謝 濤,張淑遠,王美桂
(湖南工程學院化學化工學院,湖南 湘潭 411104)
馬鈴薯抗性淀粉消化前后的益生作用與結構變化
謝 濤,張淑遠,王美桂
(湖南工程學院化學化工學院,湖南 湘潭 411104)
制備與純化得到馬鈴薯抗性淀粉及消化抗性淀粉,研究其益生作用與結構變化。結果表明:馬鈴薯抗性淀粉及消化抗性淀粉對雙歧桿菌和乳酸桿菌都有顯著的增殖作用,對大腸桿菌和產氣莢膜梭菌有強抑制作用,對糞腸球菌、梭狀桿菌、兼性細菌沒有影響;它們的發酵液總酸度增大,說明它們能被腸道益生菌發酵利用;馬鈴薯抗性淀粉經消化處理后比表面積增加,經發酵后比表面積更大;馬鈴薯抗性淀粉的平均聚合度較之原淀粉顯著變小,馬鈴薯抗性淀粉或消化抗性淀粉發酵后的平均聚合度降低;馬鈴薯抗性淀粉經消化前后的晶型均為B型,其抗性淀粉及消化抗性淀粉發酵后的晶型都轉變為A型,微晶度、亞微晶度及總結晶度較之發酵前都明顯降低。
馬鈴薯;抗性淀粉;益生作用;結構變化
抗性淀粉作為一種新型的益生元制劑,具有來源廣泛、制備工藝簡單、口感好等優點,在國外已被廣泛研究[1-4]。近些年來許多學者將研究的視角轉向了非糧淀粉資源[5-6]。國內外已有許多關于馬鈴薯抗性淀粉的研究,但大多數研究主要集中在對其制備工藝的優化方面[7-9],而針對馬鈴薯抗性淀粉特別是其消化抗性淀粉的生物活性的研究,尚未引起國內外學者的普遍關注[10-12]。
本實驗采用二次循環壓熱法制備并純化得到了馬鈴薯抗性淀粉,再經人工胃液和人工胃腸液處理制得2 個消化抗性淀粉樣品,然后研究了這3 個樣品的益生作用及其結構變化,以期探討消化前后的抗性淀粉在益生作用過程中可能的結構變化及更多的功能。
1.1 培養基與試劑
選擇性培養基:麥康凱瓊脂培養基(大腸桿菌)、甘露醇氯化鈉瓊脂培養基(雙歧桿菌)、LAMVAB瓊脂培養基(乳酸桿菌)、麥芽糖瓊脂培養基(糞腸球菌)、亞硫酸鹽-環絲氨酸瓊脂培養基(梭狀桿菌)、甘露醇瓊脂培養基(產氣莢膜梭菌)、需氧-厭氧菌瓊脂培養基 美國Life Tech公司。
耐熱α-淀粉酶、糖化酶、胃蛋白酶、胰酶-5.0 美國Sigma公司;其他試劑均為分析純。
1.2 抗性淀粉的制備與純化
制備:用蒸餾水配制質量分數30%的淀粉乳液,調節pH 6.0,沸水浴30 min后,121 ℃高溫高壓處理4 0 min。冷卻,4 ℃放置24 h。重復高溫高壓和冷卻步驟,80 ℃烘干,粉碎過100 目篩得粗抗性淀粉。
純化:取粗抗性淀粉用耐熱α-淀粉酶在70 ℃水解1 h,加入過量糖化酶,55 ℃水解2 h,離心(3000 r/min、30 min),水洗離心多次,最后用體積分數95%乙醇的清洗、干 燥、粉碎,過200 目篩,得純抗性淀粉(resistant starch,RS)。
1.3 胃液、胃腸液消化抗性淀粉的制備
[13]的方法制備人工胃液和人工胃腸液消化抗性淀粉,分別簡稱為DRSAGJ、DRSAGIJ。
1.4 體外厭氧發酵
1.4.1 培養基
改良MRS培養基:以質量分數2%的抗性淀粉或消化抗性淀粉取代MRS培養基中的葡萄糖作為碳源,以2%馬鈴薯原淀粉作為對照。選擇性培養基:同1.1節。
1.4.2 厭氧發酵
取23~31 歲健康男子(此前至少3 個月未注射抗生素,沒有預先服用已知的益生元或益生菌,沒有胃腸病史)的糞便,將糞便用磷酸鹽緩沖溶液制成均勻的懸濁液。取12 個50 mL的錐形瓶,設3 個平行,每個裝入20 mL改良MRS培養基,于121 ℃、105Pa滅菌20 min后,每個錐形瓶接入等量已多次用MRS培養基活化的糞便培養物,密封,37℃厭氧培養至10、20、30 h分別取樣,用于腸道微生物菌群組成和總酸度的測定分析。
1.4.3 腸道菌群分析
取樣品液1 mL,用生理鹽水稀釋一定倍數后涂布于選擇性平板上,于37 ℃需/厭氧培養48~72 h后,使用全自動菌落分析儀計數。
1.4.4 發酵液總酸度測定
參照GB/T 12456—2008 《食品中總酸的測定》法測定每份發酵液的總酸度,并以乳酸含量表示。
1.4.5 發酵殘余物制備
取10 mL發酵液,離心(15 min、3 000×g),沉淀用10 mL蒸餾水清洗3次后烘干,粉碎過100目篩,這些發酵殘余物分別稱為發酵抗性淀粉(fermented resistant starch,FRS)、發酵胃液消化抗性淀粉(FDRSAGJ)和發酵胃腸液消化抗性淀粉(FDRSAGIJ)。
1.5 結構測定
平均聚合度(DP值)測定采用碘吸收法[14];掃描電子顯微分析參照文獻[15]的方法測定;X射線衍射分析參照文獻[16]的方法。
1.6 數據分析
所有數據為3個平行實驗的平均值,且采用SPSS 20.0進行方差分析。
2.1 馬鈴薯抗性淀粉及消化抗性淀粉對腸道菌群生長的影響
馬鈴薯抗性淀粉及胃腸液消化抗性淀粉對腸道菌群生長的影響見表1。發酵至第30小時各種腸道微生物生長已處于衰老期,導致活細胞數目減少。當發酵到20 h后,馬鈴薯抗性淀粉及其胃腸液消化抗性淀粉對雙歧桿菌和乳酸桿菌都有顯著的增殖作用,對大腸桿菌和產氣莢膜梭菌的抑制作用極顯著,對糞腸球菌、梭狀桿菌無影響。馬鈴薯胃腸液消化抗性淀粉比其抗性淀粉對雙歧桿菌、乳酸桿菌增殖效果更明顯,對產氣莢膜菌的抑制作用也更強些,說明抗性淀粉經消化道環境的作用是其發揮益生作用所必需的,即消化抗性淀粉具有更好的益生作用,這與文獻[10,12]報道的結果非常一致。

