不同鹽度下半滑舌鰨幼魚非特異性免疫酶活力分析＊

房子恒，田相利，董雙林，戴 超，王國棟

（中國海洋大學海水養殖教育部重點實驗室，山東 青島266003）

鹽度對于魚類的生長及非特異性免疫有顯著影響[1－5]。多數廣鹽性的硬骨魚類可以通過調節體內的離子含量來適應鹽度大范圍的變化，普遍認為魚類存在一個等滲點，當鹽度超出等滲點時會讓機體消耗更多的能量來維持機體的水鹽平衡[6－7]。有研究表明魚類最多可消耗20%～50%的能量來用于滲透壓的調節，也有文獻報道消耗的能量可能只有10%[8]。當水生水生物長期處于高鹽或低鹽脅迫的條件下，往往會引起生物體體質下降，并可能導致死亡[9]。通常魚類具有完善的非特異性免疫系統來抵御外界的環境脅迫，鹽度的變化會對相應的免疫因子產生影響，例如，當魚類長期受到高鹽或低鹽的脅迫時，機體內會產生大量的氧自由基并可能導致氧化性的損傷，而抗氧化酶可以有效的清除這些自由基[10]。因此，魚體各組織器官中非特異性免疫酶活力的變化一定程度上可以作為反映魚體對不同鹽度脅迫適應能力的生理指標。

魚類的滲透調節是身體各個組織器官包括消化系統、排泄系統、皮膚、鰓等組織器官協同作用的結果[11]。其中，鰓及腎臟是魚體中要的滲透壓調節器官，當魚體長期處于高于自身等滲點的水體中時，魚體不斷失水同時會攝入大量的鹽分，此時鰓會通過氯細胞向體外排出離子，腎的濾過作用增強，水的重吸收作用也增強，以維持機體細胞內的低滲環境，相反，當魚體進入低滲甚至淡水環境后，則主要依靠腎臟降低對水分的通透性，排出低滲尿液來維持滲入體內水分與排除水分的平衡，同時鰓也可少量的吸收環境中的離子來維持細胞內高滲的環境[12－13]。而肝臟是魚體重要的新陳代謝器官，參與魚體中抗氧化、糖原合成、分泌膽汁等重要生理過程。因此，當魚體進入非等滲點的環境時，長期的脅迫必然會導致組織器官的代謝功能發生改變，導致更多氧自由基及代謝廢物的產生。

半滑舌鰨（Cynoglossussemilaevis）主要分布在我國黃海和渤海，是一種典型的海水廣鹽性魚類[14]。由于其味道鮮美、經濟價值較高，近幾年來半滑舌鰨逐漸成為我國重要的養殖種類之一。盡管在廣東地區有低鹽度養殖半滑舌鰨的實踐（鹽度5左右），但一般認為其最適生長鹽度范圍為20～32[15]。目前，有關鹽度對半滑舌鰨生長及生理生態學的影響已有相關報道[16－17]，不過有關鹽度對半滑舌鰨非特異性免疫能力的研究還未見報道。在目前研究的基礎上，本研究進一步擴大了實驗鹽度的范圍，將半滑舌鰨幼魚生存水體鹽度最低降低至淡水，并延長了半滑舌鰨幼魚在不同鹽度條件下適應的時間，進一步對不同組織中的非特異性免疫酶活力進行了研究，以期豐富半滑舌鰨的生物學資料，為提高半滑舌鰨的海水養殖效率以及開發淡水養殖提供更多的理論依據。

1 材料與方法

1.1 實驗魚的來源、暫養和馴化

實驗所用半滑舌鰨幼魚購自萊州明波水產有限責任公司，挑選規格較大且個體強壯，活力較強的幼魚。實驗用魚運至中國海洋大學岙山衛實驗基地后，暫養于多個水族箱中。暫養期間溫度控制在（21±0.5）℃，24h充氣泵充氧，日換水量100%，光照周期14L∶10D。穩定7d后，待其適應實驗室環境條件后，進一步篩選相近規格的半滑舌鰨幼魚，開始緩慢馴化至實驗所需鹽度。先以每天鹽度5的速度由鹽度30馴化至鹽度25、20、15，之后以每天鹽度2的速度馴化至鹽度10和淡水，然后在各鹽度下對半滑舌鰨馴養7d，以使其適應新的水環境條件。低鹽度海水由天然海水（鹽度30左右）與曝氣自來水調配而成。

