付堯,趙丹青,孫達峰,張衛明,朱莉偉,蔣建新
(1北京林業大學材料科學與技術學院,北京 100083;2南京野生植物綜合利用研究院,江蘇 南京 210042)
無患子皂素水提液發酵精制聯產表面活性劑鼠李糖脂
付堯1,趙丹青1,孫達峰2,張衛明2,朱莉偉1,蔣建新1
(1北京林業大學材料科學與技術學院,北京 100083;2南京野生植物綜合利用研究院,江蘇 南京 210042)
以無患子皂素水提水解液為底物,發酵生產生物表面活性劑,在精制無患子皂素的同時發酵聯產生物表面活性劑鼠李糖脂。經銅綠假單胞菌發酵后發酵完成液中不含葡萄糖,葡萄糖的消耗速率與接種量成正相關,在發酵液中額外添加大豆油可促進表面活性劑親油基團的生成,溶液表面活性進一步提高。發酵后溶液中表面活性物質濃度達到50.8g/L,比對照組提高了16.1%,溶液表面張力明顯降低。接種10%的菌種發酵獲得的無患子皂素復合產物干粉其臨界膠束濃度由10g/L降低到2.5g/L,臨界膠束濃度下的復合產物水溶液表面張力比未接種菌種的低18.67%,復合產物具有很好的起泡性能及更高的泡沫穩定性。
無患子水提皂素液;鼠李糖脂;發酵精制;表面活性;泡沫性能
天然皂素又稱皂苷,是可形成水溶液或膠體溶液并能產生肥皂狀泡沫的植物糖苷統稱,主要由皂苷元和糖、糖醛酸或其他有機酸組成,能有效降低水的表面張力,是一種天然、無毒、無污染的表面活性劑。無患子(Sapindus mukurossiGaertn.),又名油患子、木患子、苦患樹等,屬無患子科,為落葉大喬木,樹高可達20余米,樹皮灰褐色或黑褐色,主要分布于我國東部、南部至西南部。根和果入藥,具有清熱解毒、化痰止咳的功能,目前福建省已種植無患子50多萬畝[1-2]。無患子果殼中含有約15%~25%無患子皂素,無患子皂素具有良好的起泡性能,其表面活性物質為三萜皂苷類和倍半萜糖苷類、脂肪油和蛋白質,是一種天然優質的非離子表面活性劑。無患子皂素能有效去除污垢,具有良好的清潔能力,并且在一些文獻中報道具有抗菌、增白、祛斑、祛痘、防止皮膚病的藥用功能[3-5],可以在各種護膚品中作為天然活性物質的主要成分。
生物表面活性劑是特定微生物在特定條件下分泌的具有表面活性性能的一類代謝產物[6-8]。生物表面活性劑具有降低表面張力、提高泡沫性能、穩定乳化液等,與化學合成的表面活性劑相比,生物表面活性劑還具有選擇性和專一性、無毒、生物相容性好、能生物降解等優點[9],廣泛應用于精細化工、食品工業、農業、醫藥以及阻燃材料[10]等領域。
無患子水提皂素液中含有豐富的皂素和大量的糖類物質,糖類物質的存在導致無患子皂素液體產品性能極不穩定,需要進一步分離精制。銅綠假單胞菌是能夠生產生物表面活性劑的菌種,可以利用葡萄糖為碳源進行發酵,生產鼠李糖脂,具有較高的產量[11]。本研究根據無患子水提皂素液中含有較高濃度的纖維二糖和葡萄糖,纖維二糖經酶水解,以水解液為底物,接種銅綠假單胞菌和相應的發酵培養基。銅綠假單胞菌利用無患子水提液中的葡萄糖碳源轉化為鼠李糖脂——一種高效的生物表面活性劑,皂素精制發酵聯產生物表面活性劑,生產過程簡潔高效。將無患子水提液中的糖、蛋白等干擾雜質直接轉化為最終產品中的有效組分,獲得的無患子精制液體產品質量穩定,純度高,有望應用于制備液體洗滌劑或其他液體產品。
1.1 材料
原料與試劑: 無患子果皮,福建三青公司提供;纖維二糖酶,Novozymes公司提供;化學試劑均為分析純;瓊脂、酵母膏、蛋白胨和牛肉膏由北京奧博星公司提供;銅綠假單胞菌(CGMCC1.50)來自中國普通微生物菌種保藏管理中心。
