999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

腫瘤酸性pH分子顯像研究進展

2014-06-13 02:14:40唐剛華胡孔珍
同位素 2014年3期
關鍵詞:檢測

胡 鴻, 唐剛華,胡孔珍

(1.人民醫院 放射科,湖南 東安 425900;2.中山大學附屬第一醫院 核醫學科PET-CT中心,廣州 510080)

人體體液保持著嚴格的酸堿平衡[1]。體液中含量最多的碳酸氫鹽/二氧化碳(HCO3-/CO2)緩沖體系在維持體液酸堿動態平衡中起著重要的作用。細胞外液主要緩沖物質為HCO3-(NaHCO3),在碳酸酐酶作用下,體內HCO3-和CO2發生相互轉化,能夠調節緩沖體液微弱酸堿變化,從而維持體內酸堿動態平衡[2-3]。

許多疾病狀態諸如炎癥、缺血、癌癥和腎臟疾病等都涉及pH變化(酸堿失衡)。研究表明,幾乎所有腫瘤細胞內液pHi(7.0~7.2)和腫瘤細胞外液pHe(6.2~6.9)都低于正常組織(pH 7.3~7.4)[1,4-6],組織細胞pH變化是代謝過程、質子轉運和緩沖作用的綜合結果[1],測定體液pH可為酸堿失衡引起的疾病提供參考,腫瘤pH顯像是分子顯像重要研究領域。近年來,磁共振顯像(MRI)、磁共振波譜分析(MRS)、核醫學顯像和光學成像已用于臨床前pH顯像研究,在涉及酸堿失衡的診斷和療效監測方面具有較好應用前景,為進一步將無創傷性顯像技術轉化為臨床腫瘤pH分子顯像奠定了基礎。本文對腫瘤酸性pH分子顯像最新研究進展進行綜述。

1 pH分子探針

理想的pH分子探針應符合以下條件[7]:(1)能夠部分電離,即以離子化形式和非電離形式存在,離子化形式濃度和非電離形式濃度比值([離子化形式]/[非電離形式])與pH成比例,滿足Henderson-Hasselbalch方程:pH=pKa+lg([離子化形式]/[非電離形式]),其中pKa為酸電離常數Ka的負對數;(2) 分子探針不會改變組織pH變化;(3) pH分子探針組織區室化分布已知;(4) 分子探針為無毒;(5)不依賴分子探針濃度;(6)快速檢測pH變化。pH分子探針主要包括磁共振分子顯像(MRMI)探針、核醫學分子顯像探針和光學分子顯像探針,其他方面的影像分子探針應用較少。

1.1 pH磁共振分子顯像探針

用于檢測pH的磁共振分子顯像(MRMI) 探針較多,包括磁共振波譜(MRS)分子探針和磁共振顯像(MRI)造影劑。檢測pH的MRS分子探針一般是基于依賴和非依賴pH共振間化學位移變化的原理而設計,分為MRS探針和MRS顯像(MRSI)探針。近年來報道較多的MRS探針有:3-[N-(4-氟-2-三氟甲基-苯基)-磺酰基]-丙酸(ZK-150471),用于19F-MRS檢測細胞外pH (pHe)[8];無機磷酸鹽(Pi),用于31P-MRS檢測細胞內pH(pHi)[8];3-氨基磷酸丙酯(3-APP),用于31P-MRS檢測pHe[7-8]。1H MRSI探針 (±)2-(咪唑-1-基)-丁二酸 (ISUCA)和(±)2-咪唑-1-基-3-乙氧羰基丙酸(IEPA)的應用,可提高31P和19F檢測pHe的靈敏性,但其空間和時間分辨率仍有限[1,8]。