1.2 實驗設計和管理

本實驗設置淡水、鹽度5、10、20和30共5個鹽度處理，每個處理設置5個重復，每個重復放置7尾規格相似、無病健康的半滑舌鰨幼魚。每天7∶00和19∶00投喂配合飼料（廣東越群海洋生物研究開發有限公司，廣東揭東），30min后收集殘餌，日投喂量為魚體重的3%～5%，其它控制條件同暫養條件。整個實驗于2011年9月28日開始，11月27日結束，實驗時間為60d。

1.3 樣品的采集及酶活的測定

實驗結束后所有幼魚經24h饑餓處理后全部稱重取樣，取樣前對幼魚進行MS－222麻醉處理，取其肝臟、肌肉、鰓和腎臟組織放入離心管中，迅速投入液氮冷凍，再轉移到－80℃冰箱保存，以上操作在冰盤中進行。所有樣品帶回實驗室后分別測定各組織（肝臟、肌肉、鰓、腎臟）內超氧化物歧化酶（SOD）活力，過氧化氫酶（CAT）活力、堿性磷酸酶（AKP）活力及酸性磷酸酶（ACP）活力。組織樣品先用剪刀剪碎，準確稱取0.2g于玻璃勻漿管中，加入9倍體積的生理鹽水后勻漿機勻漿，后于 Allegra X－22R 型冷凍離心機3 000r/min離心10min，然后分別稀釋至所需濃度后進行酶活的測定。所有酶活力及蛋白含量（蛋白的測定采用考馬斯亮藍法）的測定均采用南京建成生物研究所提供的試劑盒。

SOD活力采用的是黃嘌呤氧化酶法，1個酶活力單位（U）定義為在37℃水浴下每毫克組織蛋白質在1mL反應液中超氧化物歧化酶抑制率達50%時的超氧化物歧化酶量。CAT活力的測定采用紫外比色法，定義在37℃水浴下每毫克組織蛋白每秒分解1mmol的H2O2的量為1個活力單位（U）。AKP活力單位的定義：在37℃水浴下每克組織蛋白與基質作用15min產生1mg酚為1個酶活力單位（U）。ACP活力單位的定義：在37℃水浴下每克組織蛋白與基質作用15 min產生1mg酚為1個酶活力單位（U）。

1.4 數據處理

所得數據采用SPSS13.0軟件的方差分析（ANOVA）及Duncan多重比較進行分析處理，以P＜0.05作為差異顯著。

2 結果

2.1 鹽度對半滑舌鰨幼魚生長及存活的影響

不同鹽度下半滑舌鰨幼魚的生長情況見表1?？梢钥闯?，淡水組中半滑舌鰨幼魚的生長受到了明顯的抑制（P＜0.05）。到實驗進行到20d時，淡水條件下生長的半滑舌鰨幼魚體重已顯著低于其它處理（P＜0.05）；實驗進行到40d，鹽度10和20下半滑舌鰨幼魚的體重顯著高于其它處理（P＜0.05），以淡水條件下為最低；實驗結束時，半滑舌鰨幼魚末體重在鹽度10和20時較高，顯著高于淡水、鹽度5和30處理（P＜0.05），但鹽度5和30未見顯著差異（P＞0.05）。在整個實驗周期當中無半滑舌鰨幼魚死亡。

2.2 鹽度對半滑舌鰨幼魚不同組織SOD活力的影響

表1 不同鹽度下半滑舌鰨幼魚的生長情況（平均值±標準誤）Table 1 Growth performance of Cynoglossussemiliaevis at different salinities（mean±SE） /g

