劉 穎,魏希穎
陜西師范大學生命科學學院應用微生物學實驗室,西安 710119
內生菌對植物次生代謝產物的轉化是內生菌利用其胞內或胞外的一些酶或特定化學物質將植物體產生的一種物質轉化為另一種物質的過程[1]。此轉化可用于獲得新的活性成分和提高植物次生代謝產物的含量[2]。由于野生藥用植物資源短缺,有些產生的次生代謝產物不利于人體吸收或毒副作用大等,因此提高藥用植物次生代謝產物的含量,開發新的藥用活性成分至關重要。目前用于提高植物體內次生代謝產物含量的方法有多種,例如篩選高產細胞系、使用生物或非生物誘導子、植物組織培養等[3]。考慮到植物生長周期長、受環影響大,而內生菌用于促進藥用植物次生代謝產物的積累以及產生新的活性成分具有繁殖快、生物量大、可塑性強,且轉化反應專一有效、條件溫和,操作簡單、產物收效率高等特點,成為當前醫學和生物學領域研究的熱點。本文主要從內生菌對植物次生代謝產物的轉化以獲得新的活性成分和提高植物次生代謝產物的含量兩方面進行綜述。
內生菌轉化體系可以利用內生菌代謝產物和植物中的某些物質反應產生新的化合物或利用植物體內的有效成分為前體物質,經內生菌代謝產生新的活性成分[4]。通過內生菌對藥用植物次生代謝產物的轉化,可以產生一些新的化合物,這為新藥研發提供了新思路。
彭清忠等[5]從姜黃根莖中篩選到一株能轉化姜黃素的內生真菌。轉化產物為去甲基姜黃素和二去甲基姜黃素。去甲基姜黃素的抗氧化、抗炎癥的活性比姜黃素高。Denise Z.L.Bastos 等[6]利用內生菌炭疽菌對白樺脂酸氧化,轉化產生了樺木酮酸,而這種氧化反應與白樺脂酸和樺木酮酸在哺乳動物體內的代謝途徑相似,這為研究藥物代謝途徑提供了新思路。付少彬等[7]從藥用植物蛇足石杉的莖和葉中篩選出了能轉化烏蘇酸的4 株內生菌,豐富了烏蘇酸的構型。任娜[8]采用超高效液相色譜和GCMS 技術,研究了紅豆杉內生真菌對艾葉油的生物轉化,產生了新的萜類物質。Keyller Bastos Borges等[9]發現了Phomopsis sp.,Glomerella cingulata,Diaporthe phaseolorum,Aspergillus fumigatus(VR12)四種內生真菌對硫醚嗪進行立體選擇性轉化的效果顯著。
內生菌不僅可以自身合成代謝產物,而且可以誘導宿主植物次生代謝產物的合成,提高植物次生代謝產物的含量。內生菌可以利用植物體內活性成分的結構類似物為前體,將其轉化為已有的活性成分[2]。
2.1.1 內生菌組分對植物次生代謝產物的影響
內生菌常被分為菌液濃縮物或提取物、菌絲提取物、菌絲細胞壁降解成分、肽類、蛋白質和糖類等不同組分[10]。內生菌的不同組分含有的誘導成分及含量不同,對宿主的誘導作用亦會有差別。張瑞芬等[11]用內生菌尖孢鐮刀菌Dzf17 的滅活菌絲誘導盾葉薯蕷無菌苗和培養細胞,皂苷元產量比對照組提高了2.865 倍和2.013 倍。用菌液濃縮物誘導盾葉薯蕷無菌苗和培養細胞后皂苷元產量比對照組提高了1.522 倍和1.757 倍。Peiqin Li 等[12]從內生菌絲多糖中提取的寡糖DP4,DP7 和DP10 對盾葉薯蕷細胞中薯蕷皂苷元含量影響各不相同。Vinod Kumar 等[13]比較了印度梨形孢的兩種狀態的菌液提取物對亞麻植物的PT、6-MPT 含量影響。發現將3%的兩種菌液提取物分別添加到植物毛狀根懸浮細胞中培養48 h 后,添加過濾滅菌的菌液提取物使足葉草毒素、6-甲氧基足葉草毒素含量達到233.8、131.9 mg/L,分別比原來提高了3.8 倍和4.4 倍。而添加高壓滅菌的菌液提取物,足葉草毒素、6-甲氧基足葉草毒素的含量達到149.3、77.5 mg/L。Kiran D.Pawar 等[14]將兩種內生真菌黑孢霉和莖點霉菌的菌液提取物和菌絲粉末與來自植物葉和莖的愈傷組織共培養,發現對4 種代謝物含量影響不同。王劍文等[15]用不同的方法提取內生真菌細胞壁物質,結果4 種制備方法所得到的誘導子誘導黃花蒿發根中青蒿素積累的作用不同,其中利用脫脂脫蛋白酸解法提取的誘導子可以最大程度地促進青蒿素的合成。
2.1.2 內生菌的添加量對植物次生代謝產物的影響
內生菌誘導子的誘導效果因其添加量不同而表現出一定的差異。真菌誘導子的濃度與產物積累有反應飽和型和最適濃度型,在藥用植物細胞誘導培養中主要是最適濃度型[16]。次生代謝產物的積累隨著內生菌誘導子濃度的增加而增加或對誘導子有最適濃度要求。
