耐陰觀葉植物對室內甲醛敏感監測能力研究

魯敏，郭天佑，閆紅梅，劉順騰，趙學明

（山東建筑大學藝術學院，山東濟南250101）

耐陰觀葉植物對室內甲醛敏感監測能力研究

魯敏，郭天佑，閆紅梅，劉順騰，趙學明

（山東建筑大學藝術學院，山東濟南250101）

甲醛是室內“三大隱形殺手”之一，并已成為室內頭號化學污染物。如何安全、有效、持久的監測室內甲醛污染，已經成為亟待解決的重大課題。植物監測作為1種簡潔、經濟、準確、持續高效、環境友好型的方法，已逐漸成為室內甲醛污染監測的重要技術手段。研究運用密閉熏氣法對8種室內耐陰觀葉植物進行不同濃度的甲醛脅迫試驗，對其甲醛污染監測能力的強弱進行綜合評價。結果表明:在2、4和8 mg／m3甲醛濃度脅迫下，甲醛濃度與植物種類兩因素之間及其協同作用，對植物葉綠素、丙二醛（MDA）、過氧化物酶（POD）變化的影響均能達到極顯著水平；就兩因素相比較而言，甲醛濃度對植物葉綠素、MDA、POD變化的影響更顯著；綜合不同甲醛濃度下8種植物的葉綠素、MDA、POD變化，對室內甲醛污染監測能力較強的植物有:玻璃海棠（X2）、鳳仙花（X1）；監測能力中等的植物有:吸毒草（X7）、天竺葵（X3）、薄荷（X4）、吊竹梅（X8）；監測能力較弱的植物有:吊蘭（X5）、綠蘿（X6）。

室內甲醛；植物監測；耐陰觀葉植物；監測能力

0 引言

隨著室內裝修裝飾的大量涌現，室內化學污染物超標現象日趨嚴重，現代人類已經繼第一污染期—煤煙型污染和第二污染期—光化學煙霧污染后，進入了以室內化學污染為標志的第三污染期。甲醛是室內“三大隱形殺手”之一，已成為室內頭號化學污染物［1］。世界衛生組織研究表明:甲醛是“病態建筑綜合癥”（SBS，Sick Building Syndrome）的罪魁禍首，可以對人體多個器官、系統構成威脅，嚴重危害人類的健康和生命安全。如何安全、有效、持久的監測室內甲醛污染，已經成為亟待解決的重大課題。目前，國內外針對甲醛污染的監測技術開展了許多相關研究，其中植物監測作為1種簡潔、經濟、準確、持續高效、環境友好型的方法，已逐漸成為室內甲醛污染監測的重要技術手段，也是室內生態環境建設研究的核心內容和熱點之一［2］。

盡管植物監測在室內甲醛污染的監測中發揮著至關重要的作用，但國內外所進行的研究多以植物凈化室內甲醛污染為主，更側重于植物凈化性能及高吸收植物的篩選，而關于敏感監測植物的研究相對較少［3］。因此，篩選室內甲醛污染敏感監測植物，構建室內甲醛污染植物監測配置模式，必將成為室內污染監測和室內植物景觀構建的前沿和重點［4］。文章通過研究耐陰觀葉植物受室內不同濃度甲醛污染脅迫下的生理指標特性變化，綜合評價室內耐陰觀葉植物對甲醛污染監測能力的強弱，從而為人們選擇室內甲醛污染敏感監測植物提供指導和理論基礎。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

試驗于2012年6—9月在山東建筑大學市政與環境工程學院進行，選用的8種常見室內耐陰觀葉植物為:鳳仙花（Impatiens balsamina）、玻璃海棠（Begonia semperflorens）、天竺葵（Pelargonium hortorum）、薄荷（Mentha haplocalyx）、吊蘭（Chlorophytum comosum）、綠蘿（Scindapsus aureum）、吸毒草（Melissa officinalis）、吊竹梅（Zebrina pendula）（見表1）。要求植物生長狀態良好且株型較一致，花盆材質、大小完全一致，盆土性質與用量大致相同；試驗前擦拭植物葉片晾干，將其盆土用聚乙烯薄膜包扎。