不同鹽度條件下半滑舌鰨幼魚組織中SOD活力見圖1?？梢钥闯?，肝臟中的SOD在鹽度20時活力顯著高于淡水組（P＜0.05）；而淡水組肌肉中SOD的活力顯著性升高（P＜0.05），其余鹽度條件下活力未見顯著差異（P＞0.05）；在鰓中，鹽度20和30下SOD活力顯著高于淡水、鹽度5和10；腎臟中的SOD活力隨著鹽度的升高總體呈現先下降后升高的趨勢，在鹽度5和10時活力最低，顯著低于淡水及鹽度30處理（P＜0.05）。

圖1 不同鹽度條件下半滑舌鰨幼魚不同組織SOD活力Fig.1 Effect of salinities on the activities of SOD in different tissues of Tongue Sole（mean±SE）

2.3 鹽度對半滑舌鰨幼魚不同組織中CAT活力的影響

不同鹽度條件下半滑舌鰨幼魚組織中CAT活力見圖2?？梢钥闯?，淡水組肝臟中CAT的活力顯著高于其它各組（P＜0.05），鹽度5明顯高于鹽度10，20和30（P＜0.05），鹽度5時顯著高于鹽度10，20和30（P＜0.05），其余處理之間則未見顯著性差異（P＞0.05）；鰓中的CAT活力在鹽度20時最低，顯著低于鹽度30（P＜0.05），其余各處理之間無顯著性差異（P＞0.05）；鹽度對腎臟中的CAT活力影響不顯著（P＞0.05）；在肌肉中未能檢測到CAT活力。

圖2 不同鹽度條件下半滑舌鰨幼魚不同組織CAT活力Fig.2 Effect of salinities on the activities of CAT in different tissues of Tongue Sole（mean±SE）

2.4 鹽度對半滑舌鰨幼魚不同組織中AKP活力的影響

不同鹽度條件下半滑舌鰨幼魚組織中AKP活力見圖3?？梢钥闯觯闻K中AKP的活力隨著鹽度的升高呈現先升高后降低的趨勢，鹽度20時活力顯著高于淡水及鹽度5和鹽度30（P＜0.05）；肌肉中AKP的活力隨著鹽度的升高逐漸升高，其中，淡水組中AKP的活力顯著低于鹽度20和鹽度30（P＜0.05）；低鹽度對鰓中AKP的活力有顯著的促進作用，鹽度5和10時鰓中的AKP活力顯著高于鹽度20和30兩個處理（P＜0.05）；腎臟中的AKP活力在淡水和鹽度5時最低（P＜0.05），其余各組之間未見顯著差異（P＞0.05）。

圖3 不同鹽度條件下半滑舌鰨幼魚不同組織AKP活力Fig.3 Effect of salinities on the activities of AKP in different tissues of Tongue Sole（mean±SE）

2.5 鹽度對半滑舌鰨幼魚不同組織中ACP活力的影響

不同鹽度條件下半滑舌鰨幼魚組織中ACP活力見圖4。可以看出，肝臟中的ACP活力隨著鹽度的升高呈現出逐漸降低的趨勢，其中，以淡水條件下活力最高，顯著高于鹽度20和鹽度30處理（P＜0.05）；鹽度對肌肉中ACP活力影響不顯著（P＞0.05）；鰓中ACP的活力隨實驗鹽度的升高呈降低－升高－降低的變化趨勢，其中鹽度5條件下的ACP活力顯著低于淡水和鹽度20條件下的ACP活力（P＜0.05）；腎臟組織在鹽度5時的ACP活力顯著低于淡水和鹽度20、30（P＜0.05）。

3 討論

3.1 不同鹽度對半滑舌鰨幼魚生長的影響

已有研究表明，半滑舌鰨對低鹽度環境具有極強的耐受性。在鹽度5時半滑舌鰨幼魚仍可以正常的生長，這一結果與本研究相似[18]。半滑舌鰨幼魚對淡水也具有一定的耐受能力。不過，本研究發現，盡管在淡水條件下半滑舌鰨幼魚沒有出現死亡現象，但其活力卻顯著降低。馴化至淡水的半滑舌鰨幼魚出現了活動減少、對食物的敏感程度下降、易生病等不良反應，其生長也要顯著低于其它鹽度處理。而在鹽度10和20時，半滑舌鰨幼魚的生長率則顯著高于天然海水（鹽度30左右）。相比較，作為廣鹽性種類，大西洋鱈（Gadus morhua）[19]、金頭鯛（Sparussarba）[20]和大菱鲆（Scophthalmusmaximus）[21]等的相關研究也得出了與本研究類似的結果。本研究表明，半滑舌鰨更適宜在10～20鹽度范圍內養殖，在此鹽度范圍內半滑舌鰨可能更利于其將更多的能量用于生長。