Archana Prasad 等[17]研究了不同濃度(0.5%、1.0%、1.5%)的尖孢鐮刀菌的菌絲提取物與30 天的植物腋芽組織培養體系共培養后,0.5%的誘導子使積雪草苷的積累量(0.94 mg/g)比對照組(0.44 mg/g)增加了2 倍多,1,0%和1.5%的誘導子使體系中積雪草苷的含量僅達到0.33mg/g 和0.18 mg/g。王劍文等[15]研究了不同濃度內生真菌誘導子加入培養20 d 的黃花蒿發根中,當誘導子濃度為0.4 mg/mL 時,青蒿素含量達到最高(9.26 mg/L)。Tao JH 等[18]研究了不同濃度的內生真菌Rhizoctonia SP1.誘導子與茅蒼術懸浮細胞共培養9 d 后,對蒼木素含量影響。當加入40 mg/L 的誘導子時,蒼木素的含量達到最大(28.06 μg/L),比對照組提高了48.3%。Gangping Hao 等[19]發現不同濃度的內生真菌Sphaeropsis sp B301 誘導子(25、50、75、100 μg glc eguiv/mL)和8 d 的銀杏細胞懸浮液共培養4天,當添加了75 μg glc eguiv/mL 的誘導子時黃酮類的含量最高,比對照組提高了1.8 倍。
2.1.3 內生菌與植物共培養時間對植物次生代謝產物積累的影響
內生菌與植物共培養時間不同,植物次生代謝產物的積累表現出一定的差異。
Yu Wang 等[20]研究了內生真菌AL12 菌絲誘導子對藥用植物蒼術中蒼術酮含量的影響。誘導子與蒼術共培養50 d,隨著共培養時間的延長,蒼術酮的積累量逐漸增多,第50 d 達到26.28 μg/g,比對照組增加了4 倍多。Marco Mucciarelli 等[21]把內生真菌PGP-HSF 與薄荷葉和根共培養,隨著共培養時間的不同,揮發性物質含量有明顯變化。在內生菌-薄荷根共培養28 d 時,乙酸甲酯的含量比14、21、35 d的高。石岳香等[22]研究了隨著內生真菌與植物懸浮細胞共培養時間的延長,懸浮細胞內生物堿的含量不斷的變化,在前十天比較低,但培養到第四十天,生物堿含量達到最大。Li YC 等[23]研究發現Taxus chinensis var.Mairei 細胞培養液和內生菌Fusarium mairei 共培養10 d 時紫杉醇的含量比共培養5 d 和15 d 的高。
2.1.4 內生菌對植物不同組織、器官中次生代謝產物的影響
內生菌對植物不同組織、器官中次生代謝產物含量影響不同。內生菌作用于植物的不同組織、器官,會引起合成相應次生代謝產物的關鍵基因表達強度和速度不同。
Jisha Satheesan 等[24]將內生真菌印度梨形孢和藥用植物積雪草共培養,檢測積雪草苷含量在葉片和整個植株中都有所增加,比對照組增加了2 倍,而在根中沒有明顯增加。通過Real-time PCR 檢測,發現合成積雪草苷的關鍵基因SQS 在植物體內高水平表達,而BAS 基因在根部低水平表達。Kiran D·Pawar 等[14]把培養相同時間植物葉和莖的愈傷組織分別與40 mg 的內生菌莖點霉菌的菌絲粉末共培養,次生代謝產物紅厚殼素A 的含量在葉的愈傷組織中比對照組提高了751 倍,而在莖的愈傷組織中比對照組提高僅364 倍。
2.1.5 內生菌對植物不同生長階段的次生代謝產物的影響
植物生長到一定階段后,內生菌才可能引起相應代謝物的積累。只有處于生長期的植物細胞才能接受誘導子信號,此時誘導子表現出最強的誘導活性[16]。
Anita K·Brock 等[25]將內生菌(Enterobacter radicincitans DSM 16656)與培養了7 周和10 周的擬南芥葉片組織共培養一定時間。脂肪族芥子油苷在7 周的葉片組織中的含量比對照組中的含量低,而在第10 周的葉片組織中,脂肪族芥子油苷的含量又比對照組高。
