李學真 何 心 王建禎(通訊作者)
1)首都醫科大學附屬北京天壇醫院神經外科 北京 100050 2)首都醫科大學附屬北京三博腦科醫院神經外科 北京 100093 3)武警總醫院神經外科 北京 100039
Notch信號通路是一個高度保守的細胞間信號調節傳導系統,通過特異的信號上下級聯作用影響細胞的增殖[1]。研究表明,Notch信號在膠質瘤的生長中發揮重要的作用[2-6]。但Notch信號通路在膠質瘤發生發展中的具體作用還不清楚。本實驗應用Notch2shRNA干擾質粒和相同載體的無意義序列穩定轉染人腦膠質瘤細胞株U87,觀察U87細胞株中Notch2蛋白表達持久抑制后對細胞增殖的影響,為膠質瘤的基因治療提供可靠的理論依據。
1.1 細胞培養和質粒轉染 U87膠質瘤細胞株,在青霉素和鏈霉素100U/mL的10%小牛血清DMEM培養基中37℃、5%CO2以1×105/mL的接種密度接種24孔培養板過夜培養。質粒轉染過程按照Lipofectin 2000操作規程進行。同時轉染并篩選pGFP-V-RS質粒無關序列組作為對照。篩選成功后熒光顯微鏡觀察細胞綠色熒光蛋白(GFP)的表達情況。
1.2 RT-PCR檢測基因沉默效果 Notch2和GAPDH引物序列:Notch2,上 游:5'-CCCAATGGGCAAGAAGTCTA-3',下游:5'-CACAATGTGGTGGTGGGATA-3';GAPDH:上游:5-CCACCCATGGCAAATTCCATGGCA-3,下 游:5-TCTAGACGGCAGGTCAGGTCCAC-3Notch2,30個循環,GAPDH 25個循環。PCR產物瓊脂糖凝膠電泳后紫外線下拍照比較各組灰度變化。
1.3 細胞生長抑制曲線測定(MTT法) 取3組細胞接種于96孔板,3 000個細胞/孔,每日在相同時間加入噻唑蘭(MTT),連續1周,孵育4h離心,加入(DMSO)二甲基亞砜并振蕩數分鐘,應用酶標儀檢測各孔A 490值繪制生長抑制曲線。
1.4 蛋白免疫印跡(Westen blot) 收集各組細細胞提取蛋白,Westen blot檢測干擾組與轉染無關序列組和未轉染組間Notch2蛋白及其活性片段Notch2IC的表達情況,同時檢測細胞增殖、周期相關蛋白p21、p27、CyclinD1和MCM2的表達情況。
1.5 統計學分析 利用Image-proplu(sversion5.0.2.9)軟件分析圖像,測定陽性表達區累積光密度,SPSS 13.0軟件完成數據統計處理,結果以±s表示,采用秩和檢驗。P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 pGFP-V-RS Notch2shRNA能有效抑制Notch2的表達 RT-PCR、Western blot結果顯示,U87細胞中存在Notch2RNA及蛋白水平的表達,穩定轉染pGFP-V-RS Notch2shRNA后,與未轉染組和無意義序列組相比Notch2在RNA(圖1A)及蛋白水平(圖1B)均發生顯著抑制
2.2 pGFP-V-RS Notch2shRNA能有效影響U87細胞增殖、周期及相關蛋白表達 MTT結果顯示,與未轉染組和無意義序列組比較,干擾組細胞生長速度減慢,見圖2A。干擾組細胞S期細胞所占百分比明顯降低,G1期細胞所占百分比明顯升高,而組間G2期細胞所占百分比差異無統計學意義見圖2B、C。Western blot結果顯示與未轉染組和無意義序列組比較MCM2蛋白、CyclinD1蛋白在干擾組中明顯受到抑制,p21蛋白水平增高。
研究中我們首先檢測了U87細胞中Notch2的表達情況,發現Notch2在U87細胞中存在RNA及蛋白水平的表達,這與Chen、Sivasankaran和Reichrat等[7-9]的研究結果相似。但Reichrath、Chen等[7-8]研究表明,Notch2受體在U87等不同膠質瘤細胞株表達存在差異。Xu等[10]也認為,在星形膠質細胞瘤組織中和髓母細胞瘤中Notch2蛋白表達水平顯著不同,但與Chen等研究不同,Xu等認為U87中Notch2受體呈低表達[11-12]。由此可見,Notch2在不同膠質瘤中的表達水平存在差異,說明Notch2在不同類型膠質瘤中發揮的作用也存在差異。
本實驗研究發現,Notch2受體與膠質瘤細胞株U87的增殖密切相關,干擾組細胞增殖顯著減慢。Chen等[6]研究也表明,下調Notch2的表達能夠抑制膠質瘤細胞株U87的體外增殖。Chen等[8]認為抑制Notch1和Notch2的表達均能使U87、U87細胞體外增殖減弱,其中抑制Notch2產生的細胞增殖抑制作用更加顯著。但與以上研究不同Fan、Xu等[5-6,11-12]認為,Notch2能夠拮抗Notch1的作用從而抑制瘤細胞的生長,在膠質瘤細胞株U87中增強Notch2的表達能夠抑制細胞增殖。根據這些研究我們推測,Notch2在膠質瘤細胞增殖中的作用可能是雙重性,Notch2在膠質瘤細胞中適度表達,增強或抑制Notch2的表達都會抑制膠質瘤細胞株的增殖;另外,部分學者的研究還缺乏體內研究的證據[6-7]。本研究證實,Notch2敲底后對膠母細胞瘤株U87的增殖揮顯著抑制作用,為Notch信號在膠質瘤中的作用研究提供了有力的證據。
Notch信號的下游通路的組成復雜,本研究表明,U87細胞株中Notch2蛋白被敲低后,細胞周期中S期細胞比例顯著降低,Western blot分析顯示細胞周期相關蛋白MCM2、CyclinD1表達降低,p21表達升高。很多研究表明在不同種類細胞中Notch信號的下游的效應蛋白也不盡相同,在小細胞肺癌中Notch信號激活能夠上調p21和p27的表達使細胞周期停滯[8]。在鼠角化細胞中,Notch信號通過CSL依賴的上調p21表達抑制細胞周期[4]。最近的一項研究表明,Notch信號通路能夠下調MCM2和MCM6表達阻滯細胞周期[13]。與文獻報道類似,本研究表明在U87細胞中Notch2敲底介導的細胞增殖抑制,是通過改變細胞周期相關蛋白,調控細胞周期來實現的,但Notch2對U87細胞遷移、侵襲的影響以及調控細胞周期的精確機制還需更深入研究。