圖4 不同鹽度條件下半滑舌鰨幼魚不同組織ACP活力Fig.4 Effect of salinities on the activities of ACP in different tissues of Tongue Sole（mean±SE）

3.2 不同鹽度對半滑舌鰨幼魚抗氧化酶活力的影響

超氧化物歧化酶（SOD）和過氧化氫酶（CAT）是機體內重要的抗氧化酶。其中，超氧化物歧化酶的功能是將機體內O－歧化成H2O2和O2，而過氧化氫酶可以將H2O2分解為H2O和O2。細胞內氧自由基過高，會對細胞內生物大分子如蛋白質、脂質、核酸等造成損傷，導致DNA分子突變，誘發細胞的衰老死亡，而SOD和CAT二者的協同作用，可以清除細胞內產生的過量的氧自由基，具有重要保護功能[22]。研究發現，環境條件的變動如水溫、鹽度、溶解氧等均可引起魚體抗氧化酶活性的變化[23]。例如，趙峰等發現，施氏鱘（Acipenserschrenckiii）心臟、肝臟、脾臟和肌肉組織中的SOD和CAT活力會隨著鹽度的升高表現出不同的變化趨勢[24]。而王曉杰等將許氏平鲉（Sebastesschlegeli）分別馴化至鹽度5和10時，發現30d后其血液中SOD和CAT活力均出現了明顯的升高[25]。Yin等的研究也發現銀鯧幼魚（Pampusargenteus）在用低鹽度的海水處理后，其腎臟和肌肉中的SOD和CAT活力大幅度升高[26]。

本研究表明，長期的淡水脅迫對半滑舌鰨幼魚肌肉中SOD和肝臟中CAT的活力具有顯著的促進作用。其中，肝臟中CAT的活力要顯著高于其它組織器官，這可能與肝臟細胞內富含過氧化物酶體，是參與體內H2O2清除代謝的主要器官有關。長期的淡水脅迫可能會使魚體肝臟內產生大量的自由基，而CAT活力的大幅度提高則可以保護肝臟免受損傷。一般來講，肌肉組織在清除活性氧自由基的過程中SOD通常會先發揮作用[27]，因此在淡水條件下，肌肉中SOD活力大幅度升高。而肌肉中由SOD分解生成的H2O2可能會被最終運送至肝臟內分解。這樣，肌肉中SOD和肝臟中CAT活力的提高可以幫助清除魚體中因淡水脅迫而產生的自由基，進而避免機體遭受損傷[28－29]。本研究未在肌肉中檢出CAT活力，表明肌肉中CAT含量可能較低。

鰓和腎臟是魚體重要的滲透調節器官。本研究表明，在鹽度5～30范圍內鰓SOD活力隨著鹽度的升高逐漸升高，而腎臟在鹽度5和10下則顯著降低。這一結果與點帶石斑魚（Epinephelusmalabaricus）幼魚的相關研究不盡相同。余燕等發現點帶石斑魚幼魚肌肉和腎臟SOD活力在一定鹽度范圍內隨鹽度梯度下降呈上升趨勢[30]。這說明由于種類存在的差異，不同魚類抗氧化酶活性對鹽度適應也存在較大的差異。通常，魚類的鰓組織在滲透壓調節過程中起到排出體內多余離子的作用，而腎臟則主要起到排除多余水分的作用，當魚類由海水進入淡水后，適應于低滲環境的生理機制啟動，腎臟的代謝壓力會逐漸增大[31－32]。