內生菌會對植物次生代謝產物含量產生影響可能有以下原因:一是內生菌在宿主細胞中影響宿主光合作用有關物質的積累,這些物質會增加植物營養的攝入,有助于植物次生代謝產物的合成。二是內生菌通過自身的信號轉導途徑調節植物細胞合成次生代謝產物相關的基因,改變這些基因的表達速度和強度,誘導植物體內相應的次生代謝產物的產生和積累[26,27]。Gao FK 等[28]研究了信號轉導對植物次生代謝產物積累的影響。當一種內生菌誘導子加入植物懸浮細胞中,內生菌誘導子能促進一些信號分子(NO、水楊酸、活性氧)的合成,植物的一些次生代謝產物的含量隨著增加。由此推斷這些信號分子會促進這些次生代謝物的積累。三是內生菌與宿主之間存在化合物或遺傳物質的轉移。Marco Mucciarelli 等[21]比較了從內生菌(PGP-HSF)-薄荷根共培養(1)、沒有感染PGP-HSF 的薄荷(2)、從PGPHSF-薄荷根共培養中分離的PGP-HSF(3)三種體系中胡薄荷酮的含量,發現胡薄荷酮同時為(1)與(3)中的主要成分,而在(2)中不含胡薄荷酮。可推斷胡薄荷酮可能是通過根部轉移到PGP-HSF 中。四是內生菌可以合成宿主所不能合成或合成量低的化合物,以此改變宿主代謝產物合成的途徑,進而影響代謝產物的含量[29]。
內生菌通過對植物次生代謝產物轉化為人類提供了豐富的藥用資源。這些次生代謝產物的合成同時有助于激活植物的防御代謝途徑,對植物起保護作用。內生菌對植物次生代謝產物影響的各種因素相互聯系、相互影響,某一因素發生變化,都可能引起次生產物含量的增加或減少。
近年來,關于內生菌對植物次生代謝產物的轉化成為研究的熱點,但此方面研究的廣度、深度均不夠。(1)關于內生菌對植物的轉化是內生菌利用植物體內的前體物質,經過代謝產生新型化合物或提高已有活性成分含量,還是內生菌代謝產物與植物中的一些物質發生反應形成新的化合物或提高已有活性成分含量的機理研究尚淺;(2)目前研究報道很少涉及內生菌與植物相互作用時,與次生代謝產物合成和轉化的相關基因表達的研究;(3)大多數研究僅針對一種內生菌作用于一種植物,很少涉及多種內生菌同時作用于一種植物,對多種菌的協同作用重視不夠。
目前,內生菌對植物次生代謝產物的轉化的研究還處于初級階段。今后可以在以下方面進行深入的研究:(1)轉化機理的研究:從細胞水平上,研究信號分子對內生菌轉化過程的影響;通過分析合成目標代謝產物的關鍵基因,從分子水平分析關鍵基因的表達強度,利用基因重組對次生代謝產物轉化(2)多種內生菌協同作用的研究,達到藥用植物次生代謝產物產量最大化。(3)內生菌轉化過程的優化和放大目前內生菌對藥用植物次生代謝產物的轉化還處于實驗室階段,反應過程的優化和放大,使生產具有可行性和高效性,為工業化生產提供技術支持。
1 Liu QX(劉慶鑫),Li HL(李慧梁),Liu RH(柳潤輝).Application of microbial transformation in natural products research.J Pharm Prac(藥學實踐雜志),2012,30:321-325.
2 Tang YJ(湯亞杰),et al.Simultaneous biotransformation of various chemical compositions from traditional Chinese medicines.Chin J Nat Med(中國天然藥物),2007,5:241-243.
3 Sheela Chandra.Endophytic fungi:novel sources of anticancer lead molecules.Appl Microbiol Biotechnol,2012,95:47-59.
4 Li Y(李羿),et al.Fermented TCM,to open a new field of TCM research and development.Nat Prod Res Dev(天然產物研究與開發),2004,16:179-184.
5 Peng QZ(彭清忠),et al.Transformation of curcumin by endophytic fungus Diaporthe sp.isolated form Curcuma Longa.Letters in Biotechnology(生物技術通訊),2010,21:196-199.
6 Denise ZL.Bastos,et al.Biotransformation of betulinic and betulonic acids by fungi.Phytochemistry,2007:834-839.
7 Fu SB(付少彬),et al.Screening of endophytic fungi from medicinal plant for microbial transformation of ursolc acid.Chin Pharm J(中國藥學雜志),2011,46:1225-1228.
