影響林木容器苗根系生長的基質特性研究

朱海軍，生靜雅，劉廣勤，曹福亮

（1.江蘇省農業科學院園藝研究所，江蘇 南京 210014；2.南京林業大學森林資源與環境學院，江蘇 南京 210037）

影響林木容器苗根系生長的基質特性研究

朱海軍1,2，生靜雅1，劉廣勤1，曹福亮2*

（1.江蘇省農業科學院園藝研究所，江蘇 南京 210014；2.南京林業大學森林資源與環境學院，江蘇 南京 210037）

綜述了基質的理化性質對林木容器苗根系生長的影響，容器苗基質應具有良好的物理性狀，有較好的保水、保肥、透氣、排水能力，有合理的容重和通氣孔隙度，此外，還要有良好的化學性狀，弱酸性，pH值5.5 ~ 6.5；基質的物理性質比化學性質更為重要，如果物理性質比較穩定，則苗木所需養分可通過定期定量施肥來實現，但不同的理化性狀相互影響，共同決定著基質的理化特性。

基質特性；林木；容器育苗；根系形態功能

容器育苗是目前世界各國廣泛應用的苗木生產技術，相比傳統的大田生產，容器育苗優勢明顯，在造林中占的比重越來越大。與裸根苗和包裹根球的苗木相比，容器苗更容易處理和運輸，而且損傷較少；受季節限制，大田中所育苗木的出圃和銷售時間短，容器苗則可以在任意生長季節運輸，因而提高了特別是寒冷氣候下苗木的市場流通；同時容器育苗不需要挖穴，也減少了勞動用工和起苗的機械費用[1]。

容器育苗的最大優勢在于其移栽后的成活率高[2]。移栽后的水分脅迫可能是限制植株生長的主要因子，而且是移栽失敗的主要原因，這在容器育苗中尤其如此[3]。Mathers等[4]對高度和胸徑相當的美國金紅楓、觀賞海棠、加拿大紫荊和美國紅橡木容器苗與裸根苗進行了2 a的研究，結果表明容器苗在成活率、高度、粗度等方面明顯優于裸根苗。

容器育苗能保證苗木根系的完整，減少移栽時根系損失，提高移栽成活率。而大田苗在起苗及包裝過程中，根系總量 30%以上的細根殘留在土壤中，或被破壞[5]，這些細根通常具有吸收水分和養分的功能，當其被破壞或損失后，植株就處于脅迫環境，表現為生長衰弱甚至死亡[6]。

根系完整是容器苗優于大田苗的主要特點，因此，了解容器苗根系生長的限制因素非常重要，本文綜述了影響容器苗生產的基質特性及研究進展。

容器基質是培育容器苗的關鍵，除支持、固定植株外，基質還為植株提供穩定協調的水、氣、肥結構，使來自營養液的養分和水分得以中轉，供植物根系選擇吸收。理想的苗圃育苗基質應該具有含鹽低、陽離子交換能力強、適宜的理化性質、無蟲害、成本低、易獲取、性質穩定、重量輕等特點[7]。目前常用的育苗基質有：松樹皮、闊葉樹皮、河沙、園土、工業粘土、堆肥、肥料、淤泥、稻殼、花生殼、食用菌廢料、泥炭、椰棕、鋸末、蔗渣、珍珠石、蛭石、橡膠碎屑、軋棉廢料等[8]。

1 基質物理性質對容器苗根系生長的影響

對于容器育苗基質而言，物理性狀是決定容器苗好壞的決定性因素。基質物理性質包括通氣孔隙度、持水率、總孔隙度、細顆粒比例以及土壤密實度等，影響著容器苗根系的生長形態和功能。合理的基質成分配比是林木能否培育成功的基本條件之一，是各種性狀綜合作用的結果[9~10]。因此，把握基質物理性質對根系生長的影響具有重要意義，例如生產中可以通過選擇容器類型、灌溉制度等平衡各組分間的相互制約。長期以來，國內外很多專家學者對此做了大量的研究[11]。

