HPLC法同時測定貫葉金絲桃中蘆丁、金絲桃苷和槲皮素的含量

傳娟娟，張寶陽

(陜西省延安市藥品檢驗所，延安　716000)

?

HPLC法同時測定貫葉金絲桃中蘆丁、金絲桃苷和槲皮素的含量

傳娟娟，張寶陽

(陜西省延安市藥品檢驗所，延安716000)

摘要：目的建立貫葉金絲桃原藥中蘆丁、金絲桃苷和槲皮素的含量測定方法。方法樣品經丙酮超聲波輔助提取，采用Diamonsil?C18柱(250 mm ×4.6 mm，5 μm)分離測定；以A相乙腈-甲醇-甲酸(89.8∶10∶0.2)，B相水-甲醇-甲酸(79.8∶20∶0.2)為流動相梯度洗脫；檢測波長為270 nm；流速為1.0 mL·min-1。結果蘆丁的進樣量在0.454～4.540 μg范圍內(r=0.999 7)，金絲桃苷的進樣量在0.480～4.800 μg范圍內(r=0.999 2)，槲皮素的進樣量在0.794～7.940 μg范圍內(r=0.999 5)，都與峰面積線性關系良好。加樣回收率分別為99.01%，96.04%和95.97%(n=6)。結論該方法快捷、簡便，結果準確、可靠，可作為貫葉金絲桃原藥中有效成分的質量控制方法。

關鍵詞：貫葉金絲桃；蘆丁；金絲桃苷；槲皮素；高效液相色譜法

貫葉金絲桃是藤黃科金絲桃屬多年生草本植物HypreicumperforatumL.，其藥用部位為干燥地上部分[1]；主要產地有四川、貴州、陜西、甘肅和湖南[2]。貫葉金絲桃有清熱解毒、抗菌消炎、消腫止血和利濕止痛等功效[3]。目前，用貫葉金絲桃提取物制成的制劑已在歐美大量上市，廣泛用于治療輕、中度抑郁，未發現有明顯的不良反應，被譽為天然氟西汀[4]。其開發應用在國際上引起了廣泛的關注，成為近年來世界暢銷的草藥之一。

我國對于貫葉金絲桃的研究利用目前僅限于獸藥和提取物(金絲桃素質量分數大于0.3%)出口。貫葉金絲桃中金絲桃素含量較低，不易測定。為了更加有效地開發貫葉金絲桃，更好地反映貫葉金絲桃藥材質量，本文用HPLC法對貫葉金絲桃中蘆丁、金絲桃苷和槲皮素進行含量測定，建立了一種簡便、準確的測定方法。

1儀器與試藥

1.1儀器Waters高效液相色譜儀(1525檢測泵，2487雙波長紫外檢測器，Empower 色譜工作站)；數控超聲波清洗器(KQ-250DE，昆山市超聲儀器有限公司)；旋轉蒸發器(RE-52 AAA，溫州奧利生物醫學儀器廠)；電子天平(BS224S，北京賽多利斯儀器有限公司)；乙腈、甲醇(色譜純，TEDIA)；水為超純水；其余試劑為分析純。

1.2試藥金絲桃苷對照品(批號111521-200303，中國藥品生物制品檢定研究院)；蘆丁、槲皮素對照品(由陜西科技大學生命科學與工程學院李楠老師提供，質量分數分別為98%和95.38%)；植物樣品為市購，產地為甘肅武都，經西北農林科技大學生命科學學院陳彥生研究員鑒定為貫葉金絲桃。

2方法

2.1色譜條件色譜柱：Diamonsil?C18(250 mm ×4.6 mm，5 μm)。A相為乙腈-甲醇-甲酸(89.8∶10∶0.2)，B相為水-甲醇-甲酸(79.8∶20∶0.2)。梯度洗脫，0～5 min時A相10%，5～15 min時A相10%→40%；15～40 min時A相40%→90%；40～50 min時A相90%→100%；50～65 min時A相100%；65～66 min時A相100%→10%。檢測時間：66 min；檢測波長：270 nm；流速：1.0 mL·min-1；柱溫：室溫；進樣量：20 μL。理論塔板數按照金絲桃苷峰計算不低于3 000，金絲桃苷和蘆丁峰分離度大于1.5。

2.2對照品溶液的制備精密稱取對照品蘆丁6.0 mg，金絲桃苷5.8 mg和槲皮素10.4 mg，置于25 mL棕色量瓶中，加甲醇適量超聲溶解，稀釋至刻度，搖勻，用針孔濾膜(0.45 μm) 濾過，取續濾液即得。2.3供試品溶液的制備

