楊志堅
(咸寧市中醫(yī)醫(yī)院骨傷科,湖北 咸寧 437100)
骨髓間充質(zhì)干細胞(BMSCs)具有向多種細胞分化的能力[1,2]。新近的研究指出,BMSCs可在體外和體內(nèi)分化為肝細胞,BMSCs注射可修復損傷的肝、肺和心臟組織,減少炎癥、膠原沉積[3]。這些結(jié)果提示BMSCs不但可修復損傷組織,還具有減少慢性纖維化的能力[4]。因此,我們將體外培養(yǎng)良好的BMSCs注入以CCl4制備的肝纖維化模型,觀察BMSCs對肝纖維化大鼠模型的干預作用,以期為肝纖維化的治療提供新的治療方向和思路。
1.1 儀器與試劑 熒光倒置顯微鏡(Olympus)、DMEM培養(yǎng)基、胎牛血清、胰蛋白酶(美國Gibco公司),大鼠透明質(zhì)酸(HA)(美國Sigma公司),四氯化碳(CCl4)(重慶川江化工廠),免疫組化試劑盒(美國Sigma公司)
1.2 動物分組與模型制備 雌性6周齡SD雄性大鼠,體重140~160g,大鼠隨機分為4組,每組10只:①對照組:1周2次,連續(xù)6周注射蓖麻油(0.2ml/100g);②CCl4組:1周2次,連續(xù)6周皮下注射CCl4(0.2ml/100g);③CCl4/BMSCs組:大鼠注射CCl46周后,每只大鼠尾靜脈注射3×106BMSCs;④CCl4/生理鹽水組:大鼠注射CCl46周后,每只大鼠尾靜脈注射等體積的生理鹽水。所有動物購置于武漢大學實驗動物中心,大鼠在無菌條件下飼養(yǎng),不限進食和飲水。
1.3 BMSCs提取 通過對6周齡的SD雄性大鼠的脛骨和股骨進行沖洗獲取骨髓,隨后在添加了10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基中培養(yǎng),通過梯度分離法分離出有核細胞后在加入了1%的青霉素-鏈霉素中重懸。細胞在37 ℃,5%濕化的 CO2條件下孵育12~14d。
1.4 CCl4誘導肝纖維化模型的制備及骨髓間充質(zhì)干細胞的注入方法
1.4.1 肝纖維化模型的制備 將CCl4溶解在等體積的蓖麻油中,通過皮下注射至大鼠體內(nèi),其中CCl4劑量為0.2 ml/100g,濃度為40 ml/L,其中對照組注射等體積的蓖麻油。
1.4.2 骨髓間充質(zhì)干細胞的注入方法 BMSCs對肝纖維化大鼠的干預:CCl4注射6周后,每只大鼠注射3×106細胞數(shù)[5]BMSCs。
1.5 檢測指標與方法 以顯微鏡觀察肝組織形態(tài)學改變、比色法分析羥脯氨酸含量[5]、采用標準實驗室方法檢測血清氨基轉(zhuǎn)移酶(ALT)和白蛋白。
1.6 統(tǒng)計分析方法 以SPSS 13.0 軟件進行統(tǒng)計分析,數(shù)據(jù)采用平均值±標準差表示,組間采用t檢驗,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 肝纖維化的評定 CCl4組大鼠與對照組相比,血清白蛋白明顯降低(P<0.05),ALT水平則明顯上升(P<0.05),肝組織羥脯氨酸水平則有明顯升高(P<0.05),見表1。組織學觀察發(fā)現(xiàn)肝臟出現(xiàn)明顯的細胞外基質(zhì)含量的增加,在肝小葉周圍出現(xiàn)很多膠原沉積等肝纖維化特征。
2.2 BMSCs對肝纖維化大鼠的干預影響 經(jīng)過BMSCs處理后的肝纖維化大鼠,BMSCs注射后4周處死動物觀察:與CCl4組大鼠相比,CCl4/ BMSCs組大鼠血清白蛋白含量顯著升高(P<0.05)。羥脯氨酸顯著降低(P<0.05),而肝臟的ALT則并未有顯著降低(P>0.05)。組織學觀察,骨髓間充質(zhì)干細胞具有明顯的抗纖維能力,CCl4/BMSCs組肝纖維程度顯著降低。

表1 不同組別之間肝功能與羥脯氨酸含量比較
CCl4誘導的大鼠常常被用來作為肝纖維化的實驗模型予以研究。CCl4可產(chǎn)生自由基,通過脂質(zhì)過氧化反應引起持續(xù)性肝臟損傷[6]。在本實驗中,當大鼠每周給予CCl42次,連續(xù)6周后,肝纖維化明顯,模型制備成功。
Xiang等[7]發(fā)現(xiàn)CCl4誘導的肝組織損傷大鼠中,注射BMSCs可定向遷移到損傷部位而不依賴于BMSCs注射部位。BMSCs修復纖維化的過程仍不清楚,Ortiz等[8]發(fā)現(xiàn)盡管干細胞生成的干細胞形成的白蛋白在CCl4誘導的肝組織中低頻率的表達,BMSCs與Flk1的融合可減輕細胞纖維化。盡管目前很少的研究能說明BMSCs移植到肝臟中的數(shù)量和質(zhì)量,但BMSCs在損傷肝臟中的抗纖維化作用是確定的。