1.1 孔隙度和持水力

通氣孔隙度是指去除自由水后基質中的通氣孔隙量；持水力是去除自由水后基質中水的含量；總孔隙度是基質中可填充水分和空氣的孔隙體積。通氣孔隙度是容器苗生產中不可忽視的重要因子，持水力對根系生長的影響次之，因為充足的氧氣是根系生長和功能的重要保證，通氣性差的基質限制根系的生長發育[17]。基質通氣孔隙度過小導致植物生長緩慢，而且容易受凍害、病蟲害等脅迫的危害。通氣孔隙度過大的基質保水性能差，必須增加灌溉次數以維持植株生長所需水分。

對于基質的物理性質，目前尚沒有統一而被廣泛認可的標準[12]。在林木容器育苗中，一般認為適宜通氣孔隙度為26.56% ~ 42.24%，總孔隙度要在54%以上[13]；理想的基質總孔隙度為70% ~ 90%，通氣孔隙度不低于15% ~ 20%[14]。也有研究建議將基質的通氣孔隙度、總孔隙度、持水力控制在20% ~ 30%、50%以上、20% ~ 25%[15]；Yeager等[16]認為基質通氣孔隙度、總孔隙度、持水力范圍應分別在10% ~ 30%、50% ~ 85%、25% ~ 35%；有關研究認為10% ~ 20%的基質通氣孔隙度適宜多數植物，但有的植物在通氣孔隙度達15%時排水不暢[17]。很多研究認為基質通氣孔隙度上限為30%。Ownley等[18]研究發現，疫病引起的根系腐爛與基質通氣孔隙度和總孔隙度無關，而與基質密實度和持水力密切相關；通氣孔隙度大于20%可保證根系正常生長并維持根系細胞膜完整性，并減少疫病菌的侵染。

基質通氣孔隙度和持水力受基質顆粒大小、分布、組成、密實度以及年代等因素的影響，適宜的通氣孔隙度和持水力對于制定合理的培育措施具有重要意義。

1.2 基質顆粒大小

容器苗生產中的基質顆粒大小不一，通常分類是將粒徑大于0.8 mm的定義為粗粒，粒徑小于0.5 mm的為細粒。研究表明，小于0.3 mm的毛細管孔隙在灌水后能保留大部分水分，而大于0.3 mm的非毛細管孔隙僅保留少量水分[19]；粗粒組成對提高基質通氣孔隙度有利，但不利于基質的保水、保肥；細粒組成提高了基質的持水力和養分交換能力。

提高細顆粒比例使基質通氣孔隙度降低、排水不暢，導致基質缺氧進而影響根系生長和功能。Beeson[20]研究發現，由于基質中堆肥比例超過40%，小于0.5 mm的細顆粒比例增加，導致基質通氣孔隙度降低，使兩種常綠植物的根系生長受到影響。然而，Robbins[21]報道稱，一般認為對移栽成活不利的基質（孔隙度＜10%，細顆粒＜65%）對3種木本植物的生長卻沒有影響。可見，不同植物種類對基質通氣孔隙度的要求也不一樣。

提高粗顆粒的比例或使用較深的容器可以增加基質通氣孔隙度，但粗顆粒比例提高導致基質持水力降低，水肥利用率下降，植物生長勢減弱。因此，了解基質組分的大小、分級對調控基質的通氣性、提高水肥利用非常重要。目前研究主要集中在顆粒大小、分布對基質持水力和通氣孔隙度的影響方面，而對水肥利用率影響的研究則相對較少。

1.3 基質密實度

基質密實度是指單位體積基質的重量。密實的基質通氣孔隙度減小，影響根系形態和植物生長。Yeager等[16]研究認為，容器育苗基質理想的密實度是0.19 ~ 0.7 g/cm3。一定時間沉積后，基質密實度會發生改變，以體積比為8：1的松樹皮和河沙為例，經過一段時間和新配制基質的密實度分別為0.19和0.17 g/cm3，56 d后兩種基質的密實度均增加到0.32 g/cm3[12]。

