鹽堿地改良試驗站耕地和典型龜裂堿土0~30cm土層,土壤理化性狀見表1。

表1 供試土壤的主要理化性狀Table 1 Main soil properties of the study site in the top 0-30cm
各處理于定苗后15d,進行株高、根長、植株干重等幼苗生長指標測定。同時,采集植株最新展開的葉片進行葉綠素含量、凈光合速率、保護性酶活性(SOD、POD、CAT)、質膜透性以及丙二醛含量等生理指標測定。
葉綠素含量用80%丙酮浸提法測定[18],凈光合速率采用便攜式光合作用測定系統(Li-6400USA)在1200 μmol/(m2·s)的光強下測定,SOD活性采用氮藍四唑(NBT)法測定,POD活性采用愈創木酚法測定,CAT活性采用紫外吸收法測定,葉片質膜透性用電導率法測定,丙二醛含量用硫代巴比妥酸(TBA)法測定[19]。
試驗數據的處理和相關分析用Microsoft Excel 2003和SAS軟件完成。采用SAS 8.2軟件進行方差分析,其他分析使用Microsoft Excel 2003軟件完成。
龜裂堿土對不同基因型甜高粱幼苗的生長有較大影響,龜裂堿土脅迫處理顯著降低了甜高粱幼苗株高、根長和植株干重,且各指標在不同品種間均存在著較大的差異。龜裂堿土脅迫條件下,各品種甜高粱幼苗株高、根長和植株干重的降幅分別為12.0%~35.1%、11.9%~30.0%和21.4%~37.5%(表2)。品種ZNH07和ZNH18各指標降幅均較小,品種ZNH05降幅較大,這說明ZNH07和ZNH18在龜裂堿土脅迫條件幼苗生長受抑制較小,表現出較強的耐鹽堿性;ZNH05幼苗生長受抑制程度最大,其抗鹽堿性最差。
葉片葉綠素含量與光合作用密切相關,是植物抗逆性研究中的一個重要指標。由圖1可以看出,龜裂堿土脅迫顯著降低了甜高粱葉片的葉綠素含量,不同品種葉綠素含量降低幅度不同,降幅范圍為14.7%~33.9%,其中ZNH07和ZNH12降幅較小,ZNH18和CT-2居中,ZNH05降幅最大。脅迫條件下,品種ZNH07和ZNH18的葉綠素含量顯著高于其他品種,表現出較強的耐鹽堿性。
光合作用是對逆境脅迫最為敏感的生理過程之一,光合速率在一定程度上反映光合作用的水平。由圖2可知,與對照相比,龜裂堿土脅迫處理甜高粱葉片光合速率大幅度降低,降幅為26.9%~47.6%,品種間差異顯著。其中品種ZNH07和ZNH18凈光合速率降幅較小,ZNH05和CT-2降幅較大,這與葉綠素含量的變化規律基本一致。脅迫條件下,甜高粱品種間凈光合速率差異顯著,ZNH07和ZNH18仍能保持較高的光合速率,說明其葉片生理活性受鹽堿脅迫影響較輕。

表2 龜裂堿土對不同基因型甜高粱幼苗生長的影響Table 2 Effects of takyric solonetz on seedling growth of different sweet sorghum genotypes

圖1 龜裂堿土對不同基因型甜高粱葉綠素含量的影響Fig.1 Effects of takyric solonetz on chlorophyll content of different sweet sorghum genotypes