表1 植物選擇和編號

1.2 試驗方法

以Wolverton的實驗裝置為參照［5］；定制80 cm ×80 cm×80 cm的玻璃熏氣箱；熏氣箱的頂蓋與箱體互相分離，以便能夠靈活拉動。熏氣箱材質為普通玻璃，厚度在8 mm左右。箱體各連接處用玻璃膠密封，并涂少許凡士林試劑；放入實驗植物和試劑后馬上用海綿膠帶密封頂蓋與箱體接口，防止漏氣。熏氣箱內預留小風扇，加快污染物揮發速度；放置干濕溫度計，觀測艙內溫度和濕度變化。

設置2、4、8 mg／m3等3個甲醛濃度梯度，將8種實驗植物隨機區組，分別用模擬艙進行甲醛熏氣處理，24 h后測定植物葉綠素含量、丙二醛（MDA）含量、過氧化物酶（POD）活性的變化，3次重復。

1.3 生理指標測定方法

葉綠素含量采用浸提法測定［6-7］；MDA含量的測定采用TBA比色法［8-9］；POD活性的測定采用愈創木酚法［10］。

1.4 統計分析方法

將植物種類和污染物濃度看作是影響植物生理生化指標變化的兩個因素，利用SPSS13.0軟件等進行統計分析、方差分析及差異顯著性檢驗［11-14］。

2 結果與分析

2.1 不同甲醛濃度下植物葉綠素含量變化

在化學氣體污染的環境中，植物葉綠素含量會呈現一定程度的降低，從而導致葉片葉面失綠變色，植物光合作用減弱，并影響到植物物質積累能力和生長發育等［15-16］。在相同污染環境中，敏感性植物體內葉綠素合成所受抑制較抗性植物更明顯。因此，植物體內葉綠素含量變化越大，其抗性水平越低，敏感性及監測能力也更強［17］。在室內化學污染環境中，利用耐陰觀葉植物體內葉綠素含量變化間的差異，可作為衡量植物新陳代謝變化程度的主要生理指標，能夠有效反映實驗植物種類的監測能力。

在不同甲醛濃度下脅迫24 h后，對8種實驗植物的葉綠素含量變化進行統計分析，結果見表2。

表2 不同甲醛濃度下植物的葉綠素含量變化

由表2可知，在2 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，8種實驗植物的葉綠素含量均呈現一定程度的降低。其中以鳳仙花（X1）的葉綠素含量變化最大，降低26.32%，監測能力最強；玻璃海棠（X2）葉綠素含量降低25.32%，監測能力次之；綠蘿（X6）的葉綠素含量變化最小，降低16.35%，監測能力最弱。根據葉綠素含量變化情況，對植物在2 mg／m3甲醛濃度下的監測能力由強到弱排序為:鳳仙花（X1）＞玻璃海棠（X2）＞吸毒草（X7）＞天竺葵（X3）＞薄荷（X4）＞吊竹梅（X8）＞吊蘭（X5）＞綠蘿（X6）。在4 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，8種實驗植物的葉綠素含量均呈現一定程度的降低。其中以玻璃海棠（X2）葉綠素含量變化最大，降低52.81%，監測能力最強；鳳仙花（X1）葉綠素含量降低47.87%，監測能力次之；綠蘿（X6）的葉綠素變化率最小，降低36.32%，監測能力最弱。根據葉綠素含量變化情況，對植物在4 mg／m3甲醛濃度下的監測能力由強到弱排序為:玻璃海棠（X2）＞鳳仙花（X1）＞吸毒草（X7）＞天竺葵（X3）＞薄荷（X4）＞吊竹梅（X8）＞吊蘭（X5）＞綠蘿（X6）。在8 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，8種實驗植物的葉綠素含量均呈現一定程度的降低。其中以玻璃海棠（X2）葉綠素含量變化最大，降低70.37%，監測能力最強；鳳仙花（X1）葉綠素含量降低66.44%，監測能力次之；綠蘿（X6）的葉綠素含量變化最小，降低55.51%，監測能力最弱。根據葉綠素含量變化情況，對植物在8 mg／m3甲醛濃度下的監測能力由強到弱排序為:玻璃海棠（X2）＞鳳仙花（X1）＞天竺葵（X3）＞吸毒草（X7）＞吊竹梅（X8）＞薄荷（X4）＞吊蘭（X5）＞綠蘿（X6）。