目前,MRMI探針主要發展為三大類:動態核極化(DNP) MRS/MRSI探針、馳豫MRI探針和化學交換飽和轉移(CEST) MRI探針,常用MRMI探針列于表1。 DNP能顯著提高MRS的靈敏度,該技術是基于微波轟擊樣品,將不成對電子極性轉化為鄰近核極性,以提高MRS信號強度[1]。目前,主要的DNP 探針有:89Y-1,4,7,10-四氮雜環十二烷基- N,N′,N″,N?-四(甲叉磷酸)(89Y-DOTP),用于DNP89Y-MRS檢測pHe[7];超極化13C-標記碳酸氫鹽,用于DNP13C-MRS/MRSI檢測pHe和pHi[2,7-8];1-13C-丙酮酸鹽(Pyruvate),用于DNP MRSI檢測心肌細胞內pHi[7,9]。馳豫MRI是通過pH依賴性馳豫劑擾動水的弛豫,實現對pH顯像。馳豫MRI探針報道較少,如157Gd-1,4,7,10-四氮雜環十二烷基-1,4,7,10-四乙酰胺基-四磷酸酯(Gd-DOTA-4AmP5-)和163Dy-1,4,7,10-四氮雜環十二烷基-N,N′,N″,N?-四(甲叉磷酸,Dy-DOTP)聯合應用,可檢測pHe[7-8]。CEST MRI與傳統造影劑不同,可通過轉移飽和質子達到減低水分子信號(T1和T2*)而產生陰性對比,主要分為以下三類。 早期使用的小分子如糖類、氨基酸類、銨離子、雜環化合物等探針,屬于反磁性CEST (diaCEST) 探針,如碘帕醇(Iopamidol)[10]和碘普胺(Iopromide)[11];而使用鑭系元素合成的173Yb-1,4,7,10-四氮雜環十二烷基-1,4,7,10-四乙酸, 10-鄰氨基苯胺(Yb-DO3A-oAA)[1]等,為順磁性CEST (paraCEST)探針;對體內微量的蛋白質、多肽CEST 成像,這些內源性可變蛋白質和多肽則成為酰胺質子轉移(APT)[12]MRI探針。

表1 檢測pH的MRMI 探針

續表

1.2 pH核醫學分子探針

用于檢測pH的核醫學分子探針,包括正電子發射斷層(PET)顯像分子探針和單光子發射斷層(SPECT)顯像分子探針。吸入11CO2[13]或注射[2-11C]5,5-二甲基噁唑烷-2,4-二酮(DMO)[14]已初步用于臨床PET檢測pH。兩種pH分子探針檢測pH的原理是基于探針離子化形式濃度和非電離形式濃度比值([離子化形式]/[非電離形式])與pH成比例。但由于吸入11CO2操作較麻煩,DMO合成較困難,且其靈敏度有限,因而限制了臨床[7]。最近,國外研究者研制了一種可選擇性靶向體內酸性組織的低pH插入肽(pHLIP),并用64Cu標記pHLIP (64Cu-pHLIP,圖1)。在酸性的細胞外環境而不是正常生理pH下,pHLIP主要以單聚α-螺旋形式插入在脂質雙分子層中,因而,64Cu-pHLIP PET可用于檢測腫瘤pH[1,7,15]。最近,99Tcm標記pHLIP和18F-D-WT-pHLIP(圖1),也已分別用于SPECT 和PET檢測腫瘤pH[16]。

1.3 pH光學分子顯像探針

檢測pH的光學分子探針是光學分子顯像重要研究領域,許多光學分子探針已用于腫瘤pH檢測。pH光學分子探針的作用機理主要包括:(1)基于光誘導電子轉移(PeT)效應[5],如酸性和堿性媒介中小分子氨基苯基BODIPY探針 (Aminophenyl BODIPY,結構示于圖2a)[17]與酸性和堿性媒介中環狀小分子精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸肽-染料探針(Dye-cRGD,結構示于圖2b)[18]。質子化的Aminophenyl BODIPY和Dye-cRGD熒光增強,去質子化的Aminophenyl BODIPY和Dye-cRGD幾乎無熒光。(2)基于熒光共振能量轉移(FRET)效應[5],如量子點(QD)裝配多巴胺和多肽探針(QD-Dopamine-Peptide,結構示于圖2c)[19]。在低pH時,主要以氫醌形式存在的QD-Dopamine-Peptide作為差的電子接受體,導致低光致發光淬滅(QD PL)現象。隨著pH增加,緩沖液周邊氧氣氧化多巴胺,生成H2O2和苯醌。以苯醌形式存在的QD-Dopamine-Peptide作為好的電子接受體,引起較高效率的光致發光淬滅現象。(3) 基于自聚集相關能量轉移(SAET)效應[5],如右旋糖苷納米探針(Dextran-NP,結構示于圖2d)[20]。在生理酸性環境中,腙鍵斷裂導致熒光恢復。(4) 基于選擇性靶向體內酸性組織脂質雙分子層[21],如熒光基(Cy5.5和Alexa750)標記pHLIP,用于光學顯像pH[6,21-23]。近年來,熒光比率顯像探針和熒光壽命顯像探針已發展成為兩類重要的pH光學分子探針,前者基于檢測發射光譜,后者基于檢測探針壽命[1]。熒光壽命顯像探針又分為時域熒光探針和頻域熒光探針[1]。熒光比率顯像探針的發展是pH光學分子顯像的重要選擇,如基于無機材料QD的比率納米探針、基于合成聚合物的比率納米探針和基于噬菌體的比率納米探針[5],但pH熒光壽命顯像探針報道相對較少,如QD和綠色熒光蛋白納米熒光壽命探針。