通常情況下，基質密實度達到一定閥值將影響根系及整株植物的生長。Ferree等[22]對密實度1.2 g/cm3和1.49 g/cm3基質中蘋果苗的形態特征進行了研究，發現前者根系干重要高于后者；基質密實度增加到1.5 g/cm3，蘋果株高、葉面積、葉片長度及根、莖、葉干重均減小。栽植于密實度1.7 g/cm3壤土（46%沙土＋47%粉土＋7%黏土）中時，小干松的松針變短、根系干重降低[23]。

基質密實度是影響容器苗生長的主要因素，但它對苗木光合作用的影響并不大，說明密實基質限制植株生長并不是碳供應減少的問題。Wilson等[24]對腐殖土和泥炭中一年生鼠尾草的生長狀況進行了比較，發現腐殖土密實度高，顆粒密度大，植株生長量減小。

對多數植物種類而言，密實的基質能促進植株生長但影響苗木質量。Zahreddine等[25]比較了密實度0.71 ~ 1.01 g/cm3、0.39 g/cm3基質（V蛭石：V泥炭:V珍珠巖= 1：1：1）中苗木的根冠比，發現前者要高于后者，但密實基質中根系畸形問題更嚴重；1.01 ~ 1.10 g/cm3的基質密實度導致根系卷曲，影響植物移栽后的田間表現。

關于基質密實度影響木本植物根系生長的研究較少。雖然很多地區的土壤密實度較高，但經過一定的預處理能部分減輕其對一些植物的脅迫，將根系預先置于低氧、密實、水分利用率較低的條件下，對密實度較高的基質中生長的植物有利。容器育苗中基質密實度高的問題普遍存在，而且影響植株移栽后成活率，相關研究也證明了這一點，密實度較高的基質中植株地上和地下部生物量也較高，但根系畸形發生率增加[25]。

苗木栽植過深容易造成根系缺氧窒息，影響植株生長并最終死亡，是造林中一個重點關注的問題。很多植物可忍耐一定的栽植深度，但石楠科及其它淺根系植物對栽植深度比較敏感[26]。基質密實度、栽植深度對苗木移栽成活率的交互影響是未來研究的方向。

1.4 基質分解

基質組分的物理性質隨時間的延長而發生變化，最終影響植物根系的生長[27]，因此選擇基質組分要考慮其物理性質和穩定性。樹皮透氣性好，特別是與泥炭混合后效果更佳，是林木容器育苗中常用的基質組分。粗木屑分解性好，未分解時通氣孔隙度很高，但快速的分解使其通氣孔隙度迅速下降。樹皮木質素含量較高而分解較難，硬質樹木的樹皮具有45%的纖維素和55%的木質素，而軟質樹木樹皮纖維素、木質素含量分別為10%、90%，因此前者比后者更容易分解。與加入木屑相比，添加樹皮的基質通氣孔隙度更加穩定。雖然珍珠巖和蛭石不能分解，但當壓實或者蛭石含量較高時基質通氣孔隙度會下降。

不同基質的組分的C/N也不同，例如木屑1 000：1、稻殼500：1、針葉樹樹皮300：1、硬質樹樹皮150：1、椰棕80：1、泥炭58：1。通常情況下，C/N較高的基質更容易固著肥料中的營養，降低肥料利用率。