2.3.1原藥材供試品溶液的制備取貫葉金絲桃藥材，粉碎，過60目篩，精密稱取2.0 g，加80 mL丙酮超聲提取，超聲功率為200 W，超聲3次，每次40 min，將所得溶液過濾，濾液濃縮至干，殘渣用適量色譜甲醇溶解，定容至10 mL的棕色量瓶，用針孔濾膜(0.45 μm) 濾過，取續濾液，即為原藥材供試品溶液[5]。2.3.2原藥材不同部位供試品溶液的制備將貫葉金絲桃藥材的莖、葉和花分別粉碎，過60目篩，各精密稱取2.0 g，操作同2.3.1項下方法，即得莖、葉和花的供試品溶液[6]。

2.4線性關系考察分別精密量取2.2項下對照品溶液2，4，6，10和20 μL，注入高效液相色譜儀，按照2.1項下的色譜條件對蘆丁、金絲桃苷和槲皮素進行測定，分別以進樣量(μg)為橫坐標X，峰面積值(A)為縱坐標Y，制作標準曲線，計算得出回歸方程：Y蘆丁=1 618 251.587X+421 577.874，r=0.999 7，線性范圍：0.454～4.540 μg；Y金絲桃苷=3 253 070.587X+881 160.496，r=0.999 2，線性范圍：0.480～4.800 μg；Y槲皮素=2 317 307.235X+260 005.032，r=0.999 5，線性范圍：0.794～7.940 μg。其對照品的色譜圖見圖1。2.5精密度實驗取2.3.1項下供試品溶液，在上述色譜條件下連續進樣6次，每次進樣20 μL，測定蘆丁、金絲桃苷及槲皮素的峰面積，分別計算其RSD值為1.26%，1.31%和1.17%(n=6)，表明符合要求。2.6重復性實驗取甘肅武都貫葉金絲桃藥材粉末，按照2.3.1項下方法平行制備原藥材供試品溶液5份，每份進樣20 μL，測定蘆丁、金絲桃苷及槲皮素的峰面積，分別計算其RSD值為1.59%，1.94%和1.46%(n=5)，表明該方法重復性良好。

圖1對照品的色譜圖

1.蘆丁；2.金絲桃苷；3.槲皮素

Fig.1 The chromatogram of reference substance

1.rutin；2.hyperoside；3.quercetin

2.7穩定性實驗取甘肅武都貫葉金絲桃藥材粉末，按照2.3.1項下方法制備供試品溶液1份，置于棕色量瓶中，室溫放置，在0，2，4，8，12和24 h分別進樣20 μL，測定蘆丁、金絲桃苷及槲皮素的峰面積，分別計算其RSD值為2.04%，2.36%和2.15%，結果表明供試品溶液中蘆丁、金絲桃苷及槲皮素在24 h內基本穩定。

2.8回收率實驗精密稱取6份甘肅武都貫葉金絲桃粉末各1.0 g，加入質量濃度分別為0.203,0.232和0.416 mg·mL-1的蘆丁對照品、金絲桃苷對照品和槲皮素對照品適量，依照供試品溶液的方法制備并依法測定，計算回收率，所得蘆丁、金絲桃苷和槲皮素的平均回收率分別為99.01%，96.04%和95.97%，RSD值分別為1.07%，1.24%和1.59%(n=6)，結果見表1。

表1回收率結果

Tab.1 Results of recovery tests

(n=6)

2.9含量測定按照2.1項下的色譜條件，測定2.2和2.3項下的待測溶液，所得樣品色譜圖見圖2。根據色譜圖的峰面積，采用外標法計算含量，結果見表2。

從含量測定結果可知，蘆丁在葉中的含量最高，金絲桃苷在花和葉中的含量遠遠高于莖中的含量，槲皮素在花中含量最高，葉次之，故應在花期采收地上部分；藥材質量以花、葉多者為優。

表2樣品測定結果

Tab.2 The determination results of samples

樣品蘆丁含量/mg·g-1金絲桃苷含量/mg·g-1槲皮素含量/mg·g-1全草0.3520.6450.503莖0.3840.5610.267葉0.8561.1751.105花0.2911.1831.628