圖1 64Cu-pHLIP 、99Tcm-AH114567和18F-D-WT-pHLIP的結構Fig.1 Structure of 64Cu-pHLIP, 99Tcm-AH114567, and 18F-D-WT-pHLIP

圖2 典型pH光學分子探針的結構。a— Aminophenyl BODIPY;b—Dye-cRGD;c—QD-Dopamine-Peptide;d—Dextran-NPFig.2 Typical structure of fluorescent pH probesa—Aminophenyl BODIPY;b—Dye-cRGD;c— QD-Dopamine-Peptide;d—Dextran-NP

2 pH分子顯像的應用

2.1 pH磁共振分子顯像

檢測pH的 MRMI方法分為依賴pH化學位移技術、依賴磁化傳遞技術和依賴pH馳豫技術。早期使用的依賴pH化學位移技術主要包括1H、31P、19F和89Y MRS/MRSI。31P-MRS利用內源性Pi化學位移可檢出pHi,同時利用外源性3-APP化學位移可檢出pHe[1]。利用維生素B6氟化衍生物,19F-MRS可檢出pHe和pHi[7]。由于這些探針具有低靈敏度,因而MRS很難獲得高分辨率的pH圖譜。為進一步提高其檢測靈敏度,利用IEPA的pH敏感H2磁共振波譜分析共振可改善1H-MRS檢測腫瘤(如乳腺癌和腦瘤)pH靈敏度[1,7,24]。盡管這些方法可檢出腫瘤pHe,但其時間和空間分辨率仍有限。

動態核極化(DNP)是依賴pH化學位移技術,可顯著提高MRI靈敏度[2,25]。利用超極化13C標記探針和89Y標記探針的化學位移變化,MRS/MRSI已用于腫瘤pH的檢測。超極化1-13C-丙酮酸鹽DNP技術已用于檢測健康和疾病心臟的pHi[26],也可監測腫瘤組織代謝變化[27],但是否可用于腫瘤pH檢測,尚無文獻報道。Gallagher等[2]報道用超極化13C-標記碳酸氫鹽檢測腫瘤pH,顯示很好應用前景,可望用于臨床。荷瘤模型動物體內注射超極化13C-碳酸氫鹽后,測定超極化H13CO3-和13CO2信號強度比值,采用Henderson-Hasselbalch方程估算腫瘤組織pH/pHe。結果表明,13C-標記碳酸氫鹽DNP技術可望用于涉及腫瘤、缺血和炎癥等組織內pH變化的臨床病理過程顯像。89Y-DOTP已用于DNP89Y-MRS檢測pH,可顯著提高靈敏度[28],但尚無活體pH顯像研究報道。

化學交換飽和轉移(CEST)屬于依賴磁化傳遞技術,采用體相水和探針分子間的磁化傳遞MRI來評估檢測腫瘤組織pH,包括反磁性CEST (diaCEST)、順磁性CEST(paraCEST)和酰胺質子轉移(APT) CEST[1,7]。用Yb-DO3A-oAA paraCEST檢測MDA-MB-231乳腺腫瘤組織中pH,可獲得乳腺腫瘤組織pH為6.82± 0.21,大腿肌肉pH為 7.26 ±0.14,并可獲得MCF乳腺腫瘤pHe圖譜[1,29]。Chen等[11]報道了用碘普胺(碘帕醇類似物) diaCEST檢測乳腺腫瘤組織pHe,其檢測pHe范圍為6.2~7.2,經碳酸氫鹽治療后腫瘤pHe≥7.1,該方法為評估腫瘤酸性提供了無創傷性方法。酰胺質子轉移(APT)是一種可用于檢測組織中內源性可移動蛋白質和多肽酰胺質子的CEST-MRI技術,該法不需要注射造影劑,而是基于內源性物質(探針)。APT MRI在檢測模型腫瘤pH方面具有較大潛力,近來Zhou等[12]已將該技術用于人腦腫瘤APT MRI研究,顯示較好應用前景。