1.5 腐熟基質

腐熟基質在容器育苗中的應用越來越多，有時甚至取代了泥炭的使用。腐熟基質對容器苗根系生長的影響是基質理化性質和生物因子的綜合效應。隨著時間的變化，腐熟基質的理化性質如持水力、通氣孔隙度、酸堿度等也發生變化[28]。與添加泥炭相比，添加腐熟物質后基質通氣孔隙度變化更大，一定時間后腐熟基質容重改變，影響根系生長和功能[29]。Bunt[30]研究了腐熟基質對植物生長的影響，發現一定時間后腐熟基質密實度改變，影響根系生長和功能。腐熟后基質中粗顆粒減少，基質通氣孔隙度降低，引起根系漬害和缺氧，因此，添加腐熟物質一般不超過基質總體積的50%。腐熟的動物殘體通常具有較高的EC值和營養水平，一般占容器體積的10%~30%。腐熟后物質通常具有堿化效應，因此配制基質時不必再添加堿性物質和微量元素肥料[12]。

相關研究表明，不同基質勢下腐熟基質的水勢是一般土壤的2.5 ~ 4.5倍[31]。由于具有比一般土壤更小的孔隙度，腐熟基質的持水力更強。在1份松針中添加3份腐熟棉殼后，基質的物理性狀尤其是持水力顯著提高，既使減少一定灌溉量也不會影響植株生長[32]。基質腐熟后也能促進植株生長，減小因疫病引起的根系腐爛造成的損失[33~34]。Hoitink等[35]研究發現，在基質中添加腐熟物質，就像加入抗菌劑一樣抑制根系的腐爛。在大田以及容器生產中，添加腐熟物質的基質均表現出一定的抗病性[34]。

2 基質化學性質對容器苗根系生長的影響

基質的酸堿度、陽離子交換量、可溶鹽等對容器苗根系的生長具有重要影響。了解基質化學性質對基質的選擇非常重要，例如通過加入其它基質、化學物質和肥料等措施，可以提供植物生長所需營養、減小潛在的毒害。

2.1 基質的pH

基質pH是土壤溶液中可溶性H+的反映，與根系獲取和利用營養物質的能力密切相關。不同植物對基質pH要求也不一樣，很多植物僅在有限的H+范圍內生長良好，在基質pH不適宜的情況下，植物生長表現出營養過剩或缺乏、發育受阻、生長不良。

通常情況下，含20%園土的基質pH范圍在（5.4 ~ 6.0）到（6.2 ~ 6.8）。基質pH過高，Al3+、Fe3+和Mn2+發生沉淀，利用率降低。在pH較高的基質中，植物可能表現出Fe、B、Zn、Mn、Cu和Mo的缺乏；由于P與Ca能形成不溶性的磷酸鈣，在pH較高的基質中，植物也可能出現P的缺乏。在pH較低的基質中，植物可能表現出Fe、Zn、Mn、Cu的毒害作用，Ca或Mg的缺乏，NH4+的敏感以及PO42－淅出。調整基質的pH可以在一定程度上改善微量元素缺乏。

2.2 陽離子交換能力、可溶鹽和肥料

陽離子交換量CEC是指土壤膠體所能吸附各種陽離子的總量，它代表了基質的保肥力，用單位重量基質所能吸附陽離子的量表示。陽離子交換量6 ~ 15 meq/100g是大部分容器育苗所推薦的。陽離子吸附顆粒的強度由強到弱的順序依次為：H+＞Ca2+＞Mg2+＞K+= NH4+＞Na+。與大田種植相比，容器苗生產基質中較低的陽離子交換量能增加施肥頻率。

基質中的陰離子包括NO3－、PO42－和SO42－。與其它陰離子一樣，大多數NO3－很容易隨大雨或過量灌溉從容器中滲漏。由于NO3－利用率對植物的生長具有重要作用，且又很容易滲漏，因此基質NO3－水平的定期管理在容器苗生產中很有必要[36]。

可溶性鹽是指來自于肥料、基質中的有機物以及灌溉水中的鹽。不同植物對可溶性鹽的反應不一樣，而且隨著植株年齡不同而變化。可溶性鹽的周期管理可以估算容器育苗系統中溶解鹽總量。測定水中溶解鹽的方法是電導度(EC)，dS/m是EC的常用單位。EC與總溶解鹽的關系是：EC×640 = 總溶解鹽（mg/L）。

