郝燕捷,陳 瑩,薛 林,韓曉寧,丁文惠*
(北京大學第一醫院1.心內科;2.風濕免疫科,北京 100034)
IL-10抑制TGF-β1誘導的大鼠心臟成纖維細胞增殖及表型轉化
郝燕捷1,2,陳 瑩1,薛 林1,韓曉寧1,丁文惠1*
(北京大學第一醫院1.心內科;2.風濕免疫科,北京 100034)
目的 研究白細胞介素10(IL-10)對轉化生長因子β1(TGF-β1)誘導的大鼠心臟成纖維細胞(CFBs)增殖、向肌樣成纖維細胞(MyoFbs)轉化的影響及其作用通路。方法 原代培養SD乳鼠CFBs,應用第2~4代,分為對照組、IL-10刺激組、TGF-β1刺激組、IL-10與TGF-β1共同刺激組(IL-10預處理后加入TGF-β1)。每個刺激組設3個復孔,所有實驗重復3次。四氮唑鹽比色法檢測細胞增殖,免疫細胞化學染色檢測增殖細胞核抗原表達,免疫細胞化學染色及Western blot檢測α-平滑肌細胞肌動蛋白(α-SMA)和ERK1/2、P38激酶磷酸化蛋白的表達。結果 與對照組比較,TGF-β1(10 μg/L)能顯著刺激 CFBs增殖及表型轉化(α-SMA 表達)(P<0.01),用 IL-10(10、50和100 μg/L)預處理后,TGF-β1誘導的CFBs增殖及α-SMA表達呈劑量依賴性被顯著抑制(P<0.01)。TGF-β1能顯著刺激CFBs內ERK1/2和P38磷酸化水平(P<0.01),而IL-10(100 μg/L)預處理后,TGF-β1誘導的ERK1/2和P38激酶磷酸化被明顯抑制(ERK1/2:P<0.05;P38:P<0.01)。結論 IL-10可能通過抑制ERK1/2和P38激酶活化抑制了TGF-β1誘導的CFBs增殖及向MyoFbs轉化。
白細胞介素-10;心臟成纖維細胞;轉化生長因子-β1;細胞外信號調節激酶;P38激酶
在急性心肌梗死(acute myocardial infarction,AMI)后的心室重構發展過程中,心臟成纖維細胞(cardiac fibroblasts,CFBs)增殖、向肌樣成纖維細胞(myofibroblasts,MyoFbs)轉化、分泌大量細胞外基質是重要的病理機制之一。轉化生長因子-β1(transforming growth factor-β,TGF-β1)能夠促進 CFBs 增殖及表型轉化,是AMI后左室重構重要促進因子[1]。
白介素10(interleukin-10,IL-10)是一種多功能性免疫調節細胞因子,在抑制纖維化方面也有重要作用,它能拮抗 TGF-β1 促進肝臟纖維化[2]。在AMI患者的血漿及心肌組織中IL-10有高表達,而且能夠改善AMI大鼠的左室重構[3]。IL-10能否抑制CFBs的增殖/表型轉化及拮抗TGF-β1的作用,目前尚未見報道。
絲裂原活化蛋白激酶(MAPKs)超家族成員ERK1/2及P38在TGF-β1誘導的CFBs表型轉化中發揮了重要作用[4],IL-10能夠抑制 MAPKs通路[5]。本研究觀察 IL-10 對 TGF-β1 誘導的大鼠CFBs增殖及向MyoFbs表型轉化的影響,及是否通過ERK1/2及P38通路調控。
實驗動物選用清潔級SD乳鼠[北京大學第一醫院實驗動物中心提供,合格證號:SYXK(京)2014-0010];重組大鼠 IL-10及重組人 TGF-β1(Peprotech公司);小鼠抗人α-平滑肌肌動蛋白(α-SMA)單克隆抗體(武漢博士德公司);小鼠抗人增殖細胞核抗原(PCNA)單克隆抗體及免疫細胞化學染色試劑盒PV-6001/6002 PowerVisionTM(北京中杉金橋生物技術有限公司);兔抗大鼠ERK1/2、磷酸化ERK1/2、P38和磷酸化 P38多克隆抗體(Cell Signaling公司);ERK1/2及 P38的抑制劑 PD98059和SB203580(Promega公司)。
1.2.1 原代培養SD乳鼠CFBs及鑒定:將乳鼠心室剪碎,0.1%胰蛋白酶消化、離心、收集細胞于DMEM培養液中,差速貼壁法培養30 min,貼壁的主要是心臟成纖維細胞。繼續培養至細胞接近匯合時以1∶3傳代。實驗采用第2~4代。
免疫細胞化學染色對細胞進行鑒定:Vimentin染色陽性而α-SMA染色陰性證實為成纖維細胞。
