陳良恩,詹 皓,吳 峰,趙安東,楊明浩
(空軍航空醫學研究所,北京 100142)
持續高正加速度(positive acceleration,+Gz)作用可以導致機體劇烈的應激反應和血液動力學變化,激活神經內分泌系統。國內外大量研究表明[1-3],交感腎上腺素能系統、腎素血管緊張素系統、內皮素以及前列環素等在高+Gz應激時均會發生明顯變化。神經內分泌系統的改變有助于高+Gz應激時機體血流量的調節和血壓的保持,提高機體抗+Gz應激能力,但應激激素的分泌紊亂以及持續作用容易造成組織細胞的損傷[4]。復方紅景天制劑是由紅景天、黃芪、白芍、當歸等組成的中藥制劑,單體成分具有清除氧自由基、改善微循環及心血管功能、增強免疫力、提高機體抗應激能力等作用。前期研究表明[5-6],該復方制劑對大鼠高+Gz應激導致的心腦損傷具有一定的保護作用。本文采用+10 Gz持續性作用建立大鼠+Gz損傷模型,通過觀察復方紅景天制劑對機體重要的應激激素-糖皮質激素(glucocorticoid,GC)及其受體(glucocorticoid receptor,GR)表達的影響,進一步揭示該制劑對高+Gz應激大鼠神經內分泌的調節作用,探討該制劑對持續正加速度致心肌損傷的相關保護機制。
復方紅景天制劑,中國醫學科學院藥用植物研究所化學室提供,該制劑主要由紅景天、黃芪、當歸、白芍、丹參等成分組成,采用乙醇回流提取工藝提取復方有效成分。
清潔級雄性SD大鼠72只,體重(200±25)g,由北京維通利華實驗動物技術有限公司提供,生產許可證:[SCXK(京) 2011-0004];飼養于解放軍總醫院第304臨床部[SYXK(軍) 2007-011]。
兔抗大鼠GR多克隆抗體及GAPDH多克隆抗體,美國Santa Cruze 公司;過氧化物酶標記的羊抗兔IgG,北京中杉金橋生物技術有限公司;超敏ECL化學發光試劑盒,北京科宇深藍科技有限公司;GC酶聯免疫檢測試劑盒,美國R&D公司;其余試劑均購自武漢博士德生物工程有限公司。動物離心機,長春奧普光電公司;Wellscan MK3全自動酶標儀,芬蘭Labsystems Dragon公司。
1.4.1 動物分組與給藥
大鼠適應性喂養3 d后,采用抽簽法將大鼠隨機分為空白對照組、應激對照組、+10 Gz應激組和藥物低、中、高劑量組,每組12只,各組動物分籠飼養并作標記。各組動物每天上午灌胃給藥1次,連續14 d,給藥體積為20 mL/kg,每只動物每天灌胃前稱取體重以確定灌藥量,低、中、高劑量組大鼠每天分別按0.75 g/kg、1.5 g/kg和3.0 g/kg給予復方紅景天中藥制劑,其余3組動物給等量的生理鹽水。末次給藥當日20:00開始禁食,次日進行離心機暴露。
1.4.2 動物離心機暴露模型建立
采用動物離心機進行+Gz暴露,將大鼠束縛固定在通氣的動物艙中,置于離心機的轉臂上,大鼠頭部朝向離心機旋轉軸心。離心機半徑為2 m,由計算機進行加速度程序控制。實驗組大鼠暴露+10 Gz水平,持續5 min,加速度增長率為1G/s。空白對照組不做任何處理,應激對照組動物在離心機艙內轉臂上束縛5 min,不做離心處理。
1.4.3 大鼠血清GC測定
大鼠+10 Gz作用后4 h,麻醉,心臟取血,分離血清。采用GC酶聯免疫檢測試劑盒測定血清皮質酮濃度。
1.4.4 大鼠心肌組織GR測定
大鼠斷頭處死,速取心臟,用4℃生理鹽水沖洗,剪取大鼠新鮮的左心室肌組織,將組織稱量后切成幾個較小的組織塊,勻漿,使用哺乳動物組織總蛋白抽提試劑盒提取蛋白樣品,采用BCA蛋白定量試劑盒進行蛋白質含量測定,操作步驟按說明書進行。每個樣品取50 μg蛋白質加入等體積2×SDS凝膠加樣緩沖液,100℃煮沸5 min,經15%聚丙烯酰胺凝膠電泳后,電轉移至NC膜,1% BSA 封閉過夜,PBST洗膜兩次,加入1:800稀釋兔抗大鼠GR多克隆抗體,37℃孵育1 h,內參采用兔抗大鼠三磷酸甘油醛脫氫酶(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,GAPDH)多克隆抗體。PBST洗膜,加1∶3000稀釋的羊抗兔IgG,37℃孵育1 h,PBST洗膜。在NC膜上滴加超敏ECL化學發光試劑,然后在暗室中曝光X線片。采用Quantity One v4.6.2 軟件進行光密度值分析,GR蛋白的表達量以GR對應條帶與同組GAPDH 條帶的光密度值的比值表示。