實驗儀器:L-550臺式低速大容量離心機,手提式不銹鋼高壓蒸汽消毒器,HIQ-F160全溫振蕩培養箱, Eppendoff 移液槍100μL/1000μL,MJ-16B-Ⅱ型霉菌培養箱,JK99B全自動表面張力儀,PHS-25數顯pH計,UV-2000型紫外-可見分光光度計,Leica CM E 生物顯微鏡,Waters 2695e高效液相色譜儀,B-260旋轉蒸發儀,2151羅氏泡沫儀,DZF-6051 型真空干燥箱。
1.2 實驗方法
1.2.1 培養基的配置
固體培養基(g/L):NaCl 5.0,蛋白胨10,瓊脂15,牛肉膏3.0。液體培養基(g/L):蛋白胨10,牛肉膏,NaCl 5.0。發酵培養基(g/L):MgSO4·7H2O 0.25,NaNO33.0, KH2PO40.25,酵母膏1.0。
1.2.2 產表面活性劑菌株的種子培養
吸取銅綠假單胞菌菌懸液加入到對應的固態斜面培養基中,菌種在30℃下培養1天,生長出得到菌株的為一代菌株。挑取一代菌落劃線接種到固態斜面培養基上,30℃下培養1天生長出獲得的菌株為二代菌株。將二代菌株重復上述步驟,培養得到的第三代后菌種形態與性質基本穩定。將第三代菌株接種到液體培養基中,在搖床中震蕩培養12h,制備成種子懸液,培養條件為液體培養基中加入適量玻璃珠,130r/min,30℃培養12h。
1.2.3 無患子水提皂素液制備
將無患子干燥果皮粉碎,過20目篩,稱取50g,加入300 mL去離子水,在60℃搖床中以150r/min速度提取4h。提取離心分離(3000r/min,15min),上層清液為無患子水提皂素液。液相色譜分析上層清液纖維二糖、葡萄糖濃度。調節溶液pH值至4.8,加入10 IU纖維二糖酶,45℃,180r/min的恒溫培養箱中酶解96h,酶解前12h每2h取一次樣;12h后每12h取一次樣。將酶解后的水提液調節pH值至7.0,作為銅綠假單胞菌的發酵底物。
1.2.4 銅綠假單胞菌發酵
將牛皮紙,三角瓶加棉塞、發酵培養基、去離子水等滅菌(121℃,20 min)。三角瓶中加入30mL無患子水提皂素酶解液,共5組。1號為空白組,無培養基,不接菌種,加入無菌水至體積其他實驗組相同。2、3、4號實驗組分別加入相同體積的發酵培養基,并接入銅綠假單胞菌,接種量分別為2%、5%和8%。5號為3號的對照組,額外加入5g/L大豆油。30℃,130r/min的發酵168h。濃硫酸-香草醛法[12]檢測發酵液中表面活性物質濃度,液相色譜檢測發酵液中糖濃度,全自動表面張力儀測定發酵液表面張力。
1.2.5 表面活性劑干粉制備
100g無患子干燥果皮,加入300mL去離子水按1.2.4節相關步驟水提酶解后制得酶解液,分成3份,設置空白組(T-0,未接種菌種,用無菌水補充發酵培養基)和平行對照組(T-1和T-2,接種10%的銅綠假單胞菌,相同體積的發酵培養基)進行發酵168h。發酵液置于離心機中以4000r/min離心15min,收集的上層清液用濾紙過濾除去不溶性雜質,將濾液置于旋轉蒸發儀中蒸發濃縮,再放入60℃的真空干燥箱中干燥制成復合產物干粉。
1.2.6 復合產物表征
臨界膠束濃度(cmc)測定: 配制T-0、T-1、T-2干粉的一系列不同濃度的皂素溶液,采用吊片法于30℃測定其表面張力,繪制以溶液濃度的對數為橫坐標,表面張力為縱坐標的曲線,從曲線上的突變點讀取臨界膠束濃度cmc。