在容器苗生產中，肥料種類和施用方式影響著基質的化學性質。選擇肥料時應考慮植物種類、成本、勞動力、基質性質、生長階段、生產時間及灌溉制度等。對于容器苗生產來說，施肥方法主要有穴施、葉面追肥、基質混合和灌溉追肥。緩施肥和控釋肥是容器苗生產中主要的肥料種類，因為其施用簡單且養分不易流失。緩施肥可分為兩類：自然產生有機物質和低溶性有機物質。控釋肥外層常包被聚乙烯、聚丙烯酸樹脂、乳膠、石蠟和硫磺等物質，因而其肥效不會立即釋放。緩施肥和控釋肥的包裝上一般都注明養分釋放的時間，但通常為實驗測得數據，并不是生產條件下的真實反映。因此了解具體生產條件下肥料釋放特性，及其對基質化學性質的影響至關重要。

3 結語

適宜的培養基質是容器苗培育成功與否的關鍵。容器苗基質應具有良好的物理性狀，有較好的保水、保肥、透氣、排水能力，有合理的容重和通氣孔隙度，能穩固苗木根坨；此外，還要有良好的化學性狀，弱酸性，pH值5.5 ~ 6.5，本身不需要肥沃，但營養吸收轉化能力強。國外普遍認為，基質的物理性質比化學性質更為重要，如果物理性質比較穩定，則苗木所需養分可通過定期定量施肥來實現。但不同的理化性狀相互影響，共同決定著基質的理化特性，因此，應加強不同因子的綜合效應研究，以適宜不同苗木種類對育苗基質的要求。

平衡的根系構型是容器育苗培育的核心之一。容器苗根系畸形現象普遍存在，嚴重影響著苗木后期的穩定生長。有限的容器空間限制了苗木根系的自然伸展，很容易出現卷根、纏繞根、歪根等現象，導致造林后苗木錨地不牢、生長緩慢或停滯、抗逆性減弱等后果。根系構型直接反映根系的生長狀況，良好的根系構型可以提高根系對土壤養分和水分利用的效率，也有利于營建穩定的林分。苗木根系形態、分布除與自身的生物學特性有關外，基質理化性質也是重要的影響因素，容器苗根系形態受基質及其理化性狀、容器大小和形狀、容器體積的影響[37]。苗木根系的分布可以通過控制基質水分來實現；基質密實度則影響根系的穿透能力等。

研究表明，根系形態受肥料[38]、灌溉[39]等因素的影響。苗木培育中的水肥調控措施可以改變基質的理化性質，從而影響根系的形態。當前，容器苗生產中的灌溉和施肥往往依靠經驗，常出現因灌溉、施肥不當，造成苗木生長受抑制或者肥料浪費的現象。施肥種類、施肥比例、施肥量、施肥時期、灌溉水質、灌溉方法、灌溉量、灌溉時間、灌溉頻率等肥水管理措施影響著基質的理化性質，從而影響苗木根系的生長、發育及形態構型。因此，應根據不同苗木的肥水需求規律，加強具體管理技術措施的研究，最終實現養分、水分的精確化管理，提高水肥利用率和苗木質量。

綜上所述，在林木容器苗生產中，基質的理化性質是影響根系生長和苗圃建立最重要的因素之一，各種因子相互作用，共同影響著植株根系的生長和構型。因此，應加強基質理化性質與容器苗質量相互關系的研究，加強基質理化性質精準化調控技術的研究，加強生物因子對影響容器苗根系構型的研究，保證基質穩定的理化性質和養分利用，更好地克服不利容器苗生長及發育的限制因子。

[1] Gilman E F, Beeson R C, Jr.Nursery production method affects root growth[J].J Environ Hor, 1996, 14（2）：88－91.