1.2.2 IL-10對TGF-β1誘導的CFBs增殖及表型轉化的影響:實驗分組:1)對照組(control):培養過程中不加任何刺激劑;2)IL-10刺激組(10、50和100 μg/L3 個亞組);3)TGF-β1 刺激組:10 μg/L;4)IL-10(10、50 和 100 μg/L)預處理 1 h 后再加TGF-β1(10 μg/L)共同刺激組。48 h 后進行下面實驗。
MTT比色法:參照文獻[6]進行。
免疫細胞化學染色法測定PCNA及α-SMA表達:按試劑盒說明書操作。在MTT實驗結果基礎上IL-10選取100 μg/L劑量。染色之后,每張爬片在400倍倒置相差顯微鏡下拍攝4個無重復視野,用Image-Pro Plus 5.0圖像分析系統計數細胞核呈棕色的PCNA陽性細胞核及所有細胞核,計算增殖指數:增殖指數(proliferation index)(%)=(PCNA陽性染色細胞核數/所有細胞核數)×100%。計數胞質染成黃色的α-SMA陽性細胞數及所有細胞數,計算轉化指數:轉化指數(transformation index)=(α-SMA陽性染色細胞數/所有細胞數)×100%。
1.2.3 TGF-β1對 ERK1/2、P38 磷酸化的影響:實驗分組:1)對照組(control):即0 min組;2)TGF-β1刺激組:分別刺激 30 min及 1、2、4、8和 24 h。Western blot測定ERK1/2及 P38總蛋白及磷酸化表達,根據文獻[5]進行。
1.2.4 應用ERK1/2、P38激酶阻斷劑后TGF-β1對成纖維細胞表型轉化的影響:實驗分組:1)對照組(control);2)TGF-β1刺激組;3)PD98059(ERK1/2阻斷劑)組:50 μmol/L;4)SB203580(P38阻斷劑)組:20 μmol/L;5)TGF-β1+PD98059 組:先 用PD98059(50 μmol/L)預處理 1 h 后再與 TGF-β1 共同刺激;6)TGF-β1+SB203580組:先用預處理SB203580(20 μmol/L)1 h 后再與 TGF-β1 共同刺激。刺激24 h后收集細胞蛋白進行實驗檢測。Western blot測定 α-SMA蛋白表達,結果以相對α-SMA表達(α-SMA/β-actin吸光度比值)表示。
1.2.5 IL-10 對 TGF-β1 活化的 ERK1/2、P38 激酶的影響:實驗分組:1)對照組(control);2)IL-10刺激組:100 μg/L;3)TGF-β1 刺激組;4)IL-10(100 μg/L)預處理1 h后再TGF-β1共同刺激組。Western blot測定ERK1/2及P38蛋白表達。ERK1/2組于TGF-β1刺激4 h后收集蛋白;P38組于進行TGF-β1刺激2 h后收集蛋白進行檢測。結果以相對ERK1/2或P38表達(ERK1/2或P38/β-actin吸光度比值)表示。
上述實驗n=3,重復3次。
采用SPSS 11.5軟件進行統計分析。計量資料以均數±標準差(±s)表示,組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD檢驗。
2.1.1 MTT結果:TGF-β1組 A值顯著增加(P<0.01),用IL-10與TGF-β1共同刺激后,細胞增殖較單純 TGF-β1 刺激組下降(10 μg/L 及 50 μg/L 組P<0.05;100 μg/L組P<0.01),抑制作用隨IL-10濃度增加而有所增強(圖1)。在不加用TGF-β1而單獨用IL-10刺激的狀態下,各個IL-10劑量組細胞增殖較對照組均無明顯變化(各組間比較P>0.05,圖2)。
2.1.2 PCNA染色結果:TGF-β1組細胞增殖指數顯著增加(P< 0.01),IL-10(100μg/L)+TGF-β1組增殖指數顯著低于TGF-β1組(P<0.01)(圖3)。

圖1 IL-10對TGF-β1誘導的心臟成纖維細胞增殖的影響Fig 1 Effect of IL-10 on cardiac fibroblasts proliferationinduced by TGF-β1(±s,n=9/group)