表1 馬鈴薯抗性淀粉及消化抗性淀粉對腸道菌群生長的影響Table 1 Effects of potato resistant starches before and after digestion on intestinal bacteria lg(CFU/mL)
2.2 發酵液的酸度分析

表2 馬鈴薯抗性淀粉及消化抗性淀粉發酵液的總酸度(以乳酸表示)Table 2 Total acidities of fermentation liquids from resistant starches before and after digestion (expressed as lactic acid) g/L
發酵液的總酸度在一定程度上代表了益生菌,尤其是雙歧桿菌和乳酸桿菌的增殖情況,雙歧桿菌和乳酸桿菌的增殖會促進丙酸、丁酸、乳酸等合成[17]。表2為添加不同馬鈴薯抗性淀粉和胃腸液消化抗性淀粉發酵后的總酸度(以乳酸質量濃度表示)。從表2可知,馬鈴薯抗性淀粉及消化抗性淀粉的發酵液總酸度均比對照值要高(P<0.01),說明抗性淀粉及消化抗性淀粉有利于產生更多的短鏈脂肪酸,而且后者 產生的要多些,這在文獻[18]中也有報道。
2.3 發酵前后馬鈴薯抗性淀粉及消化抗性淀粉的超微結構變化

圖1 發酵前后馬鈴薯抗性淀粉及消化抗性淀粉的超微結構(3 000×)Fig.1 Ultrastructures of resistant starch and digested resistant starch before and after fermentation (3 000 ×)
由圖1可知,經壓熱制備的馬鈴薯抗性淀粉顆粒是層與層堆積而成的疊層結構,表面粗糙;這是因為受壓熱處理后的淀粉分子在冷卻過程中,直鏈淀粉分子相互靠近形成新的雙螺旋并沉降,而且純化作用加速了無定形部分的酶解,剩下高度結晶的直鏈淀粉。馬鈴薯抗性淀粉經人工胃液消化后,由于強酸侵蝕作用,疊層結構上出現大小、長短不一的裂縫,開始崩裂解體(圖1B)。而后經人工胃腸液聯合作用,疊層結構崩解成大小不一、散亂堆積的片層(圖1C)。馬鈴薯抗性淀粉經發酵后,單一的疊層結構崩解,每層裂解成大小不一的片層(圖1D)。人工胃液消化的馬鈴薯抗性淀粉經發酵后,疊層結構最終崩解成大小不一、散亂堆積的片層(圖1E)。而人工胃腸液消化的抗性淀粉發酵后,散亂堆積的片層繼續裂解,更小的片層堆積方式更加有序(圖1F)。
2.4 發酵前后抗性淀粉、消化抗性淀粉的平均聚合度變化
由表3可知,馬鈴薯抗性淀粉的λmax和DP值都比其原淀粉的小,特別是DP值發生了顯著變化。這是由于壓熱處理使部分直鏈淀粉分子斷裂,支鏈淀粉的部分支鏈斷裂轉化為直鏈淀粉,故而抗性淀粉的DP值要比其原淀粉的小;同時直鏈淀粉分子越大,越容易斷裂。消化前后的馬鈴薯抗性淀粉的DP值幾無變化,說明消化作用主要影響抗性淀粉分子的微觀結構。發酵后馬鈴薯抗性淀粉或消 化抗性淀粉較之發酵前的DP值出現了較顯著的下降。再有,經胃腸液消化過的馬鈴薯抗性淀粉經發酵后的DP值比其發酵抗性淀粉經的DP值減小,由此進一步說明胃腸液的消化作用對抗性淀粉在腸道內的益生作用是必要的,表2和圖2也證明了這一點。