圖2 龜裂堿土對不同基因型甜高粱凈光合速率的影響Fig.2 Effects of takyric solonetz on net photosynthetic rate of different sweet sorghum genotypes
如表3所示,龜裂堿土對不同基因型甜高粱葉片保護性酶活性有較大影響,龜裂堿土脅迫處理顯著增加了甜高粱葉片中SOD、POD、CAT 等保護性酶活性,增幅分別為25.9%~44.3%、19.4%~51.4%和22.4%~40.3%。龜裂堿土脅迫處理條件下,3種酶活性在不同甜高粱品種間均存在著較大的差異。與對照相比,品種ZNH07和ZNH18三種酶活性均大幅度增加,且保持較高的保護性酶活性;品種ZNH05三種酶活性增幅均較小,且3種酶活性均顯著低于ZNH07和ZNH18。這說明ZNH07和ZNH18在龜裂堿土脅迫條件能夠保持較高的保護性酶活性,表現出較強的耐鹽堿性。
逆境脅迫會使植物細胞質膜受到不同程度的損傷,其往往表現為細胞膜透性增大,丙二醛含量增加。圖3和圖4表明,龜裂堿土脅迫增加了甜高粱幼苗葉片質膜相對透性和丙二醛含量,且品種間存在明顯差異。龜裂堿土脅迫處理條件下5個品種甜高粱葉片質膜相對透性比對照增加2.2~3.8倍,丙二醛含量增幅為75.4%~187.3%。品種ZNH05的質膜相對透性和丙二醛含量及其增幅均最高,其次為CT-2和ZNH12,ZNH07和ZNH18最低。這說明鹽堿脅迫條件下ZNH05質膜受損傷最嚴重,其抗鹽堿性較弱;ZNH07和ZNH18細胞膜受損較輕,其抗鹽堿性較強。

表3 龜裂堿土對不同基因型甜高粱葉片保護性酶活性的影響Table 3 Effects of takyric solonetz on protective enzyme activities of different sweet sorghum genotypes

圖3 龜裂堿土對不同基因型甜高粱質膜相對透性的影響Fig.3 Effects of takyric solonetz on plasma membrane relative permeability of different sweet sorghum genotypes