3.3 不同鹽度對半滑舌鰨幼魚磷酸酶活力的影響

根據pH特性，磷酸酶有堿性磷酸酶和酸性磷酸酶之分。它們通過調節蛋白（酶）的去磷酸化過程，參與一些營養物質的消化、吸收、運輸過程，同時也構成了生物體內重要的解毒體系[26]。本研究結果顯示，在淡水至鹽度20范圍內，半滑舌鰨幼魚肝臟、肌肉和腎臟中AKP活力也隨鹽度的升高而逐漸升高，而鰓中則以鹽度5和10下為最高。與此比較，馮娟等對軍曹魚（RachycentroncanadumLinnaeus）在鹽度5～37時血清中AKP活性的變化時則發現血清中的AKP活力隨鹽度的升高不斷升高[34]，而劉存岐、白秀娟等的研究則表明，海水中的金屬離子含量的升高對于磷酸酶活性具有顯著的促進作用[35－36]，這些結果與本研究相似。推測可能在一定鹽度范圍內，鹽離子濃度的增加對于半滑舌鰨部分組織AKP活力可能具有一定的促進作用。在淡水條件下，半滑舌鰨肝臟中的ACP活力始終處于較高的水平，顯著高于對照鹽度30下水平，但肌肉、鰓和腎臟中ACP活力水平與對照鹽度30下水平差異不大，表明淡水馴化對于上述3個組織中ACP活力影響不大。一般來講，淡水組中肝臟ACP活力較高，一方面可能在于由于幼魚受到長期脅迫肝臟增強代謝提高機體能量供應有關，另一方面，魚類ACP一般在機體感染初期的非特異性免疫保護中起重要作用[37]，可能長期的淡水脅迫導致魚體免疫力降低，導致機體應對病原菌入侵而產生相應的反應。值得注意的是，與其它鹽度比較，作為滲透調節器官，半滑舌鰨鰓和腎臟組織在鹽度5下呈現出了較低的ACP活力，與其SOD活力反應相似，這一現象目前尚難以解釋，其中的機制尚需進一步研究。

3.4 關于半滑舌鰨幼魚對不同鹽度的適應性

本研究結果表明，半滑舌鰨幼魚對于低鹽度具有很強的適應能力，生產中可適當的降低海水的鹽度以促進半滑舌鰨的生長，其最適的生長鹽度范圍可能在10～20之間。鹽度對于半滑舌鰨幼魚不同組織非特異性免疫酶的影響存在明顯的組織特異性，這可能與半滑舌鰨幼魚不同器官組織生理功能的不同有關。例如，肝臟作為魚體重要的代謝器官，主要參與魚體的生長及能量代謝?？梢钥闯?，肝臟內SOD在鹽度20時活力最高，可能與鹽度20時肝臟生長及合成代謝最為旺盛有關。代謝旺盛的魚類肝臟可以儲存和合成大量的脂肪，而脂肪酸的氧化則會導致自由基的生成[38－40]。肝臟中AKP的活力也在鹽度20時活力最高，這可能與AKP參與肝臟中營養物質的消化運輸有關?？傮w上看，在鹽度5以上時半滑舌鰨幼魚的非特異性免疫能力與對照相比基本維持在正常的水平，而淡水條件下半滑舌鰨的多項生理指標則出現了異常，表明淡水條件對半滑舌鰨幼魚可能產生了較強的脅迫作用，影響了其正常的生理過程，進而對其生長產生了負面影響。本研究過程中也觀察到，淡水組半滑舌鰨幼魚活動減少，對食物的敏感程度下降，生長速度顯著下降。不過，通常個體較大的魚對鹽度的適應能力會較強[41]，鑒于本研究使用的魚規格較小，因此今后還需要采用較大規格的半滑舌鰨進行相關試驗，以進一步確認不同規格的半滑舌鰨對鹽度的適應能力。

[1]Resley M J，Webb K A Jr，Holt G J.Growth and survival of juvenile cobia，Rachycentroncanadum，at different salinities in a recirculating aquaculture system [J].Aquaculture，2006，253：398－407.