8 Ren N(任娜).Genetic diversity analysis and biotransformation research among endophytic fungi from taxus.Changsha:Central South University(中南大學),MSc.2011.
9 Keyller BB,et al.Endophytic fungi as models for the steresoelective biotransformation of thioridazine.Appl Microbiol Biotechnol,2007,77:669-674.
10 Zhang RF(張瑞芬),Li PQ(李培琴),Zhou LG(周立剛).Research progress of fungal eficitation on growth and secondary metabolite production of plant cultures.Chin Agric Sci Bull(中國農業科學),2008,24:260-264.
11 Zhang RF(張瑞芬),et al.Endophytic fungi from dioscorea zingiberensis and their effects on the growth and diosgenin production of the host plant cultures.Nat Prod Res Dev(天然產物研究與開發),2010,22:11-15.
12 Peiqin Li,et al.Enhancement of diosgenin production in Dioscorea zingiberensis cell culture by oligosaccharides elicitor from its endophytic fungus Fusarium oxysporum Dzf17.Molecules,2011,16:10631-10644.
13 Vinod Kumar,et al.Culture filtrate of root endophytic fungus Piriformospora indica promotes the growth and lignan production of Linum album hairy root cultures.Process Biochemistry,2012:910-917.
14 Kiran D· Pawar,et al.Influence of endophytic fungal elicitation on production of inophyllum in suspension cultures of Calophyllum inophyllum L..Plant Cell Tiss Organ Cult,2011,106:345-352.
15 Wang JW(王劍文),Zheng LP(鄭麗屏),Tan RX(譚仁祥).The preparation of an elicitor from a fungal endophyte to enhance artemisinin production in hairy root cultures of Artemisia annua L..Chin J Biotech(生物工程學報),2006,22:829-834.
16 Wang HY(王和勇),Luo H(羅恒),Sun M(孫敏).Application of elicitor tocell culture of medicinal plants.Chin Tradit Herb Drugs(中草藥),2004,35.
17 Archana Prasad,et al.Fungal elicitor-mediated enhancement in growth and asiaticoside content of Centella asiatica L.shoot cultures.Plant Growth Regul,2012.
18 Tao JH(陶金華),et al.Effect of endophytic fungal elicitors on growth and atractylodin accumulation of cell suspension cultures of atractylodes lancea.Chin J Chin Meter Med(中國中藥雜志),2011,36:27-31.
19 Gangping Hao,et al.Fungal endophytes-induced abscisic acid is required for flavonoid accumulation in suspension cells of Ginkgo biloba.Biotechnol Lett,2010,32:305-314.
20 Yu Wang,et al.Comparison of the effects of fungal endophyte Gilmaniella sp.and its elicitor on Atractylodes lancea plantlets.World J Microbiol Biotechnol,2012,28:575-584.
21 Marco Mucciarelli,et al.Volatile terpenoids of endophyte-free and infected peppermint(Mentha piperita L.):chemical partitioning of a symbiosis.Microbial Ecology,2007,4:685-694.
22 Shi YX(石岳香),et al.Effects of endophytic fungi and its elicitor on suspension cell and alkaloids synthesis of catharanthus roseus.Progress in Modern Biomedicine(現代生物醫學進展),2009,9:886-889.
23 Li YC,et al.Paclitaxel production using co-culture of Taxus suspension cells and paclitaxel-producing endophytic fungi in a co-bioreactor.Appl Microbiol Biotechnol,2009,83:236-239.
24 Jisha Satheesan,et al.Induction of root colonization by Piriformospora indica leads to enhanced asiaticoside production in Centella asiatica.Mycorrhiza,2012,22:195-202.
25 Anita K.Brock,et al.Impact of the PGPB enterobacter radicincitans DSM 16656 on growth,glucosinolate profile,and immune responses of Arabidopsis thaliana.Microb Ecol,2012.
26 Zhang XF(張向飛),et al.Effects of fungal elicitors on accumulation of indole alkaloids in Catharanthus roseus calli.Chin Tradit Herb Drugs(中草藥),2004,35:201-204.
27 Qiao QM(喬卿梅),et al.The application of medicinal plant endophyte in natural medicine development.J Zhengzhou Coll Animal Husbandry Engineering(鄭州牧業工程高等專科學校學報),2008,28:24-27.
28 Gao FK,et al.Signaling effects of nitric oxide,salicylic acid,and reactive oxygen species on isoeuphpekinensin accumulation in Euphorbia pekinensis suspension cells induced by an endophytic fungal elicitor.J Plant Growth Regul,2012,31:490-497.
29 Yao LA(姚領愛),et al.Research development of the relationship between plant endophyte and host.Ecology and Environmental Sciences(生態環境學報),2010,19:1750-1754.