泡沫性能的測定:采用Rose-Miles實驗方法[13],測定T-0、T-1、T-2在cmc值下0、30s、5min、10min、15min、30min時的泡沫高度,羅氏泡沫儀的操作溫度為(40±1)℃。
2.1 銅綠假單胞菌種子培養
銅綠假單胞菌在經過三代的培養,菌株形態及活性已基本穩定,可作為實驗菌株進行發酵實驗。菌株培養12h后有少量菌落生成,培養基形成一層白膜,培養24h后完全長出菌落。菌體生長過程中產生水溶性色素,如帶熒光的水溶性熒光素、綠膿素等,培養1天后的培養基呈淺綠色。顯微形態觀察觀察表明菌體細胞呈桿狀,成短鏈狀排列。
2.2 水提皂素液酶解
水提液酶解過程中的葡萄糖濃度隨著時間的延長而升高,而纖維二糖濃度隨著時間的延長而降低,如圖1所示。水提皂素液中纖維二糖的初始濃度為33.75g/L,完全酶解后,香草醛-濃硫酸法測得的皂素濃度為133.6g/L,葡萄糖濃度為27.93g/L。水解前10h,葡萄糖的轉化速率快;纖維二糖在水解前10h酶解最為明顯,在以后的酶解過程中葡萄糖的生成率趨于平緩。在水解72h 時,纖維二糖完全轉化為葡萄糖,葡萄糖濃度達到最高,完成酶解過程。

圖1 無患子水提皂素液酶解中纖維二糖和葡萄糖濃度變化

圖2 無患子水提皂素液表面張力隨水解時間的變化情況
酶解過程中溶液表面張力隨時間的變化情況如圖2所示,溶液表面張力在57.2mN/m上下波動。水解前10h溶液表面張力波動幅度較大。酶將纖維二糖降解為葡萄糖,溶液中葡萄糖濃度突然增大,而無患子皂素結構中也有糖基,可能導致表面張力有一定的變化。由圖1得知,在水解10h后溶液中葡萄糖轉化率較低,糖濃度對溶液中皂素表面張力影響也較小,所以在水解后期,溶液表面張力比較平緩??傮w而言,溶液表面張力隨酶解過程變化幅度不大,說明皂素結構及性質在酶解過程中保持穩定。
2.3 無患子水提液發酵精制聯產鼠李糖脂生物表面活性劑
銅綠假單胞菌是在一定條件下的共同細菌在自然界中可分泌鼠李糖脂的生產。水提取無患子皂素溶液為底物,發酵鼠李糖脂得到復合產品無患子皂素及生物表面活性劑,其糖濃度的變化如圖3所示??瞻讓φ战M發酵液中葡萄糖濃度從25.33g/L下降為13.63g/L,這可能因為少量雜菌轉化了部分葡萄糖,空白組最終pH值為7.04。菌株的接種量對發酵過程的影響如圖3所示,8%接種量其葡萄糖轉化速率最快,接種量越大,葡萄糖轉化速率越高,2%、5%和8%接種量最終發酵液pH值分別為7.60、6.78和6.96。在發酵初期菌種轉化葡萄糖的能力不高,為調整適應期,接入菌種的樣品組和空白組的葡萄糖轉化速率基本相同。發酵144h時,發酵液中葡萄糖濃度接近0。葡萄糖和脂肪都可以用作銅綠假單胞菌的發酵碳源,加入5g/L大豆油的復合碳源對照組可以看出,銅綠假單胞菌利用葡萄糖的速率減小。與3號實驗組對比,大豆油可使發酵體系碳源濃度增大,發酵初期葡萄糖轉化速率減小,發酵為168h時發酵液中的葡萄糖完全轉化,發酵完成液pH值6.7。

圖3 葡萄糖濃度隨著銅綠假單胞菌發酵時間的變化