[2]Imsland A K，G stavsson A，Gunnarsson S，et a1.Effects of reduced salinities on growth，feed conversion efficiency and blood physiology of juvenile Atlantic halibutHippoglossushippoglossus L[J].Aquaculture，2008，274：254－259.

[3]Helene R，Grerard B.Fish blood parameters as a potential tool for identification of stress caused by environmental factors and chemical intoxication[J].Marine Environ Res，1996，41（1）：27－43.

[4]胡利華，閆茂倉，鄭金和，等.鹽度對日本鰻鱺生長及非特異性免疫酶活性的影響 [J].臺灣海峽，2011，4（5）：528－532.

[5]強俊，任洪濤，徐跑，等.溫度與鹽度對吉富品系尼羅羅非魚幼魚生長和肝臟抗氧化酶活力的協同影響 [J].應用生態學報，2012，23（1）：255－263.

[6]Evans D H，Piermarini P M，Choe K.The multifunctional fish gill：dominant site of gas exchange，osmoregulation，acid－base regulation，and excretion of nitrogenous waste[J].Physiological Reviews，2005，85：97－177.

[7]Febry R，Lutz P.Energy Partitioning in Fish：The Activity related Cost of Osmoregulation in a Euryhaline Cichlid[J].Journal of Experimental Biology，1987，128：63－65.

[8]Gilles B，Patrick P.How should salinity influence fish growth？[J].Comp Biochem Physiol C，2001，130：411－423.

[9]Atwood H L，Young S P，Tomasso J R，et al.Resistance of cobia，Rachycentroncanadum，juveniles to low salinity，low temperature，and high environmental nutrition concentrations[J].Appl Aquac，2004，15：191－195.

[10]Winston G W，Digiulio R T.Prooxidant and antioxidant mechanisms in aquatic organisms [J].Aquat Toxicol，1991，19（2）：137－161.

[11]溫海深.水產動物生理學 [M].青島：中國海洋大學出版社，2009：250－284.

[12]林浩然.魚類生理學 [M].廣州：廣東教育出版社，1999：109－145.

[13]Miyazk H，Kaneke T，Hasegawa S，et al.Development changes in drinking rate and ion and water permeability during early stage of euryhaline，Oreochromismossambicus，reared in fresh water and sea water[J].Fish Physiol Biochem，1988，18（3）：277－284.

[14]Fang J H，Tian X L，Dong S L.The influence of water temperature and ration on the growth，body composition and energy budget of tongue soleCynoglossussemilaevis[J].Aquaculture，2010，299：106－114.

[15]?；?，常杰，馬甡，等.半滑舌鰨生物學及養殖生態學研究進展 [J].水產科學，2007，26（7）：1003－1111.

[16]田相利，王國棟，董雙林，等.鹽度和溫度對半滑舌鰨生長、滲透生理及能量收支的影響 [J].中國水產科學，2010，17（4）：771－778.

[17]田相利，任曉偉，董雙林，等.溫度和鹽度對半滑舌鰨幼魚消化酶活性的影響 [J].中國海洋大學學報：自然科學版，2008，38（6）：895－901.

[18]張志勇，張曹進，張志偉，等.半滑舌鰨苗種對溫度和鹽度耐受性試驗 [J].水產養殖，2008（3）：20－21.

[19]Lambert Y，Dutil J D，Munro J.Effects of intermediate and low salinity conditions on growth rate and food conversion of Atlantic codGadusmorhua[J].Fish Aquat Sci，1994，51：1569－1576.

[20]Woo N Y S，Kelly S P.Effects of salinity and nutritional status on growth and metabolism ofSparussarbain a closed seawater system [J].Aquaculture，1995，135：229－238.

[21]Imsland A K，Foss A，Gunnarsson S，et al.The interaction of temperature and salinity on growth and food conversion in juvenile turbotScophthalmusmaximus[J].Aquaculture，2001，198：353－367.

[22]Livingstone D R.Contaminant－stimulated reactive oxygen species production and oxidative damage in aquatic organisms[J].Mari Pollut Bull，2001，42（8）：656－666.

[23]Viarengo A，Canesi L，Pertica M，et al.Seasonal variations in the antioxidant defense systems and lipid peroxidation of the digestive gland of mussels [J].Comp Biochem Physio1，1991，100C：187－190.