[2] Gilman E F.Effect of nursery production method, irrigation, and inoculation with mycorrhizae-forming fungi on establishment of Quercus virginiana[J].J Arboric, 2001, 27（1）：30－39.

[3] Ferrini F, Nicese F P, Mancuso S, et al.Effect of nursery production method and planting techniques on tree establishment in urban sites: preliminary results[J].J Arboric, 2000, 26（5）：281－283.

[4] Mathers H M, Case L T, Grosskurth E, et al.Field caliper tree production using retractable roof greenhouse grown liners[A].Chatfeld J A, Draper E A, Dyke D E, et al.Ornamental plants annual reports and research reviews[M].Columbus, The Ohio State University Ohio Agricultural Research and Development, 2005.129－132.

[5] Thomas P A.Trees: their natural history[M].Cambridge, Cambridge University Press, 2000.

[6] Harris J R, Gilman E F.Production method affects growth and post-transplant establishment of 'East palatka' holly[J].J Am Soc Hor Sci, 1993, 118（2）：194－200.

[7] 翟永生，翟永在，王恩和，等.哲盟地區樟子松容器育苗現狀及發展[J].內蒙古林業調查設計，1999（4）：139－140．

[8] 周躍華，聶艷麗，趙永紅，等.國內外固體基質研究概況[J].中國生態農業學報，2005，13（4）：40－43.

[9] Jones S B, Or D.Design of porous substrate for optimal gas and liquid fluxes in plant roots[J].Soil Sci Soc Am J, 1998, 62 （3）：563－573.

[10] Raviv M, Wallach R, Blom T J.The effect of physical properties of soilless substrate on plant performance-a review[J].Acta Hor, 2004（644）：251－259.

[11] Altland J E.Physical properties of container media[EB/OL].http://oregonstate.edu/dept/nursery-weeds /feature_articles/physical_properties/ physical_properties.html.2006-09-29.

[12] Bilderback T E, Warren S L, Owen J S, et al.Healthy substrates need physicals too![J].Hort Technol 2005, 15（4）：747－751.

[13] 李永峰.油松、華山松及白皮松容器育苗基質配方研究[J].科技情報開發與經濟，2008，18（34）：95－97.

[14] 康紅梅，張啟翔.容器育苗中幾項重要技術的研究進展[J].北京林業大學學報，2001，23（S2）：71－73.

[15] Fonteno W E.Choose the right container and medium [J].Greenhouse Grower, 1987（5）：66－71.

[16] Yeager T H, Gilliam C H, Bilderback T E, et al.Best management practices guide for producing container-grown plants [R].Atlanta:Southern Nursery Association, 1997.

[17] Jarvis B, Calkins J B, Swanson B T.Compost and rubber tire chips as peat substitutes in nursery substrate: effects on chemical and physicalsubstrate properties[J].J Environ Hor, 1996（14）：122－129.

[18] Ownley B H, Benson D M, Bilderback T E.Physical properties of container media and relation to severity of phytophthora root rot of rhododendron[J].J Am Soc Hor Sci, 1990, 115（4）：564－570.

[19] Argo W R.Root medium physical properties[J].HortTechnology, 1998, 8（4）：481－485.

[20] Beeson R C, Jr.Composted yard waste as a component of container substrates[J].J Environ Hor, 1996, 14（3）：115－121.

[21] Robbins J A.Effect of substrate type on the growth of container-grown woody ornamentals[R].Arkansas: Southern Nurserymen Association Research Conference, 2002（47）：67－72.

[22] Ferree D C, Streeter J G, Yuncong Y.Response of container-grown apple trees to soil compaction[J].Hor Sci, 2004, 39（1）：40－48.

[23] Conlin T S S, Driessche R V D.Short term effects of soil compaction on growth of Pinus contorta seedlings [J].Can J For Res, 1996, 26（5）：727－739.

[24] Wilson S B, Stoffella P J.Graetz D A.Compost-amended media and irrigation system influence containerized perennial Salvia[J].J Am Soc Hor Sci, 2003, 128（2）：260－268.