圖2 IL-10對基礎狀態下心臟成纖維細胞增殖的影響Fig 2 Effect of IL-10 on cardiac fibroblasts proliferationunder basal condition(±s,n=9/group)
TGF-β1刺激組較對照組α-SMA表達陽性細胞比率顯著增多(P<0.01);但IL-10+TGF-β1組較單純TGF-β1組,α-SMA陽性表達明顯減少(10 μg/L組P<0.05;50 μg/L 及 100 μg/L 組:P<0.01),且抑制作用隨IL-10濃度增加而增強(圖4)。
2.3.1 TGF-β1誘導 ERK1/2及 P38磷酸化:ERK1/2在加入TGF-β1刺激后30 min時即發生明顯磷酸化,4 h磷酸化水平最高,維持至8 h,24 h恢復至基礎水平;P38于TGF-β1刺激后2 h磷酸化程度最高,隨后磷酸化水平逐漸降低,24 h恢復基礎水平(圖5)。
2.3.2 阻斷ERK1/2、P38激酶活性TGF-β1誘導的α-SMA 表達降低:與 TGF-β1 組相比,50 μmol/L PD98059預處理1 h再與TGF-β1共孵育組α-SMA蛋白的表達顯著降低(P<0.05),20 μmol/LSB203580預處理組α-SMA蛋白的表達也顯著降低(P<0.01)(圖6)。

圖3 IL-10對基礎狀態及TGF-β1誘導的心臟成纖維細胞增殖的影響Fig 3 Effects of IL-10 on the PCNA expression of cardiac fibroblasts under basal and TGF-β1-induced conditions

圖4 IL-10對基礎狀態及TGF-β1誘導的心臟成纖維細胞向肌樣成纖維細胞轉化的影響Fig 4 Effects of IL-10 on the α-SMA expression of cardiac fibroblasts under basal and TGF-β1 induced conditions measured by immunocytochemical staining(×400)

圖5 ERK1/2、P38蛋白在TGF-β1刺激后各時間點磷酸化蛋白表達情況Fig 5 Effects of TGF-β1 on the phosphorylation of ERK1/2 and P38 in cardiac fibroblasts measured by Western blot

圖6 ERK1/2及P38抑制劑對TGF-β1誘導的α-SMA蛋白表達的影響Fig 6 Effects of TGF-β1 on the α-SMA expression of cardiac fibroblasts when ERK1/2 and P38 pathway were inhibited
2.3.3 與TGF-β1組相比,IL-10抑制了 TGF-β1誘導的ERK1/2和P38激酶磷酸化 IL-10(100 μg/L)+TGF-β1組ERK1/2及P38磷酸化水平均顯著低于 TGF-β1刺激組(ERK1/2:P<0.05;P38:P<0.01)(圖7)。

圖7 IL-10對TGF-β1誘導的ERK1/2及P38磷酸化蛋白表達的影響Fig 7 Effects of IL-10 on the phosphorylation of ERK1/2 and P38 stimulated by TGF-β1 in cardiac fibroblasts
在大鼠 AMI模型上發現,在 AMI后 TGF-β1 mRNA在心肌中的表達顯著增加,與其相伴隨的是MyoFbs增多及膠原的堆積[7]。本結果顯示TGF-β1刺激后CFBs增殖顯著增強,同時向MyoFbs轉化增多,進一步從細胞水平證實了TGF-β1在AMI后促纖維化的作用機制。
在缺血再灌注心肌組織中IL-10 mRNA及蛋白表達顯著升高,IL-10能夠改善心肌梗死大鼠的左室重構[3],能夠抑制大鼠梗死后心肌細胞外Ⅰ、Ⅲ型膠原的沉積[8]。但具體機制尚不清楚。本研究證實IL-10對于基礎狀態下的CFBs無顯著影響,但能夠抑制TGF-β1促CFBs增殖的作用,且此作用呈濃度依賴趨勢。