[24]趙峰，莊平，章龍珍，等.施氏鱘不同組織抗氧化酶對水體鹽度升高的響應 [J].海洋水產研究，2008，25（5）：65－69.

[25]王曉杰，張秀梅，李文濤.鹽度脅迫對許氏平鲇血液免疫酶活力的影響 [J].海洋水產研究，2005，26（6）：17－21.

[26]Yin F，Peng S M，Sun P，et al.Effects of low salinity on antioxidant enzymes activities in kidney and muscle of juvenile silver pomfretPampusargenteus[J].Acta Ecologica Sinica，2011，31：55－60.

[27]張克烽，張子平，陳蕓，等.動物抗氧化系統中主要抗氧化酶基因的研究進展 [J].動物學雜志，2007，42（2）：153－160.

[28]Andersen F，Lygren B，Maage A，et al.Interaction between two dietary levels of iron and two forms of ascorbic acid and the effect on growth，antioxidant status and some non－specific immune parameters in Atlantic salmon（Salmosalar）smolts[J].Aquaculture，1998，161（1－4）：437－451.

[29]Ross S W，Dalton D A，Kramer S，et al.Physiological（antioxidant）responses of estuarine fishes to variability in dissolved oxygen[J].Comp Biochem Physiol C，2001，130（3）：289－303.

[30]余燕，徐維娜，劉兆普，等.低鹽度脅迫對點帶石斑魚幼魚消化酶、抗應激酶和存活率的影響 [J].漁業科學進展，2001（4）：21－66.

[31]Brett J R.Environmental factors and growth[M]//Hoar W S，Randall J R，Breet J R.Fish Physiology Vol 8Bioenergetics and Growth.New York：Academic Press，1979：599－675.

[32]Holmes W N，Donaldson F M.The Body Compartments and the Distribution of Electrolytes[M]//Hoar W S，Randall D J.Fish Physiology Vol 1Excretion，Ionic Regulation，and Metabolism.New York：Academic Press，1969：1－89.

[33]何海琪，孫鳳.中國對蝦酸性和堿性磷酸酶的特性研究 [J].海洋與湖沼，2001，23（5）：555－560.

[34]馮娟，徐力文，林黑著，等.鹽度變化對軍曹魚稚魚相關免疫因子及其生長的影響 [J].中國水產科學，2007，14（1）：120－125.

[35]劉存岐，王安利，王維娜，等.海水中幾種金屬離子對中國對蝦幼體體內堿性磷酸酶和ATPase的影響[J].水產學報，2001，25（4）：298－303.

[36]白秀娟，盧伙勝，唐峰華.Cu2＋、Zn2＋和Cd2＋對茂名海域文昌魚酸、堿性磷酸酶的影響 [J].水產科學，2009，28（9）：513－517.

[37]Sunyer J O，Tort L.Natural hemolytic and bactericidal activities of seabreamSparusaurataserum are effected by the alternative complement pathway[J].Veterinary Immunology and Immunopathology，1995，45：333－345.

[38]De Kok T，Vaarwerk F T，Zwingman I，et al.Peroxidation of linoleic，arachidonic and oleic acid in relation to the induction of oxidative DNA damage and cytogenetic effects[J].Carcinogenesis，1994，15：1399－1404.

[39]Fang X，Watanabe Y，Adachi S，et al.Microencapsulation of linoleic acid with low－and high－molecular－weight components of soluble soybean polysaccharide and its oxidation process[J].Biosci Biotech Bioch，2003，67（9）：1864－1869.

[40]Garcia G M，Sanz A，Domezain A，et al.Age－size influences on tissue－lipid quality of the sturgeonAcipensernaccariifrom intensive culture[J].J App Ichthyol，1999，15：261－264.

[41]Altinok I，Galli S M，Chapman F A.Ionic and osmotic regulation capabilities of juvenile Gulf of Mexico sturgeon，Acipenseroxyriinchusdesotoi[J].Comp Biochem Physiol A，1998，120（4）：609－616.