圖2HPLC圖

A.全草； B.莖； C.葉； D.花； 1.蘆丁； 2.金絲桃苷； 3.槲皮素

Fig.2 HPLC chromatograms

A.herb；B.stem；C.leaf；D.flower；1.rutin； 2.hyperoside； 3.quercetin

3討論

色譜條件的研究：參考張俊松等[7]所用的甲醇-0.006 mol·L-1磷酸氫二鈉緩沖鹽(用磷酸調節pH值為6.5)梯度洗脫和鄭清明等[8]所用的流動相：A相為水-乙腈-磷酸(80∶19∶1)，B相為甲醇-乙腈-磷酸(40∶59∶1)梯度洗脫，效果均不理想。參考Wenkui Li等[9]所用的流動相:A相乙腈-甲醇-三氟乙酸(89.5∶10∶0.5)，B相水-甲醇-三氟乙酸(79.5∶20∶0.5)，并將其中的三氟乙酸分別換成不同比例的甲酸和冰醋酸，結果表明，A相乙腈-甲醇-甲酸(89.8∶10∶0.2)和B相水-甲醇-甲酸(79.8∶20∶0.2)進行梯度洗脫時分離效果最好。對流動相比例和洗脫時間進行了大量研究，優選出洗脫程序。對不同檢測波長(254，270，360和590 nm)進行考察，結果表明，在270 nm處分離效果較好，故將270 nm作為檢測波長。考察了不同流速(0.6和1.0 mL·min-1)對峰的分離效果的影響，選用流速為1.0 mL·min-1。

實驗中用HPLC法對貫葉金絲桃從原藥材到不同的用藥部位中3種有效成分進行了含量測定，比較系統全面地反映了貫葉金絲桃藥材的內在質量。為今后貫葉金絲桃的進一步研究和開發利用提供了實驗依據。

參考文獻：

[1]國家藥典委員會.中國藥典2015年版 [S].一部.北京：中國醫藥科技出版社，2015:231.

[2]中國科學院中國植物志編輯委員會.中國植物志[M].北京：北京科學出版社，1990.21.

[3]李艷，曹學麗，付鵬，等.貫葉金絲桃活性成分及其分離純化與檢測方法的研究進展[J].藥學進展，2008，32(1)：15-20.

[4]王澤劍.圣約翰草提取物的臨床研究[J].國外醫學精神病學分冊，2003，30(4)：211-213.

[5]劉超，羅晶，馬輝，等.濁點萃取法提取貫葉連翹總黃酮的研究[J].西北藥學雜志，2012，27(4)：296-298.

[6]曾建國，張勝，陳玉秀.HPLC法分析貫葉連翹不同部位中金絲桃素的含量[J].西北藥學雜志，2000，15(4)：158.

[7]張俊松，王曉利，羅謙，等.貫葉連翹的HPLC指紋圖譜[J].華西藥學雜志，2006，21(5)：440-442.

[8]鄭清明，秦路平，鄭漢臣，等.金絲桃屬植物的HPLC指紋譜研究[J].中草藥，2003，34(4)：365-370.

[9]Li W,Fitzloff J F.High performance liquid chromatographic analysis of St.John′s Wort with photodiode array detection[J].J Chromatogr B Biomed Sci Appl，2001，765(1)：99-105.

doi:10.3969/j.issn.1004-2407.2016.04.009

中圖分類號：R927.2

文獻標志碼：A

文章編號：1004-2407(2016)04-0356-05

(收稿日期：2015-11-23)

Simultaneous determination of rutin，hyperoside and quercetin in Hypericum perforatum by HPLC

CHUAN Juanjuan，ZHANG Baoyang

(Institute of Drug Inspection of Yan′an Shaanxi，Yan′an 716000，China)

Abstract:Objective To establish the assay of rutin，hyperoside and quercetin in raw herb of Hypericum perforatum by HPLC.Methods Samples were extracted with acetone with the assist of ultrasonic wave，separated and determined by HPLC using Diamonsil?C18column (250 mm × 4.6 mm，5 μm).Phase A acetonitrile-methanol-formic acid (89.8∶10∶0.2) and phase B water-methanol-formic acid (79.8∶20∶0.2) were used as the mobile phase at 1.0 mL·min-1and gradient elution；and detected at a wavelength of 270 nm.Results The injection amount of rutin from 0.454 to 4.540 μg(r=0.999 7)，hyperoside from 0.480 to 4.800 μg (r=0.999 2)，quercetin from 0.794 to 7.940 μg (r=0.999 5) showed good linearity with the peak area.The adding recoveries were 99.01%，96.04% and 95.97%(n=6)，respectively.Conclusion It′s a fast，simple，accurate，and reliable analysis method，which can be used to control the quality of the active components of Hypericum perforatum in the raw herb.

Key words：Hypericum perforatum；rutin；hyperoside；quercetin；HPLC