MR馳豫技術是基于用pH依賴馳豫造影劑擾動水的馳豫進行腫瘤組織pH檢測,通常分為單注射法和雙注射法。最常用的MR馳豫造影劑為Gd或Dy絡合物造影劑,如Gd-DOTA-4AmP5-和Dy-DOTP。Garcia-Martin等[30]采用雙注射法,即先后注射pH 敏感的Gd-DOTA-4AmP5-和pH非敏感的Dy-DOTP,對荷腦膠質瘤大鼠的腦瘤組織進行pH MRI顯像。Martinez等[31]采用單注射法,共同注射pH 敏感的Gd-DOTA-4AmP5-和pH非敏感的Dy-DOTP,對腦膠質瘤模型進行pH MRI顯像。單注射法具有較高空間分辨率,是較實用的臨床檢測腫瘤pH方法。

2.2 pH核醫學分子顯像

pH核醫學分子顯像,包括PET顯像和SPECT顯像。持續吸入11CO2用于腦瘤病人PET顯像,檢測腦瘤組織pH,結果顯示腦瘤組織有一定程度放射性攝取[13]。但由于吸入11CO2操作較麻煩,且靈敏度不夠理想,因而11CO2應用于臨床PET顯像有限[7]。注射DMO也已初步用于PET檢測腦瘤病人腦瘤組織pH[14],但DMO合成較困難,且不能準確檢測pH,因而未被廣泛應用于臨床PET顯像[7]。唐剛華等[32]利用回旋加速器生產的11C-CO2,通過NaOH在柱吸附,用稀鹽酸或NaH2PO4緩沖液中和后,即可得11C-碳酸氫鹽緩沖液(11C-HCO3-/11C-CO2) 酸堿失衡顯像劑,用于各種與酸堿失衡有關疾病(如腫瘤和炎癥)的PET顯像,可望迅速轉化為臨床應用。近年來,pHLIP是研究比較熱門的多肽,可作為廣范腫瘤標志物[6,23]。Vavere等[15]研制了64Cu-pHLIP,用于PET檢測前列腺癌組織pHe,結果表明,低pHe前列腺癌組織可高度攝取64Cu-pHLIP,從而為酸性實體瘤的診斷提供了PET分子顯像新方法。Daumar等[33]研制了18F-D-WT-pHLIP,用于PET檢測前列腺癌組織pHe,獲得了與64Cu-pHLIP 相類似的pH PET顯像結果。Macholl 等[16]用99Tcm標記pHLIP制備了99Tcm-AH114567,用于SPECT 檢測多種腫瘤pH,展現出較好的應用前景。但放射性核素標記pHLIP轉化為臨床應用仍需要進一步研究。