綜合不同甲醛濃度下8種實驗植物的葉綠素含量變化來看:在2、4、8mg／m3甲醛濃度脅迫下，根據葉綠素含量變化對8種植物的監測能力排序有所不同。在2 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，鳳仙花（X1）以1%葉綠素含量變化率略大于玻璃海棠（X2）；在4、8 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，玻璃海棠（X2）的葉綠素含量變化率均顯著大于鳳仙花（X1）。在2、4 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，吸毒草（X7）、薄荷（X4）的葉綠素含量變化率均分別顯著大于天竺葵（X3）、吊竹梅（X8）；在8 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，天竺葵（X3）、吊竹梅（X8）的葉綠素含量變化率均分別以不到1%的差異略大于吸毒草（X7）、薄荷（X4）。根據葉綠素含量變化情況，其余植物在2、4、8 mg／m3甲醛濃度脅迫下的監測能力排序并無變化。

上述分析表明，在2、4、8mg／m3甲醛濃度下，植物種類對葉綠素含量變化的影響達到極顯著水平。綜合不同甲醛濃度下8種實驗植物的葉綠素含量變化，對室內甲醛污染監測能力強的有:玻璃海棠（X2）、鳳仙花（X1）；對室內甲醛污染監測能力中等的有:吸毒草（X7）、天竺葵（X3）、薄荷（X4）、吊竹梅（X8）；對室內甲醛污染監測能力弱的有:吊蘭（X5）、綠蘿（X6）。

將甲醛濃度和植物種類看作是影響葉綠素含量變化的兩個因素，利用SPSS13.0軟件進行雙因素方差分析，結果見表3。

表3 葉綠素含量變化的雙因素方差分析

由表3可知，植物種類與甲醛濃度兩因素之間及其協同作用，對8種實驗植物葉綠素含量變化的影響均能達到極顯著水平；甲醛濃度與植物種類的F值比較為8882.598＞149.031，表明實驗植物葉綠素含量變化受甲醛濃度的影響更為顯著。

2.2 不同甲醛濃度下植物MDA含量變化

植物在外界污染脅迫下，受其體內自由基作用影響，植物脂質層能夠發生氧化反應，造成體內丙二醛（MDA）含量上升，導致蛋白質、核酸等生命大分子交聯聚合，從而威脅植株細胞穩定［18-19］。在相同污染環境中，敏感性監測植物體內MDA含量升高程度較抗性植物更明顯。因此，植物體內MDA含量變化差異越大，則其抗性水平越低，敏感性及監測能力也更強。研究室內化學污染環境中耐陰觀葉植物體內MDA含量上升程度間的差異，常常可反映不同機體內脂質層過氧化的程度，間接反映出細胞損傷的程度，是反映植物監測能力的重要指標［4］。