既往在IL-10與成纖維細胞表型轉化方面僅見少數研究報道:IL-10能夠抑制人類蛻膜間質細胞(一種類肌樣成纖維細胞)α-SMA 的表達[9];IL-10-/-小鼠損傷愈合明顯較正常對照組快,且表達α-SMA的MyoFbs數量明顯增多[10]。本實驗結果在細胞水平證實了IL-10能夠抑制TGF-β1所誘導的CFBs向MyoFbs的轉化。
本實驗發現在體外IL-10能夠抑制TGF-β1誘導的CFBs及向MyoFbs表型轉化,這可能是AMI后IL-10抑制心室重構的作用機制之一。
研究顯示AMI后ERK1/2和P38通路的活化與心室重構關系密切,而一系列研究證實幾種MAPKs(ERK1/2及P38等)都能夠被TGF-β1迅速激活[11-12],本實驗證實 TGF-β1 能夠促進 ERK1/2及P38的磷酸化,而ERK1/2及P38的抑制劑能夠顯著減少TGF-β1所誘導的α-SMA表達,更進一步證實了TGF-β1與MAPKs之間的生物聯系。IL-10的經典作用信號通路是JAK-STAT通路系統,但有研究發現IL-10改善心肌梗死大鼠左室重構的作用部分是通過抑制P38激酶發揮的[3],本實驗室的前期研究顯示IL-10能夠通過抑制此通路抑制Ⅰ、Ⅲ型膠原的合成。本研究結果進一步從細胞水平證實了IL-10能夠抑制 TGF-β1誘導的ERK1/2及 P38磷酸化,提示抑制ERK1/2及P38通路可能是IL-10抑制TGF-β1作用的可能機制。
本研究顯示IL-10可能是通過抑制ERK1/2和P38激酶活化抑制TGF-β1誘導的CFBs的增殖及表型轉化。
[1]van Nieuwenhoven FA,Turner NA.The role of cardiac fibroblasts in the transition from inflammation to fibrosis following myocardial infarction [J]. Vascul Pharmacol,2013,58:182-188.
[2]Huang YH,Chen YX,Zhang LJ,et al.Hydrodynamicsbased transfection of rat interleukin-10 gene attenuates porcine serum-induced liver fibrosis in rats by inhibiting the activation of hepatic stellate cells [J].Int J Mol Med,2014,34:677-686.
[3]Krishnamurthy P,Rajasingh J,Lambers E,et al.IL-10 inhibits inflammation and attenuates left ventricular remodeling after myocardial infarction via activation of STAT3 and suppression of HuR [J].Circ Res,2009,104:e9-18.DOI:10.1161/CIRCRESAHA.108.188243.
[4]Liu XY,Sun SQ,Hassid A,et al.cAMP inhibits transforming growth factor-beta-stimulated collagen synthesis via inhibition of extracellular signal-regulated kinase 1/2 and Smad signaling in cardiac fibroblasts[J].Mol Pharmacol,2006,70:1992-2003.
[5]Dhingra S,Sharma AK,Singla DK,et al.P38 and ERK1/2 MAPKs mediate the interplay of TNF-alpha and IL-10 in regulating oxidative stress and cardiac myocyte apoptosis[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2007,293:H3524-3531.