圖4 龜裂堿土對不同基因型甜高粱丙二醛含量的影響Fig.4 Effects of takyric solonetz on MDA content of different sweet sorghum genotypes
植物對鹽堿脅迫最為敏感的過程是其生長受到抑制[20],而生長量是植物對鹽脅迫響應的綜合體現及對鹽脅迫的綜合適應,是評估脅迫程度和植物抗鹽能力的可靠指標[21]。較高鹽脅迫下所有植物生長都會受到抑制,其耐鹽程度因不同植物及同一植物不同品種而存在很大差異[22]。本研究表明,龜裂堿土顯著抑制了不同基因型甜高粱幼苗的生長,株高、根長和植株干重等指標均有不同程度降低,品種間差異明顯,這與前人研究結論一致[17,23-24]。品種ZNH07和ZNH18在龜裂堿土脅迫條件幼苗生長受抑制較小,表現出較強的耐鹽堿性;ZNH05幼苗生長受抑制程度最大,其抗鹽堿性最差。
光合作用是作物物質生產和產量形成的重要因素,它與葉綠素含量密切相關[25]。光合作用也是植物對逆境脅迫最為敏感的生理過程,鹽堿脅迫使6個甜高粱品種的葉綠素含量均降低,抑制了光合作用和植物的生長[17]。本研究亦得出類似結果,龜裂堿土脅迫處理顯著降低了甜高粱葉片的葉綠素含量和光合速率。這可能是由于鹽堿脅迫破壞了葉綠體結構,造成葉片光合器官損傷、葉肉細胞的光合活性下降,最終導致光合速率下降[26]。脅迫條件下,ZNH07和ZNH18葉綠素含量和光合速率降幅較小,仍能保持較高的葉綠素含量和光合速率,說明其葉片光合器官生理活性受鹽堿脅迫影響較輕,表現出較強的耐鹽堿性,這與單株生物量的變化結果相吻合。
植物在逆境脅迫下會發生膜脂過氧化作用造成細胞膜損傷,其往往表現為MDA含量增加和細胞膜透性增大[27]。同時,植物在逆境條件下可通過提高SOD、POD、CAT等保護酶活性,清除活性氧自由基,從而防止其對生物膜結構和功能的破壞,保持一定的耐鹽堿性[28]。許多研究已經證明,MDA含量與植物抗逆能力呈負相關,保護性酶活性與植物抗逆能力呈正相關[29-30]。本研究表明,龜裂堿土脅迫條件下,各甜高粱品種生物膜均受到不同程度損傷,質膜相對透性和MDA含量均顯著升高;同時,葉片中SOD、POD、CAT等保護性酶活性亦顯著升高,表現出不同的耐鹽堿能力。品種ZNH05葉片中3種保護性酶活性增幅較小,丙二醛含量和質膜透性增幅最高,其抗鹽堿性較弱;品種ZNH07和ZNH18葉片中3種保護性酶活性增幅較大,且丙二醛含量增幅最低,其抗鹽堿性較強。
鹽堿脅迫能對植物造成多方面的傷害,影響植物光合作用及體內相關代謝反應[31],從而抑制植物生長[1];同時植物耐鹽性也是多種指標的綜合體現[32]。本研究中,龜裂堿土脅迫處理造成甜高粱質膜相對透性和丙二醛含量增加,葉綠素含量和光合速率降低,不同程度上抑制了植株生長,但脅迫也誘發體內保護酶系統,提高了SOD、POD、CAT活性,表現出一定的耐鹽堿性。綜合本研究中形態指標及生理指標情況可發現,耐性強的甜高粱品種ZNH07和ZNH18在脅迫條件下表現出株高、根長、植株干重等形態指標以及葉綠素含量、光合速率等生理指標降低幅度小,SOD、POD、CAT活性增加幅度大,質膜相對透性及丙二醛含量雖增加,但幅度較小。耐鹽堿性較差的品種ZNH05則表現出光合作用顯著降低,保護性酶活性增幅較小,質膜相對透性及丙二醛含量顯著增加,幼苗生長顯著受抑。
龜裂堿土顯著抑制了不同基因型甜高粱幼苗的生長,其株高、根長、植株干重、葉綠素含量和光合速率等指標均有不同程度降低;葉片質膜相對透性、MDA含量以及SOD、POD、CAT等保護性酶活性呈上升趨勢。不同甜高粱品種對龜裂堿土脅迫的耐受能力存在較大差異,品種ZNH05耐鹽堿能力較差,ZNH07和ZNH18則表現出較強的耐鹽堿性,但是其耐鹽性綜合評價及耐鹽機制還有待于進一步研究。
[1]李曉宇,藺吉祥,李秀軍,等.羊草苗期對鹽堿脅迫的生長適應及Na+、K+代謝響應[J].草業學報,2013,22(1):201-209.
[2]呂金印,郭濤.水分脅迫對不同品種甜高粱幼苗保護酶活性等生理特性的影響[J].干旱地區農業研究,2010,28(4):89-93.
[3]張體彬,康躍虎,胡偉,等.寧夏銀北地區龜裂堿土鹽分特征研究[J].土壤,2012,44(6):1001-1008.
[4]殷允相.龜裂堿土的形成、性質及改良途徑[J].土壤通報,1985,(5):206-208.
[5]李躍進,烏力更,蘆永興,等.燃煤煙氣脫硫副產物改良堿化土壤田間試驗研究[J].華北農學報,2004,19(S1):10-15.
[6]Sakai Y,Matsumoto S,Sadakata M.Alkali soil reclamation with flue gas desulfurization gypsum in China and assessment of metal content in corn grains[J].Soil and Sediment Contam,2004,13:65-80.