在不同甲醛濃度下脅迫24 h后，對8種實驗植物的丙二醛（MDA）含量變化進行統計分析，結果見表4。

表4 不同甲醛濃度下植物的MDA含量變化

由表4可知，在2 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，8種實驗植物的MDA含量均呈現一定程度的升高。其中以玻璃海棠（X2）的MDA含量變化最大，升高72.19%，監測能力最強；鳳仙花（X1）MDA含量升高69.97%，監測能力次之；綠蘿（X6）MDA含量變化最小，升高26.80%，監測能力最弱。根據MDA含量變化情況，對植物在2 mg／m3甲醛濃度下的監測能力由強到弱排序為:玻璃海棠（X2）＞鳳仙花（X1）＞吸毒草（X7）＞薄荷（X4）＞天竺葵（X3）＞吊竹梅（X8）＞吊蘭（X5）＞綠蘿（X6）。在4 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，8種實驗植物的MDA含量均呈現一定程度的升高。其中以玻璃海棠（X2）的MDA含量變化最大，升高145.84%，監測能力最強；鳳仙花（X1）MDA含量升高133.87%，監測能力次之；綠蘿（X6）的MDA含量變化最小，升高36.99%，監測能力最弱。根據MDA含量變化情況，對植物在4 mg／m3甲醛濃度下的監測能力由強到弱排序為:玻璃海棠（X2）＞鳳仙花（X1）＞吸毒草（X7）＞薄荷（X4）＞吊竹梅（X8）＞天竺葵（X3）＞吊蘭（X5）＞綠蘿（X6）。在8 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，8種實驗植物的MDA含量均呈現一定程度的升高。其中以玻璃海棠（X2）的MDA含量變化最大，升高235.50%，監測能力最強；鳳仙花（X1）MDA含量升高222.61%，監測能力次之；綠蘿（X6）的MDA含量變化最小，升高72.66%，監測能力最弱。根據MDA含量變化情況，對植物在8 mg／m3甲醛濃度下的監測能力由強到弱排序為:玻璃海棠（X2）＞鳳仙花（X1）＞吸毒草（X7）＞薄荷（X4）＞吊蘭（X5）＞天竺葵（X3）＞吊竹梅（X8）＞綠蘿（X6）。

綜合不同甲醛濃度下8種實驗植物的MDA含量變化來看:在2、4、8mg／m3甲醛濃度脅迫下，根據MDA含量變化對8種植物的監測能力排序有所不同。在2、8mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，天竺葵（X3）的MDA含量變化率均顯著大于吊竹梅（X8）；在4 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，吊竹梅（X8）的MDA含量變化率以不到1%的差異略大于天竺葵（X3）。在2、4 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，吊蘭（X5）的MDA含量變化率均分別顯著小于吊竹梅（X8）、天竺葵（X3）；在8 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，吊蘭（X5）的MDA含量變化率分別大于天竺葵（X3）、吊竹梅（X8）。根據MDA含量變化情況，其余植物在2、4、8 mg／m3甲醛濃度脅迫下的監測能力排序并無變化。

上述分析表明，在2、4、8mg／m3甲醛濃度下，植物種類對MDA含量變化的影響達到極顯著水平。綜合不同甲醛濃度下8種實驗植物的MDA含量變化，對室內甲醛污染監測能力強的有:玻璃海棠（X2）、鳳仙花（X1）、吸毒草（X7）；對室內甲醛污染監測能力中等的有:天竺葵（X3）、薄荷（X4）、吊竹梅（X8）；對室內甲醛污染監測能力弱的有:吊蘭（X5）、綠蘿（X6）。

將甲醛濃度和植物種類看作是影響MDA含量變化的兩個因素，利用SPSS13.0軟件進行雙因素方差分析，結果見表5。

表5 MDA含量變化的雙因素方差分析

由表5可知，植物種類與甲醛濃度兩因素之間及其協同作用，對8種實驗植物MDA含量變化的影響均能達到極顯著水平；甲醛濃度與植物種類的F值比較為968.013＞134.714，表明實驗植物MDA含量變化受甲醛濃度的影響更為顯著。

2.3 不同甲醛濃度下POD活性變化

在被污染環境中植物細胞會出現輕微失水，且過氧化物酶（POD）活性會呈現一定程度的升高，導致植物組織木質化程度升高，葉片出現干枯、萎焉等癥狀［20-22］。在相同污染環境中，敏感性植物體內POD活性升高程度較抗性植物更明顯。因此，植物體內POD活性變化越大，則其抗性水平越低，敏感性及監測能力也更強。在室內化學污染環境中，植物體內POD活性變化程度之間的差異，可作為衡量植物組織不同老化程度的重要生理指標，能夠有效反映植物種類的監測能力［23］。