[25] Zahreddine H G, Struve D K, Quigley M.Growing Pinus nigra seedlings in Spinout-treated containers reduces root malformation and increases growth after transplanting[J].J Environ Hor, 2004, 22（4）：176－182.

[26] Cameron R W F, Harrison-Murray R S, Scott M A.The use of controlled water stress to manipulate growth of container-grown rhododendron cv.Happy[J].J Hor Sci & Biotechnol, 1999（74）：161－169.

[27] Allaire-Leung S E, Caron J, Parent L E.Changes in physical properties of peat substrates during plant growth[J].Can J For Res, 1999, 79（1）：137－139.

[28] Kraus H T, Mikkelsen R L, Warren S L.Container substrate temperatures affect mineralization of composts[J].HortScience, 2000, 35（1）：16－18.

[29] Raviv, M, Medina S.Physical characteristics of separated cattle manure compost[J].Compost Sci Util, 1997, 5（3）：44－47.

[30] Bunt A C.Some physical properties of pot plant composts and their effect on plant growth[J].Plant Soil, 1961, 15（3）：228－242.

[31] Serra-Wittling C, Houot S, Barriuso E.Modification of soil water retention and biological properties by municipal solid waste compost[J].Compost Sci Util, 1996, 4（1）：44－52.

[32] Cole D M, Sibley J L, Blythe E K, et al.Effects of cotton gin compost on substrate properties and growth of azalea under differing irrigation regimes in a greenhouse setting[J].Hort Technol, 2005, 15（1）：145－148.

[33] Hoitink H A J, DeCeuster T J J.Using compost to control plant diseases [J].Biocycle, 1999, 40（6）：61－64.

[34] Hoitink H A J, Inbar Y, Boehm M J.Status of compost-amended potting mixes naturally suppressive to soilborne diseases of floricultural crops [J].Plant Dis, 1991, 75（9）：869－873.

[35] Hoitink H A J, Stone A G, Han D Y.Suppression of plant diseases by compost[J].Hort Science, 1997, 32（2）：184－186.

[36] Mathers H M.A place to stand and a place to grow [J].Am Nurseryman, 2004, 199（6）：26－31.

[37] Aphalo P, Rikala R.Field performance of silver-birch planting-stock grown at different spacing and in containers of different volume[J].New For, 2003（24）：93－108.

[38] Jacobs D F, Rose R, Haase D L, et al.Fertilization at planting inhibits root system development and drought avoidance of Douglas-fr (Pseudotsuga menziesii) seedlings[J].Ann For Sci, 2004（61）：643－652.

[39] Bayley A D, Kietzka J W.Stock quality and feld performance of Pinus patula seedlings produced under two nursery growing regimes during seven different nursery production periods[J].New For, 1997（13）：34－356.

Reviews on Substrate Properties for Container Seedlings Cultivation

ZHU Hai-jun1,2，SHENG Jing-ya1，LIU Guang-qin1，CAO Fu-liang1*
（1.Institute of Horticulture, Jiangsu Academy of Agricultural Sciences, Nanjing 210014, China; 2.College of Forest Resources and Environment, Nanjing Forestry University, Nanjing 210037, China）

Reviews were made on properties of different substrates for container seedlings cultivation.Adequate drainage and aeration, bulk density and aeration porosity of container substrates is necessary in the production of quality nursery seedling.Besides, faintly acid of substrates with pH of 5.5-6.5 has better effect on the growth of container seedlings.

substrate properties; container seedlings; root morphology and function

S723.1

A

1001-3776（2014）06-0093-06

2014-06-29；

2014-10-10

2011年江蘇省林業三項工程項目（lysx〔2011〕14）

朱海軍（1981－），男，山東濰坊人，助理研究員，博士生，從事薄殼山核桃栽培及植物生理生態研究；*通訊作者。