[7]孫兆軍,趙秀海,王靜,等.脫硫石膏改良龜裂堿土對枸杞根際土壤理化性質及根系生長的影響[J].林業科學研究,2012,25(1):107-110.
[8]樊帆,韓立樸,劉祖昕,等.氮素對干旱地區甜高粱碳水化合物和理論乙醇產量的影響研究[J].中國農業大學學報,2013,18(4):28-36.
[9]謝光輝,莊會永,危文亮,等.非糧能源植物生產原理和邊際地栽培[M].北京:中國農業大學出版社,2011.
[10]王秀玲,程序,謝光輝,等.NaCl脅迫對甜高粱發芽期生理生化特性的影響[J].生態環境學報,2010,19(10):2285-2290.
[11]張春霞,邊鳴鏑,于慧,等.碳酸鈉脅迫對甜高粱種子萌發和幼苗期生理特性的影響[J].吉林農業大學學報,2011,33(2):134-138.
[12]劉新星,羅俊杰.豌豆幼苗在鹽脅迫下的生理生態響應[J].草業科學,2010,27(7):88-93.
[13]張麗,張華新,楊升,等.植物耐鹽機理的研究進展[J].西南林學院學報,2010,30(3):82-86.
[14]ZHU J K.Plant salt tolerance[J].Trends in Plant Science,2001,6(2):66-71.
[15]Yasar F,Ellialtioglu S,Yildiz K.Effect of salt stress on antioxidant defense systems,lipid peroxidation,and chlorophyll content in green bean[J].Russion Journal of Plant Physiology,2008,55(6):782-786.
[16]吳發遠,葛江麗.NaCl脅迫對甜高粱幼苗抗性酶活性的影響[J].中國農學通報,2009,25(6):136-139.
[17]戴凌燕,張立軍,阮燕曄,等.鹽堿脅迫下不同品種甜高粱幼苗生理特性變化及耐性評價[J].干旱地區農業研究,2012,30(2):77-83.
[18]高俊鳳.植物生理學實驗技術[M].西安:世界圖書出版公司,2000.
[19]鄒琦.植物生理學實驗指導[M].北京:中國農業出版社,2000.
[20]Munns R.Comparative physiology of salt and water stress[J].Plant,Cell and Environment,2002,25:239-250.
[21]魏秀君,殷云龍,蘆治國,等.NaCl脅迫對5種綠化植物幼苗生長和生理指標的影響及耐鹽性綜合評價[J].植物資源與環境學報,2011,20(2):35-42.
[22]吳成龍,周春霖,尹金來,等.NaCl脅迫對菊芋幼苗生長及其離子吸收運輸的影響[J].西北植物學報,2006,26(11):2289-2296.
[23]Claudivan F L,Cambraia J,Oliva M A,etal.Solute accumulation and distribution during shoot and leaf development in two sorghum genotypes under salt stress[J].Environmental and Experimental Botany,2003,49:107-120.
[24]叢靖宇,楊冠宇,張燁,等.不同品種甜高粱幼苗耐受滲透脅迫能力的研究[J].華北農學報,2010,25(4):136-140.
[25]Hao N B,Du W G,Ge Q Y,etal.Progress in the breeding of soybean for high photosynthetic efficiency[J].Acta Botanica Sinica,2002,44(3):253-258.
[26]楊淑萍,危常州,梁永超.鹽脅迫對不同基因型海島棉光合作用及熒光特性的影響[J].中國農業科學,2010,43(8):1585-1593.
[27]杜潤峰,郝文芳,王龍飛.達烏里胡枝子抗氧化保護系統及膜脂過氧化對干旱脅迫及復水的動態響應[J].草業學報,2012,21(2):51-61.
[28]匡藝,李廷軒,余海英.氮素對不同氮效率小黑麥基因型葉片保護酶活性和膜脂過氧化的影響[J].草業學報,2011,20(6):93-100.
[29]祈娟,徐柱,王海清,等.旱作條件下披堿草屬植物葉的生理生化特征分析[J].草業學報,2009,18(1):39-45.
[30]胡夢蕓,張正斌,徐萍.作物幾種光合酶與抗旱節水的關系研究進展[J].干旱地區農業研究,2008,26(2):250-256.
[31]劉愛榮,張遠兵,鐘澤華,等.鹽脅迫對彩葉草生長和滲透調節物質積累的影響[J].草業學報,2013,22(2):211-218.
[32]劉晶,才華,劉瑩,等.兩種紫花苜蓿苗期耐鹽生理特性的初步研究及其耐鹽性比較[J].草業學報,2013,22(2):250-256.