表3 馬鈴薯抗性淀粉及消化抗性淀粉發酵前后的平均聚合度Table 3 Average degree of polymerization of resistant starch and digested resistant starch before and after fermentation
2.5 發酵前后抗性淀粉、消化抗性淀粉的結晶度變化

圖2 馬鈴薯抗性淀粉及消化抗性淀粉發酵前后的X射線衍射圖譜Fig.2 X-ray diffraction pat terns of resistant starch and digested resistant starches before and after fermentation
淀粉是主要由A型和B型晶體及少量V型晶體組成的混合物。由圖2、表4可知,馬鈴薯抗性淀粉的晶型為B型,說明在制備抗性淀粉的過程中,其分子鏈通過斷裂、重組,形成了更為穩定的晶體結構。馬鈴薯抗性淀粉經胃液或胃腸液消化后的晶型仍為B型,與抗性淀粉相比,胃液消化抗性淀粉的微晶度、亞微晶度及總結晶度基本沒有變化,但胃腸液消化抗性淀粉亞微晶度與總結晶度有較大降低,說明經過人工胃液的強酸侵蝕與分散作用,增強了人工腸液的消化作用。馬鈴薯抗性淀粉及其消化抗性淀粉經發酵后,晶型都轉變為A型,微晶度、亞微晶度及總結晶度較之發酵前都顯著降低,說明發酵作用對馬鈴薯抗性淀粉及消化抗性淀粉的結晶結構有較大影響。

表4 馬鈴薯抗性淀粉及消化抗性淀粉發酵前后的結晶參數Table 4 Crystallization parameters of resistant starch and digested resistant starches before and after fermentation
馬鈴薯抗性淀粉及消化抗性淀粉對雙歧桿菌和乳酸桿菌都有顯著的增殖作用,對大腸桿菌和產氣莢膜梭菌有強抑制作用,對糞腸球菌、梭狀桿菌、兼性細菌無明顯影響。它們的發酵液總酸度增大,說明它們被腸道益生菌發酵利用產生了更多的短鏈脂肪酸。
馬鈴薯抗性淀粉經人工胃液、胃腸液消化處理后結構越來越疏松,且比表面積增加;馬鈴薯抗性淀粉及其消化抗性淀粉經發酵后,它們進一步裂解為以細小片層為主體的可能具有更大比表面積和堆積密度的結構,這種結構變化可能與抗性淀粉在腸道中發揮的其他生理功能有關。
馬鈴薯抗性淀粉的DP值較之原淀粉顯著變小。消化前后馬鈴薯抗性淀粉的DP值基本沒有變化,說明胃腸液主要作用于抗性淀粉的微觀結構。胃腸液消化過的馬鈴薯抗性淀粉經發酵后的DP值比馬鈴薯抗性淀粉經發酵后的DP值要小。
馬鈴薯抗性淀粉經胃液或胃腸液消化前的晶型均為B型,胃腸液消化抗性淀粉亞微晶度與總結晶度有所降低。馬鈴薯抗性淀粉及消化抗性淀粉經發酵后,晶型都轉變為A型,微晶度、亞微晶度及總結晶度較之發酵前都明顯降低。
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Probiotic Functions and Structural Changes of Potato Resistant Starch before and after Digestion
XIE Tao, ZHANG Shu-yuan, WANG Mei-gui
(College of Chemical Engineering, Hunan Institute of Engineering, Xiangtan 411104, China)
Potato resistant starches before and after in vitro digestion were made and purif i ed. Their probiotic functions and structural changes were intensively studied. The results demonstrated that the undigested and digested resistant starches had good proliferative effects on bif i dobacterium and lactobacillus, but inhibitory effects on Escherichia coli and Clostridium perfringens, and no inf l uence on Enterococcus faecalis, Corynebacterium fusifome or facultative bacteria. The increase in total acidity after fermentation demonstrated that both these resistant starches could be utilized by intestinal probiotics. After digestion, the resistant starch had increased specif i c surface area, which was further increased after in vitro anaerobic fermentation. In comparison with the native starch, average degree of polymerization of the resistant starch was decreased signif i cantly and along with the digested resistant starch, was further reduced after fermentation. Both the resistant starch and its digestion product in vitro were type-B crystals. After fermentation, the crystal type became type A, and the degrees of microcrystallization and submicrocrystallization as well as total crystallinity were obviously decreased compared with those measured before fermentation.
potato; resistant starch; probotic function; structural change
TS235.2
A
1002-6630(2014)15-0105-04
10.7506/spkx1002-6630-201415021
2013-10-21
湖南省自然科學基金項目(2011JJ6009);國家級大學生創新創業訓練計劃項目(201211342014)
謝濤(1970—),男,教授,博士,主要從事再生資源與食品、生物化工研究。E-mail:xt1105@aliyun.com