2.3 pH光學分子顯像

pH光學分子顯像主要集中基于PeT熒光探針、FRET熒光探針、SAET熒光探針和pHLIP熒光探針的應用。基于PeT的小分子熒光探針Aminophenyl BODIPY,在細胞內可通過溶酶體pH變化而被活化。體內外實驗表明, BODIPY熒光探針與靶向腫瘤單克隆抗體的結合物,可特異性靶向結合活的癌細胞。這些結合物可用于腫瘤檢測及實時治療監測,也可為評估細胞內受體動力學、細胞活性和實時細胞死亡監測提供體外工具[17]。另外,靶向整合素小分子近紅外pH活化熒光探針Dye-cRGD可用于活體顯像來探測原發性和轉移性乳腺癌,并具有較高的特異性和靈敏度[18]。基于FRET的QD-Dopamine-Peptide熒光納米探針已用于檢測細胞質中pH變化,但并未見活體腫瘤pH檢測的研究報道[19]。基于SAET的熒光納米探針Dextran-NP,體外光聲顯像表明,Dextran-NP探針能夠區分癌癥細胞和正常細胞。另外,活體雙波長光聲顯像表明,Dextran-NP探針能夠鑒別模型動物乳腺腫瘤組織和周圍正常組織。結果表明,Dextran-NP探針可無創檢測在正常生理和酸性環境中的早期腫瘤,并具有較高光學對比度[20]。標記pHLIP用于靶向腫瘤酸性光學顯像是近年來研究的熱點領域。Andreev等[21]用熒光基(Cy5.5或Alexa750)標記pHLIP,研究了靶向腫瘤酸性組織細胞膜肽的機理和用途,結果表明,熒光標記pHLIP可望用于腫瘤和炎癥pH顯像。Reshetnyak等[22]用熒光基(Cy5.5或Alexa750)標記pHLIP,對荷瘤模型酸性腫瘤pH行光學顯像,結果表明,標記pHLIP可特異地結合轉移性腫瘤和非轉移性腫瘤組織,為原發性腫瘤、轉移性腫瘤和壞死組織脂質體診斷提供新方法。最近,Weerakkody等[23]用熒光標記pHLIP研究了pHLIP靶向腫瘤作用,為進一步研制新型靶向酸性腫瘤pH的pHLIP分子探針提供了實驗依據。

熒光比率顯像和熒光壽命顯像是兩類重要的pH光學分子顯像方法[1]。目前熒光比率顯像應用于腫瘤pH檢測報道較多,但主要局限于體外pH檢測。由于熒光比率顯像是基于熒光強度的測量方法,容易受激發光強度、 樣品猝滅和熒光染料的濃度分布等因素的影響,難以做到準確定量測量。而熒光壽命顯像一般來說是絕對的, 不受激發光強度、 熒光團濃度和光漂白等因素的影響, 僅與熒光團所處的微環境密切相關。因此,pH熒光壽命顯像是pH光學分子顯像的重要發展方向,但目前其應用有限。

3 小結

酸性pH是一種通用的腫瘤生物標志物,靶向酸性pH分子探針的研制是目前分子影像學熱門研究領域。靶向酸性pH分子探針,已用于腫瘤磁共振分子顯像、核醫學顯像和光學顯像。用于靶向酸性pH磁共振分子顯像探針研究較多,但用于臨床腫瘤顯像的研究報道很有限。近年來,pH核醫學顯像發展較快,但具有較好臨床應用前景的pH探針很少。用于光學顯像的pH分子探針也有較多報道,但主要集中在臨床前研究階段。用于超聲顯像的pH分子探針尚未發現文獻報道。

參考文獻:

[1] Zhang X, Lin Y, Gillies RJ. Tumor pH and its measurement[J]. J Nucl Med, 2010, 51:1 167-1 170.

[2] Gallagher FA, Kettunen MI, Day SE, et al. Magnetic resonance imaging of pH in vivo using hyperpolarized13C-labelled bicarbonate[J]. Nature, 2008, 453: 940-943.

[3] Casey JR. Why bicarbonate[J]. Biochem Cell Biol, 2006, 84: 930-939.

[4] Wu Y, Zhang W, Li J, et al. Optical imaging of tumor microenvironment[J]. Am J Nucl Med Mol Imaging, 2013, 3(1):1-15.

[5] Wang L, Li C. pH responsive fluorescence nanoprobe imaging of tumors by sensing the acidic microenvironment[J]. J Mater Chem, 2011, 21: 15 862-15 871.

[6] Fendos J, Engelman D. pHLIP and acidity as a universal biomarker for cancer[J]. Yale J Biol Med, 2012, 85: 29-35.

[7] Gallaghera FA, Kettunena MI, Brindle KM. Imaging pH with hyperpolarized13C[J]. NMR Biomed, 2011, 24: 1 006-1 015.

[8] Hashim AI, Zhang X, Wojtkowiak JW, et al. Imaging pH and metastasis[J]. NMR Biomed, 2011, 24(6):582-591.

[9] Schroeder MA, Swietach P, Atherton HJ,et al. Measuring intracellular pH in the heart using hyperpolarized carbon dioxide and bicarbonate: a13C and31P magnetic resonance spectroscopy study[J]. Cardiovascular Res, 2010, 86, 82-91.