在不同甲醛濃度下脅迫24 h后，對8種實驗植物的過氧化物酶（POD）活性變化進行統計分析，結果見表6。

由表6可知，在2 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，8種實驗植物的POD活性均呈現一定程度的升高。其中以玻璃海棠（X2）的POD活性變化最大，升高77.93%，監測能力最強；鳳仙花（X1）POD活性升高76.65%，監測能力次之；吊蘭（X5）POD活性變化最小，升高25.90%，監測能力最弱。根據POD活性變化情況，對植物在2／mg·m3甲醛濃度下的監測能力由強到弱排序為:玻璃海棠（X2）＞鳳仙花（X1）＞吸毒草（X7）＞天竺葵（X3）＞吊竹梅（X8）＞薄荷（X4）＞綠蘿（X6）＞吊蘭（X5）。在4 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，8種實驗植物的POD活性均呈現一定程度的升高。其中以玻璃海棠（X2）的POD活性變化最大，升高132.47%，監測能力最強；鳳仙花（X1）POD活性升高130.48%，監測能力次之；吊蘭（X5）POD活性變化最小，升高57.11%，監測能力最弱。根據POD活性變化情況，對植物在4mg／m3甲醛濃度下的監測能力由強到弱排序為:玻璃海棠（X2）＞鳳仙花（X1）＞吸毒草（X7）＞薄荷（X4）＞天竺葵（X3）＞吊竹梅（X8）＞綠蘿（X6）＞吊蘭（X5）。在8 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，8種實驗植物的POD活性均呈現一定程度的升高。其中以玻璃海棠（X2）的POD活性變化最大，升高247.59%，監測能力最強；鳳仙花（X1）POD活性升高239.68%，監測能力次之；綠蘿（X6）POD活性變化最小，升高94.30%，監測能力最弱。根據POD活性變化情況，對植物在8 mg／m3甲醛濃度下的監測能力由強到弱排序為:玻璃海棠（X2）＞鳳仙花（X1）＞吸毒草（X7）＞天竺葵（X3）＞薄荷（X4）＞吊竹梅（X8）＞吊蘭（X5）＞綠蘿（X6）。

表6 不同甲醛濃度下植物的POD活性變化

綜合不同甲醛濃度下8種實驗植物的POD活性變化來看:在2、4、8 mg／m3甲醛濃度脅迫下，根據POD活性變化對8種植物的監測能力排序有所不同。在2、8 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，天竺葵（X3）的POD活性變化率均大于薄荷（X4）、吊竹梅（X8）；在4 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，天竺葵（X3）的POD活性變化率略小于薄荷（X4），高于吊竹梅（X8）。在2 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，吊竹梅（X8）的POD活性變化率大于薄荷（X4）；在4、8 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，薄荷（X4）的POD活性變化率均大于吊竹梅（X8）。在2、4 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，綠蘿（X6）的POD活性變化率均略大于吊蘭（X5）；在8 mg／m3甲醛濃度下脅迫24 h后，吊蘭（X5）的POD活性變化率略大于綠蘿（X6）。根據POD活性變化情況，其余植物在2、4、8 mg／m3甲醛濃度脅迫下的監測能力排序并無變化。

上述分析表明，在2、4、8mg／m3甲醛濃度下，植物種類對POD活性變化的影響達到極顯著水平。綜合不同甲醛濃度下8種實驗植物的POD活性變化，對室內甲醛污染監測能力強的有:玻璃海棠（X2）、鳳仙花（X1）、吸毒草（X7）；對室內甲醛污染監測能力中等的有:天竺葵（X3）、薄荷（X4）、吊竹梅（X8）；對室內甲醛污染監測能力弱的有:吊蘭（X5）、綠蘿（X6）。

將甲醛濃度和植物種類看作是影響POD活性變化的兩個因素，利用SPSS13.0軟件進行雙因素方差分析，結果見表7。

由表7可知，植物種類與甲醛濃度兩因素之間及其協同作用，對8種實驗植物POD活性變化的影響均能達到極顯著水平；甲醛濃度與植物種類的F值比較為745.808＞119.507，表明植物POD活性變化受甲醛濃度的影響更為顯著。

表7 POD活性變化的方差分析

3 結論

通過上述研究分析，可知:

（1）甲醛濃度與植物種類兩因素之間及其協同作用，對8種植物葉綠素、MDA、POD變化的影響均能達到極顯著水平；就兩因素相比較而言，甲醛濃度對植物葉綠素、MDA、POD變化的影響更為顯著。