發酵過程中溶液表面張力隨時間的變化如圖4所示,空白對照組及接種量分別為2%、5%、8%的實驗組在發酵前100h 的表面張力基本在57mN/m上下浮動。在接種量為5% 的實驗組中,發酵液在120h時表面張力下降明顯,形成的生物表面活性降低了溶液的表面張力,在168h時接種量分別為2%、5%和8%實驗組的最終表面張力分別為56.69mN/m、55.12mN/m和56.14mN/m,均低于空白對照組的最終表面張力57.47mN/m。加入大豆油的實驗組中發酵24h 時溶液表面張力迅速降低,并且隨著發酵時間的增長溶液表面張力降低至54mN/m,最終溶液表面張力小于空白對照組和無大豆油底物的實驗組,說明加大豆油實驗組產生了更多的表面活性類物質鼠李糖脂,油脂作為碳源可促進表面活性劑親油基團的生成。加入大豆油的實驗組中發酵144h溶液表面張力有所上升,可能與銅綠假單胞菌發酵后期產生一些副產物有關。此外,與接種量為8%的實驗組對比,大豆油可以降低銅綠假單胞菌接種量,并且能夠較大幅度降低溶液表面張力。

圖4 銅綠假單胞菌接種量對發酵過程中溶液表面張力的影響
2.4 復合產物表征
發酵完成時溶液表面活性劑如表1所示,銅綠假單胞菌發酵后溶液中表面活性劑濃度均有升高,空白組溶液中是無患子皂素。發酵液最終表面活性劑濃度隨著接種量的提高而提高,在加入大豆油作為額外碳源時,發酵得到的表面活性劑濃度最高。溶液表面張力降低,表面活性劑濃度升高,說明無患子皂素與生物表面活性劑鼠李糖脂不但具有很好的相容性,同時具有協同增效作用[14]。
在30℃下,無患子皂素及精制發酵皂素的水溶液表面張力隨溶液濃度變化規律如圖5所示,T-0的臨界膠束濃度(cmc)值很高,遠高于T-1和T-2;T-0的最低表面張力也遠高于T-1和T-2。T-1的cmc值為2.5g/L,最低表面張力為41.95mN/m;T-2的cmc值為2.5g/L ,最低表面張力為40.94mN/m。T-1與T-2這兩者的性能相差不大,符合平行樣的要求。當溶液濃度為2.5g/L時,T-2的最終表面張力為42.00mN/m,T-0的最終表面張力為51.64mN/m,說明菌株經過發酵生產的鼠李糖脂使溶液表面張力值同比下降了18.67%,表面活性得以提高。

表1 發酵結束后發酵液表面活性劑濃度

圖5 3種復合產物表面活性劑表面張力與濃度對數關系(30℃)
在40℃下,無患子水提皂素干粉及精制發酵干粉的泡沫性能如表2所示,可以看出3種表面活性劑在臨界膠束濃度下,泡沫高度隨著時間的延長而降低。T-0的起泡性能雖然比T-1(T-2)高出6.5%,但是T-1(T-2)泡沫穩定性比T-0高出31.2%。說明接入菌種進行發酵后產生的鼠李糖脂與無患子皂素復合產物具有很好的起泡性能,并且具有更高的泡沫穩定性能。

表2 表面活性劑在臨界膠束濃度下的泡沫性能(40℃)
(1)將無患子水提皂素液中較高濃度的纖維二糖酶解轉化為葡萄糖,銅綠假單胞菌以水解液作為發酵底物,經發酵后水提液中的葡萄糖完全被消耗,葡萄糖的消耗速率與接種量與成正相關。添加額外大豆油后,在一定程度上降低菌種的用量,且可以顯著降低發酵液表面張力,加入一定量油脂會促進表面活性劑親油基團的生成。
(2)銅綠假單胞菌發酵后溶液表面張力降低,溶液中表面活性劑濃度升高。接種10%的菌種發酵獲得的復合產物干粉的臨界膠束濃度由10g/L降低到2.5g/L,臨界膠束濃度下的水溶液表面張力比未接種菌種低18.67%,復合產物具有很好的起泡性能及更高的泡沫穩定性。(3)利用無患子水提皂素液中的葡萄糖作為 碳源,在精制皂素的同時發酵聯產生物表面活性劑鼠李糖脂,將無患子水提液中的糖、蛋白等干擾雜質直接轉化為最終產品中的有效組分,制得的無患子精制液體產品質量穩定、純度高,可直接應用于制備液體洗滌劑或其他液體產品。
[1] 周自圓,朱莉偉,李雪,等. 不同居群無患子果實組成比較研究[J]. 中國野生植物資源,2011,30(4):61-65.