[10] Aime S, Calabi L, Biondi L, et al. Iopamidol: exploring the potential use of a well established X-ray contrast agent for MRI[J]. Magn Reson Med, 2005, 53:830-834.

[11] Chen LQ, Howison CM, Jeffery JJ, et al. Evaluations of extracellular pH within in vivo tumors using acidoCEST MRI[J]. Magn Reson Med, 2013: 26. doi: 10.1002/mrm.25053.

[12] Zhou J, Blakeley JO, Hua J, et al. Practical data acquisition method for human brain tumor amide proton transfer (APT) imaging[J]. Magn Reson Med, 2008, 60:842-849.

[13] Brooks DJ, Beaney RP, Thomas DGT, et al. Studies on regional cerebral pH in patients with cerebral tumours using continuous inhalation of11CO2and positron emission tomography[J]. J Cerebral Blood Flow Metabolism, 1986, 6:529-535.

[14] Rottenberg DA, Ginos JZ, Kearfott KJ, et al. In vivo measurement of brain tumor pH using [11C]DMO and positron emission tomography[J]. Ann Neurol, 1985, 17(1): 70-79.

[15] Vavere AL, Biddlecombe GB, Spees WM, et al. A novel technology for the imaging of acidic prostate tumors by positron emission tomography[J]. Cancer Res, 2009, 69(10):4 510-4 516.

[16] Macholl S, Morrison MS, Iveson P, et al. In vivo pH imaging with99Tcm-pHLIP[J]. Mol Imaging Biol, 2012, 14:725-734.

[17] Urano Y, Asanuma D, Hama Y, et al. Selective molecular imaging of viable cancer cells with pH-activatable fluorescence probes[J]. Nat Med, 2009, 15: 104-109.

[18] Lee H, Akers W, Bhushan K, et al. Near-infrared pH-activatable fluorescent probes for imaging primary and metastatic breast tumors[J]. Bioconjug Chem, 2011; 22: 777-784.

[19] Medintz IL, Stewart MH, Trammell SA, et al. Quantum-dot/dopamine bioconjugates function as redox coupled assemblies for in vitro and intracellular pH sensing[J]. Nat Mater, 2010, 9: 676-684.

[20] Huang G, Si Z, Yang S, et al. Dextran based pH-sensitive near-infrared nanoprobe for in vivo differential-absorption dual-wavelength photoacoustic imaging of tumors[J]. J Mater Chem, 2012, 22: 22 575-22 581.

[21] Andreev OA, Dupuy AD, Segala M, et al. Mechanism and uses of a membrane peptide that targets tumors and other acidic tissues in vivo[J]. PNAS, 2007, 104(19): 7 893-7 898.

[22] Reshetnyak YK, Yao L, Zheng S, et al. Measuring tumor aggressiveness and targeting metastatic lesions with fluorescent pHLIP[J]. Mol Imaging Biol, 2011, 13:1 146-1 156.

[23] Weerakkody D, Moshnikova A, Thakur MS, et al. Family of pH (low) insertion peptides for tumor targeting[J]. PNAS, 2013, 110(15): 5 834-5 839.

[24] Bhujwalla ZM, Artemov D, Ballesteros P, et al. Combined vascular and extracellular pH imaging of solid tumors[J]. NMR Biomed, 2002, 15(2): 114-119.

[25] Jindal AK, Merritt ME, Suh EH, et al. Hyperpolarized89Y complexes as pH sensitive NMR probes[J]. J Am Chem Soc, 2010, 132(6): 1 784-1 785.

[26] Schroeder MA, Swietach P, Atherton HJ,et al. Measuring intracellular pH in the heart using hyperpolarized carbon dioxide and bicarbonate: a13C and31P magnetic resonance spectroscopy study[J]. Cardiovascular Res, 2010, 86: 82-91.

[27] Golman K, Zandt RI, Lerche M,et al, Ardenkjaer-Larsen JH. Metabolic imaging by hyperpolarized13C magnetic resonance imaging for in vivo tumor diagnosis[J]. Cancer Res, 2006, 66: 10 855-10 860.