[6]Mosmann T.Mosmann T.Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival:application to proliferation and cytotoxicity assays[J].J Immunol Methods,1983,65:55-63.
[7]Sun Y,Zhang JQ,Zhang J,et al.Cardiac remodeling by fibrous tissue after infarction in rats[J].J Lab Clin Med,2000,135:316-323.
[8]韓曉寧,胡春陽,褚松筠,等.白細胞介素-10抑制大鼠急性心肌梗死后左室心肌膠原沉積[J].基礎醫學與臨床,2010,30:6-12.
[9]Kimatrai M,Blanco O,Mu?oz-Fernández R,et al.Contractile activity of human decidual stromal cells.II.Effect of Interleukin-10[J].J Clin Endocrinol Metab,2005,90:6126-6130.
[10] Eming SA,Werner S,Bugnon PH,et al.Accelerated wound closure in mice deficient for interleukin-10[J].Am J Pathology,2007,170:188-202.
[11]Mulder KM.Role of Ras and Mapks in TGF beta signaling[J].Cytokine Growth Factor Rev,2000,11:23-35.
[12]Massagué J,Blain SW,Lo RS.TGF-β signaling in growth control,cancer, and heritable disorders [J].Cell,2000,103:295-309.
IL-10 inhibits cardiac fibroblasts proliferation and phenotype transformation induced by TGF-β1 in rats
HAO Yan-jie1,2,CHEN Ying1,XUE Lin1,HAN Xiao-ning1,DING Wen-hui1*
(1.Dept.of Cardiology;2.Dept.of Rheumatology and Clinical Immunology,the First Hospital,Peking University,Beijing 100034,China)
ObjectiveTo examine the effects of IL-10 on cardiac fibroblasts(CFBs)proliferation and phenotype transformation to myofibroblasts(MyoFbs)induced by transforming growth factor-β1(TGF-β1);and to investigate the regulating pathways.MethodsCardiac fibroblasts were isolated from cardiac ventricles of neonatal SD rats.The passage 2~4 were used and divided into the following groups for treatment:1)control group,2)IL-10 reaction group,3)TGF-β1 reaction group,and 4)IL-10 plus TGF-β1 reaction group(TGF-β1 treatment followed with IL-10 pretreatment).Cells proliferation was assessed by MTT assay and immunocytochemistry staining for proliferating cell nuclear antigen(PCNA);the phenotype transformation into MyoFbs was assessed by immunocytochemistry of α-smooth muscle actin(α-SMA);extracellular signal related kinase(ERK1/2)and P38 kinase pathways were assessed by western-blot.ResultsTGF-β1(10 μg/L)treatment boosted the proliferation and the expression of α-SMA significantly(P<0.01),while IL-10(10,50 or 100 μg/L)plus TGF-β1 co-treatment induced lower cell proliferation and expression of α-SMA than treating with TGF-β1 alone(P< 0.05),with the inhibitory effect of IL-10 being concentration dependent.TGF-β1 could significantly stimulate the ERK1/2 and P38 kinase phosphorylation(P<0.01),however IL-10(100 μg/L)plus TGF-β1 co-treatment failed to down-regulated the phosphorylation of ERK1/2 and P38 kinase compared with TGF-β1 alone(ERK1/2:P<0.05;P38:P<0.01).ConclusionsIL-10 can attenuate TGF-β1-induced CFBs proliferation and phenotype transformation to MyoFbs.The inhibitory effects may explained by a mechanism of inhibiting the activation of ERK1/2 and P38 kinase.
interleukin-10;cardiac fibroblasts;transforming growth factor-β1;extracellular signal related kinase;P38 kinase
R541.1
A
10.16352/j.issn.1001-6325.2015.09.007
1001-6325(2015)09-1182-06
2015-01-09
2015-04-27
國家自然科學基金(30640083)
*通信作者(corresponding author):dwh_rd@126.com