我們運用起源于健康雄性SD大鼠的BMSCs注射至CCl4誘導的雌性肝纖維化大鼠體內(nèi)。組織的檢查發(fā)現(xiàn)肝臟纖維化水平明顯降低,羥脯氨酸的含量明顯降低。肝功能也通過BMSCs的治療得以明顯改善。這些結(jié)果說明,注入同種異體的BMSCs對臨床肝纖維化的治療具有很大的價值。我們推測BMSCs可能通過改善移植肝臟部位的微環(huán)境而對CCl4誘導的損傷發(fā)揮保護作用。BMSCs分泌的很多細胞因子,如:肝臟生長因子具有抗凋亡的作用且在肝臟的再生過程中發(fā)揮重要作用[9,10]本實驗的研究結(jié)果說明了骨髓間充質(zhì)干細胞在肝纖維化防治過程中的重要作用,但其機制需進一步的研究。
[1]OdicO,Kajstura J,Chimenti S,et al.Bone marrow cell Sregenerateinfareted myocardium[J].Nature,2001,410(6829):701
[2]Poulsom R,F(xiàn)orbess J,Hodivala-Dilke K,et al.Bone marrow contributes to renal parenehymal turnover and regeneration[J].Pathol,2001,195(2):229
[3]Fang B,Shi M,Liao L,et al.Systemic infusion of FLK1(+)mesenchymal stem cells ameliorate carbon tetrachloride-induced liver fibrosis in mice[J].Transplantation 2004,78(1):83
[4]Sakaida I,Terai S,Yamamoto N,et al.Transplantation of bone marrow cells reduces CCl4-induced liver fibrosis in mice[J].Hepatology,2004,40(6):1304
[5]Nakamura T,Sakata R,Ueno T,et al.Inhibition of transforming growth factor beta prevents progression of liver fibrosis and enhances hepatocyte regeneration in dimethylnitrosamine-treated rats[J].Hepatology,2000,32(2):247
[6]Bruckner JV,Ramanathan R,Lee KM,et al.Mechanisms of circadian rhythmicity of carbon tetrachloride hepatotoxicity[J].J Pharmacol Exp Ther,2002,300(1):273
[7]Xiang GA,Zhang GQ,F(xiàn)ang CH,et al.A preliminary study of the homing capacity of allograft mesenchymal stem cells to rat liver[J].Di Yi Jun Yi Da Xue Xue Bao,2005,25(8):994
[8]Ortiz LA,Gambelli F,McBride C,et al.Mesenchymal stem cell engraftment in lung is enhanced in response to bleomycin exposure and ameliorates its fibrotic effects[J].Proc Natl Acad Sci USA,2003,100(14):8407
[9]Matsuda-Hashii Y,Takai K,Ohta H,et al.Hepatocyte growth factor plays roles in the induction and autocrine maintenance of bone marrow stromal cell IL-11,SDF-1 alpha,and stem cell factor[J].Exp Hematol,2004,32(10):955
[10]Li Y,Chen J,Chen XG,et al.Human marrow stromal cell therapy for stroke in rat:neurotrophins and functional recovery[J].Neurology,2002,59(4):514