[28] Jindal AK, Merritt ME, Suh EH, et al. Hyperpolarized89Y complexes as pH sensitive NMR probes[J]. J Am Chem Soc, 2010, 132(6): 1 784-1 785.

[29] Sheth VR, Li Y, Chen LQ, et al. Measuring in vivo tumor pHe with CEST-FISP MRI[J]. Magn Reson Med, 2012, 67:760-768.

[30] Garcia-Martin ML, Martinez GV, Raghunand N, et al. High resolution pH(e) imaging of rat glioma using pH-dependent relaxivity[J]. Magn Reson Med, 2006, 55:309-315.

[31] Martinez G, Zhang X, Garcia-Martin M, et al. Imaging the extracellular pH of tumors by MRI after injection of a single cocktail of T1 and T2 contrast agents[J]. NMR Biomed, 2011, 24(10): 1 380-1 391.

[32] Tang G, Wang H, Huang T,et al. Positron emission tomography imaging of acid-base imbalance in vivo using11C-labelled bicarbonate buffer[J]. J Nucl Med, 2012, 53 (Supplement 1):1 173.

[33] Daumar P, Wanger-Baumann CA, Pillarsetty NV,et al. Efficient18F labeling of large 37-amino-Acid pHLIP peptide analogues and their biological evaluation[J]. Bioconjugate Chem, 2012, 23:1 557-1 566.

猜你喜歡
檢測
QC 檢測
“不等式”檢測題
“一元一次不等式”檢測題
“一元一次不等式組”檢測題
“幾何圖形”檢測題
“角”檢測題
“有理數的乘除法”檢測題
“有理數”檢測題
“角”檢測題
“幾何圖形”檢測題
主站蜘蛛池模板: 色屁屁一区二区三区视频国产| 91久久国产热精品免费| 2021国产精品自拍| 久久黄色小视频| 亚洲av成人无码网站在线观看| 免费在线a视频| 青青国产成人免费精品视频| 老色鬼欧美精品| 欧美在线视频不卡第一页| 国内精品视频在线| 91成人在线免费视频| 19国产精品麻豆免费观看| 超薄丝袜足j国产在线视频| 中文字幕欧美日韩| 一级爆乳无码av| 国产第三区| 国产精品不卡永久免费| 四虎永久免费网站| 国产午夜福利在线小视频| 67194成是人免费无码| 亚洲啪啪网| 54pao国产成人免费视频 | 久久久久无码国产精品不卡| 丰满人妻一区二区三区视频| 91精品国产一区自在线拍| 六月婷婷精品视频在线观看| av在线5g无码天天| 日日拍夜夜嗷嗷叫国产| 精品少妇人妻av无码久久| 国产屁屁影院| 国产福利在线观看精品| 国产亚洲精品自在久久不卡| 黄色国产在线| 丝袜高跟美脚国产1区| 无码久看视频| 日韩在线播放欧美字幕| 91原创视频在线| 国产在线观看人成激情视频| 91av国产在线| 97av视频在线观看| 福利视频一区| 精品亚洲欧美中文字幕在线看| 午夜高清国产拍精品| 在线观看亚洲成人| 亚洲第一成年人网站| 日本精品中文字幕在线不卡| 成年女人a毛片免费视频| 91年精品国产福利线观看久久| 欧美精品啪啪一区二区三区| 欧美综合中文字幕久久| 婷婷综合色| 99视频在线免费观看| 高清无码不卡视频| 爽爽影院十八禁在线观看| 91久久国产综合精品女同我| 大香伊人久久| 毛片在线播放网址| 永久成人无码激情视频免费| 亚洲制服丝袜第一页| 日本一本在线视频| 亚洲二三区| 广东一级毛片| 亚洲 成人国产| 99精品一区二区免费视频| 精品福利网| 久久久久中文字幕精品视频| 婷婷激情亚洲| 999国内精品视频免费| 激情无码视频在线看| 尤物精品国产福利网站| 亚洲精品在线影院| 高清不卡毛片| 国产人成在线观看| 国产三级成人| 国产视频自拍一区| 欧美三级自拍| 国产手机在线小视频免费观看| 国产成人午夜福利免费无码r| 亚洲第一视频免费在线| 米奇精品一区二区三区| 狠狠做深爱婷婷综合一区| 国产精品一线天|