（2）在2、4、8 mg／m3甲醛濃度下，植物種類對葉綠素含量變化的影響達到極顯著水平。綜合不同甲醛濃度下8種實驗植物的葉綠素含量變化，對室內甲醛污染監測能力強的植物有:玻璃海棠（X2）、鳳仙花（X1）；對室內甲醛污染監測能力中等的植物有:吸毒草（X7）、天竺葵（X3）、薄荷（X4）、吊竹梅（X8）；對室內甲醛污染監測能力弱的植物有:吊蘭（X5）、綠蘿（X6）。

（3）在2、4、8mg／m3甲醛濃度下，植物種類對MDA含量變化的影響達到極顯著水平。綜合不同甲醛濃度下8種實驗植物的MDA含量變化，對室內甲醛污染監測能力強的植物有:玻璃海棠（X2）、鳳仙花（X1）、吸毒草（X7）；對室內甲醛污染監測能力中等的植物有:天竺葵（X3）、薄荷（X4）、吊竹梅（X8）；對室內甲醛污染監測能力弱的植物有:吊蘭（X5）、綠蘿（X6）。

（4）在2、4、8 mg／m3甲醛濃度下，植物種類對POD活性變化的影響亦達到極顯著水平。綜合不同甲醛濃度下8種實驗植物的POD活性變化，對室內甲醛污染監測能力強的植物有:玻璃海棠（X2）、鳳仙花（X1）、吸毒草（X7）；對室內甲醛污染監測能力中等的植物有:天竺葵（X3）、薄荷（X4）、吊竹梅（X8）；對室內甲醛污染監測能力弱的植物有:吊蘭（X5）、綠蘿（X6）。

（5）綜合2、4、8 mg／m3甲醛濃度脅迫下植物的葉綠素、MDA、POD變化，對室內甲醛污染監測能力強的植物有:玻璃海棠（X2）、鳳仙花（X1）；對室內甲醛污染監測能力中等的植物有:吸毒草（X7）、天竺葵（X3）、薄荷（X4）、吊竹梅（X8）；對室內甲醛污染監測能力弱的植物有:吊蘭（X5）、綠蘿（X6）。

［1］ 魯敏，裴翡翡，劉順騰，等.室內甲醛污染的植物生態修復技術研究進展［J］.山東建筑大學學報，2011，26（6）:592-597，615.

［2］ 魯敏，劉順騰，趙潔，等.室內化學污染氣體的植物監測研究進展［J］.山東建筑大學學報，2013，28（1）:58-62.

［3］ 令狐昱慰，黎斌，李思鋒，等.3種觀賞植物對室內甲醛污染的凈化及生長生理響應［J］.西北植物學報，2011，31（4）:776-782.

［4］ 魯敏，劉功生，陳強，等.9種耐蔭觀賞植物對室內甲醛污染生理抗性比較研究［J］.山東建筑大學學報，2014，29（2）:111-117.

［5］ Wolverton B.C.，Wolverton J.D..Plants and soilmicroorganisms: removal of formaldehyde，xylene，and ammonia from the indoor environment［J］.Journal of the Mississippi Academy of Sciences，1993，38（2）:11-15.

［6］ 安雪，李霞，潘會堂，等.16種室內觀賞植物對甲醛凈化效果及生理生化變化［J］.生態環境學報，2010，19（2）:379-384.

［7］ 王江，張崇邦，柯世省，等.模擬酸雨和銅復合污染對白花泡桐生理特性的影響及其解毒機制［J］.應用生態學報，2010，21（3）:577-582.

［8］ 井大煒，邢尚軍，杜振宇，等.干旱脅迫對楊樹幼苗生長，光合特性及活性氧代謝的影響［J］.應用生態學報，2013，24（7）: 1809-1816.

［9］ 李合生.植物生理生化實驗原理與技術［M］.北京:高等教育出版社，2006.

［10］王偉玲，王展，王晶英，等.植物過氧化物酶活性測定方法優化［J］.實驗室研究與探索，2010，29（4）:21-23.

［11］陳佳瀛，邵勤龍，張佳慧，等.吊蘭和常春藤對室內甲醛污染降解能力的研究［J］.安徽農業科學，2013，41（15）:6829-6831.

［12］劉棟，史寶勝，魏文欣，等.甲醛氣體脅迫對3種觀賞植物的形態及部分生理指標的影響［J］.河北農業大學學報，2011，34（2）:66-70.