[2] 趙丹青,唐勇,蔣建新,等. 無患子皂素水提液發酵乳酸精制過程研究[J]. 日用化學工業,2012,42(5):352-356.
[3] Nakayamak K,Fujino H,Kasai R,et al. Solubilizing properties of saponins fromSapindus mukurossiGaertn[J].Chemical & Pharmaceutical Bulletin,1986,34(8):3279-3283.
[4] Kasai R,Fujino H,Kuzuki T,et al. Acyclic sesquiterpene oligoglycoside from pericarps ofSapindus mukurossi[J].Phytochemistry,1986,25(4):871-876.
[5] Ni W,Hua Y,Liu H Y,et al. Tirucallane-type triterpenoid saponins from the roots ofSapindus mukorossi[J].Chemical & Pharmaceutical Bulletin,2006,54:1443-1446.
[6] Das P,Mukherjee S,Sen R. Genetic regulation of the biosynthesis of microbial surfactants:An overview[J].Biotechnology and Genetic Engineering,2008,25:165-186.
[7] Mukherjee S,Das P,Sen R. Towards commercial production of microbial surfactants[J].Trends in Biotechnology,2006,24(11):509-515.
[8] Christofi N,Ivshina I B. Microbial surfactants and their use in field studies of soil remediation[J].Journal of Applied Microbiology,2002,93(6):915-929.
[9] Banat I M,Franzetti A,Gandolfi I,et al. Microbia biosurfactants production,applications and future potential[J].Applied Microbiology and Biotechnology,2010,87(2):427-444.
[10] 錢偉,李湘洲,吳志平,等. 茶皂素基膨脹型阻燃劑的制備及其在涂料中的應用[J]. 化工進展,2014,33(1):198-203.
[11] 劉超. 銅綠假單胞菌產表面活性劑發酵條件優化及表面活性劑性能研究[D]. 西安:西安建筑科技大學,2011.
[12] 侯如燕,宛曉春,黃繼軫. 油茶皂苷標準品的制備及定量方法的比較[J]. 食品與發酵工業,2005,31(8):62-65.
[13] 陳偉章,徐國財,章建忠,等. 復合表面活性劑溶液體系的超起泡性能研究[J]. 精細與專用化學品,2007,15(3/4):21-27.
[14] 趙丹青. 無患子皂素表面活性及其水提液發酵同步精制研究[D].北京:北京林業大學,2013.
Cogeneration biosurfactant rhamnolipid with Sapindus mukurossi saponin water extraction by refining process of fermentation
FU Yao1,ZHAO Danqing1,SUN Dafeng2,ZHANG Weiming2,ZHU Liwei1,JIANG Jianxin1
(1School of Material Science and Technology,Beijing Forestry University,Beijing 100083,China;2Nanjing Institute for Comprehensive Utilization of Wild Plants,Nanjing 210042,Jiangsu,China)
Sapindussaponin water extraction,hydrolyzed byCellobiaseand inoculated withPseudomonas aeruginosa,was fermented to produce biosurfactant rhamnolipid. After fermentation,glucose was completely consumed,and glucose consumption rate was positively rated with loading ofPseudomonas aeruginosa. In the fermentation broth,additional soybean oil could promote formation of surfactant lipophilic group,and solution surface activity was further improved. After fermentation,the concentration of surface active material reached 50.8g/L,16.1% higher than that of the control experiment. The surface tension of the solution was significantly decreased. The critical micelle concentration ofSapindussaponin powder composite with 10% inoculum was reduced from 10g/L to 2.5g/L,and surface tension was 18.67% lower than Sapindus saponin powder without inoculum. The composite product had good foaming properties and high foam stability.
Sapindus mukurossisaponin water extraction;rhamnolipid;fermentation refining process;surface activity;foam property
TQ 423.3
A
1000-6613(2014)10-2739-05
10.3969/j.issn.1000-6613.2014.10.036
2014-02-25;修改稿日期:2014-03-26。
國家林業局重點資助項目(2012-03)、國家級大學生創新計劃(201310022037)及“十二五”國家科技支撐計劃(2012BAD36B01)項目。
付堯(1994—),女,本科。聯系人:蔣建新,教授,博士生導師,從事生物質能源及生物質資源利用研究。E-mail jiangjx@ bjfu.edu.cn。