圖1 Notch2-shRNA抑制U87細胞株中Notch2RNA及蛋白水平表達A:與未轉染組與無意義序列組相比,干擾組Notch2RNA顯著抑制,差異有統計學意義(F=30.0,*P<0.01);B:未轉染組與無意義序列組相比,干擾組Notch2蛋白顯著抑制,差異有統計學意義(F=29.3,*P<0.01)

圖2 pGFP-V-RS Notch2shRNA能有效抑制U87細胞增殖的體外研究A:與無意義序列組和未轉染組相比干擾組細胞生長速度減慢,從培養第4天開始差異有統計學意義(F=18.9,P=0.00<0.05);B、C:與無意義序列組和未轉染組相比,干擾組細胞S期細胞所占百分比明顯降低(F=40.02,P=0.000);G1期細胞所占百分比明顯升高(F=43.55,P=0.000);而組間G2期細胞所占百分比,差異無統計學意義(F=0.28,P=0.76)。D、E:Western blot結果顯示,與未轉染組和無意義序列組比較MCM2蛋白、CyclinD1蛋白在干擾組中明顯受到抑制,p21蛋白水平增高(F=23.6,P=0.000;F=10.56,P=0.004;F=19.24,P=0.001)
[1]Claus EB,Black PM.Survival rates and patterns of care for patients diagnosed with supratentorial low-grade gliomas:data from the SEER program,1973-2001[J].Cancer,2006,106(6):1 358-1 363.
[2]Anastas JN,Moon RT.WNT signalling pathways as therapeutic targets in cancer[J].Nat Rev Cancer,2013,13(1):11-26.
[3]Ramdass B,Maliekal TT,Lakshmi S,et al.Coexpression of Notch1and NF-kappaB signaling pathway components in human cervical cancer progression[J].Gynecol Oncol,2007,104(2):352-361.
[4]Rangarajan A,Hong SJ,Gifford A,et al.Species-and cell typespecific requirements for cellular transformation[J].Cancer Cell,2004,6(2):171-183.
[5]Fan X,Mikolaenko I,Elhassan I,et al.Notch1and notch2have opposite effects on embryonal brain tumor growth[J].Cancer Res,2004,64(21):7 787-7 793.
[6]Chen L,Zhang R,Li P,et al.P53-induced microRNA-107inhibits proliferation of glioma cells and down-regulates the expression of CDK6and Notch-2[J].Neurosci Lett,2013,534:327-332.
[7]Reichrath S,Muller CS,Gleissner B,et al.Notch-and vitamin D signaling in 1,25(OH)2D3-resistant glioblastoma multiforme(GBM)cell lines[J].J Steroid Biochem Mol Biol,2010,121(1/2):420-424.
[8]Chen J,Kesari S,Rooney C,et al.Inhibition of notch signaling blocks growth of glioblastoma cell lines and tumor neurospheres[J].Genes Cancer,2010,1(8):822-835.
[9]Sivasankaran B,Degen M,Ghaffari A,et al.Tenascin-C is a no-vel RBPJkappa-induced target gene for Notch signaling in gliomas[J].Cancer Res,2009,69(2):458-465.
[10]Xu P,Yu S,Jiang R,et al.Differential expression of Notch family members in astrocytomas and medulloblastomas[J].Pathol Oncol Res,2009,15(4):703-710.
[11]Xu P,Zhang A,Jiang R,et al.The different role of Notch1and Notch2in astrocytic gliomas[J].PLoS One 2013,8(1):e53654.
[12]Xu P,Qiu M,Zhang Z,et al.The oncogenic roles of Notch1in astrocytic gliomas in vitro and in vivo[J].J Neurooncol,2010,97(1):41-51.
[13]Noseda M,Karsan A.Notch and minichromosome maintenance(MCM)proteins:integration of two ancestral pathways in cell cycle control[J].Cell Cycle,2006,5(23):2 704-2 709.