注:1. 空白對照組; 2. 應激對照組; 3. +10 Gz應激組; 4. 藥物低劑量組; 5. 藥物中劑量組; 6. 藥物高劑量組。

與空白對照組和應激對照組大鼠相比,+10 Gz應激組大鼠血清皮質酮濃度明顯升高(P< 0.01)。復方紅景天制劑劑量依賴式降低血清皮質酮濃度,藥物中劑量組和高劑量組大鼠血清皮質酮濃度明顯低于+10 Gz應激組(P< 0.05)(表1)。
大鼠心肌GR表達的western blot結果如圖1。測定各條帶光密度,分析各組大鼠心肌GR表達水平,結果如表2。+10 Gz應激組大鼠心肌GR的表達水平與空白對照組和應激對照組相比明顯降低(P< 0.01,P< 0.05)。復方紅景天制劑預處理大鼠心肌GR表達水平明顯升高,三個不同劑量的藥物組大鼠GR表達水平均顯著高于+10 Gz應激組(P< 0.05,P< 0.01)。

表1 各組大鼠血清皮質酮濃度的變化 (n=12)

表2 各組大鼠心肌組織GR蛋白表達變化 (n=6)
當機體受到強烈刺激時,下丘腦-垂體-腎上腺皮質軸(hypothalamic-pituitary-adrenal axis,HPA)的強烈興奮導致腎上腺皮質生成和釋放GC增加,導致血液中GC水平的升高。GC生物學效應的發揮取決于靶細胞上GR的介導。GR屬于激素核受體家族的主要成員,同時也是一種重要的核轉錄因子。游離的GC通過彌散進入細胞內,迅速與胞漿內GR 結合,此時受體被活化,激素受體復合物進而轉移到核內與靶基因的GC反應元件相互作用,調節靶基因的表達,并最終引起各種生物學效應[7]。GR的含量是細胞對GC反應的一個決定性因素[8]。
同以往對腎上腺素、去甲腎上腺素以及內皮素等其他應激激素的研究結果相似,高+Gz應激大鼠血清GC水平明顯升高,GC水平的升高對提高大鼠的抗+Gz應激能力有一定作用,它可以減少應激反應有害介質(緩激肽、蛋白水解酶、前列腺素等)的產生和釋放;使能量代謝以糖代謝為中心,保證葡萄糖對腦、心臟重要器官的供應;同時對兒茶酚胺的允許作用,使心肌收縮力增強,升高血壓。但高水平GC可以誘導細胞凋亡已被許多研究證實[9-10]。高+Gz應激大鼠心肌細胞和海馬神經元細胞凋亡的增多[11-12],可能與高+Gz應激條件下GC水平升高有關。
本研究還發現,與空白對照和應激對照相比,高+Gz應激組大鼠GR表達水平明顯降低。有研究認為,應激情況下,GR的降低與血漿GC濃度的升高有關,GC對GR和GR mRNA均具有反向調節作用[13]。同時,也有研究認為GR的下調還存在以下幾種可能:激素受體復合物轉移到核內;應激時受體蛋白分解加速,而合成減少;糖皮質激素受體的結合活性降低[14]。此外,研究發現,應激狀態下炎癥因子如TNF、IL-1等也可以抑制GR的表達[15]。應激狀態下GR表達水平下調一定程度上可以降低靶細胞對激素的反應性,防止因激素的持續作用對靶細胞造成損傷[13]。但GR的降低會造成機體對GC的抵抗,繼發性的引起大量炎性因子分泌增多,導致嚴重的炎性反應的發生。在各種應激過程中,GR的減少可促使休克、多器官功能衰竭的發生,且糖皮質激素受體的減少幅度與病理性應激損傷嚴重程度平行[16]。
在本研究中,實驗觀察到復方紅景天制劑預處理可以降低高+Gz應激大鼠血漿GC水平,并且呈現劑量依賴性,提示該復方制劑對高+Gz應激大鼠神經內分泌系統具有一定的調節作用。進一步檢測心肌細胞GR表達水平,復方紅景天制劑預處理組大鼠心肌GR高于高+Gz應激組,并且也呈現劑量依賴性。GC濃度的降低和GR表達水平的升高,既增強了靶細胞對激素的敏感性,保證了應激狀態下GC的有效生理效應,同時也避免GC濃度過高導致的細胞凋亡。因此,該復方制劑對于保持高+Gz應激狀態下機體內環境的穩定、預防心肌細胞的損傷具有重要作用。有關復方紅景天制劑對GC和GR作用的確切機制,有待于今后進一步深入研究。
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