［13］林麗仙，李惠華，張雪芹，等.甲醛對吊蘭等植物細胞質膜相對透性和光合特性的影響［J］.熱帶作物學報，2013，34（4）:719 -726.

［14］李俊霖，李鵬，王恒蓉，等.特殊植物類群空氣鳳梨對大氣污染物甲醛的凈化［J］.環境工程學報，2013，7（4）:1451-1458.

［15］高厚強，張曉玲.合肥市大氣污染對植物葉綠素（a、b）含量比例的影響［J］.安徽農業科學，2003，31（3）:367-368.

［16］魯敏，趙學明，趙潔，等.室內苯污染脅迫下植物抗性的研究進展［J］.山東建筑大學學報，2013，28（5）:457-463.

［17］魯敏，趙潔，馮蘭東，等.室內苯污染的植物生態修復技術研究進展［J］.山東建筑大學學報，2013，28（6）:551-556.

［18］趙輝，王春彥，郝振萍，等.甲醛污染對4種觀賞植物葉片葉綠素及MDA含量的影響［J］.金陵科技學院學報，2009，25（2）: 55-57.

［19］何勤勤，周俊輝.盆栽植物對室內甲醛空氣污染的凈化研究進展［J］.江西農業學報，2014，（2）:44-48.

［20］王佳佳，施冰，劉曉東，等.3種木本植物對室內空氣凈化能力的研究［J］.北方園藝，2007，（11）:142-143.

［21］陳段芬，李憲松，邸葆，等.甲醛對5種花卉質膜透性和保護酶活性的影響［J］.華北農學報，2007，22（3）:84-87.

［22］Giese M.，Bauer-Doranth U.，Langebartels C.，et al.Detoxification of formaldehyde by the spider plant（Chlorophytumcomosum L.）and by soybean（Glycine max L.）cell-suspension cultures［J］.Plant Physiology，1994，104（4）: 1301-1309.

［23］魏梅紅，鄭晶晶，饒瑤，等.甲醛對蘆薈POD酶活性的影響［J］.福建師范大學學報，2007，23（4）:133-136.

（責任編輯：李雪蕾）

Research on sensitivemonitoring capability of shade tolerant foliage-plant to indoor formaldehyde pollution

Lu Min，Guo Tianyou，Yan Hongmei，et al.

（School of Art，Shandong Jianzhu University，Jinan 250101，China）

Formaldehyde which has been the top indoor chemical pollutant is one of the three indoor“invisible killers”.How to monitor indoor formaldehyde pollution safely，efficiently and constantly has been an urgent issue.As a simple，economical，accurate，sustainable，efficient and environmentfriendly method，plant monitoring has become an important technological means to monitor indoor formaldehyde pollution.Airtight fumigation method is used to do stressful experiment with different concentrations of formaldehyde treating eight kinds of indoor shade tolerant foliage-plants.The results show that under the stress of 2 mg／m3，4 mg／m3and 8mg／m3concentration of formaldehyde，the influences of plants，concentration and their synergistic effect on the change of chlorophyll content，MDA and POD all reach extremely significant level and the influence of concentration is comparatively more significant.From the change of chlorophyll content，MDA and POD，the plants with high monitoring capability include Begonia semperflorens（X2），Impatiens balsamina（X1）；the plantswith moderatemonitoring capability include Melissa officinalis（X7），Pelargonium hortorum（X3），Menthahaplocalyx（X4），Zebrina pendula（X8）；the plant with low monitoring capability include Chlorophytum comosum（X5），Scindapsus aureum（X6）.

indoor formaldehyde；plant monitoring；shade tolerant foliage-plant；monitoring capability

X171.4，X173

A

1673-7644（2014）06-0504-08

2014-08-05

國家自然科學基金重點項目（20337010）；住房和城鄉建設部科技計劃項目（2012-K6-5）；山東省住房和城鄉建設廳科技計劃項目（2011YK046）

魯敏（1963-），女（滿族），教授，博士，主要從事室內外污染氣體的植物生態修復技術、風景園林生態規劃與設計、生態園林、生態城市等方面的研究.E-mail:lumin＠sdjzu.edu.cn