陳 恩 林 琳 呂賽平 陳杰妮 陳純靜 鄒學森
(江西省腫瘤醫院檢驗科,南昌330029)
?
青霉素誘導的大鼠癲癇模型中STAT3及IL-6表達①
陳恩林琳②③呂賽平陳杰妮④陳純靜③鄒學森
(江西省腫瘤醫院檢驗科,南昌330029)
①本文受江西省衛生廳中醫藥科研基金項目(2013B006)資助。
②廈門醫學院基礎醫學部,廈門361008 。
③中南大學湘雅醫學院免疫學系,長沙410078。
④攀枝花市第二人民醫院神經內科,攀枝花617000。
目的:通過構建青霉素誘導的大鼠癲癇動物模型,探討STAT3及IL-6在青霉素誘導的癲癇大鼠模型中的表達。方法:腹腔注射不同劑量的青霉素,制備癲癇動物模型,觀察各組大鼠腦電圖及行為學,熒光定量PCR方法檢測各組動物IL-6及STAT3的mRNA表達量;ELISA法檢測血清中IL-6的分泌量; Western blot檢測各組動物STAT3的蛋白表達。結果:500 U/kg和800 U/kg青霉素腹腔注射均出現癲癇行為學發作癥狀及典型的癲癇腦電波,癲癇發作率為100%;和對照組比較,模型組大鼠IL-6以及STAT3 mRNA 水平明顯升高,血清中IL-6分泌增加,STAT3蛋白表達水平無顯著性差異,但p-STAT3蛋白表達水平顯著增加。結論:在青霉素誘導的大鼠癲癇模型中,STAT3及IL-6起著重要的作用。
癲癇;大鼠;STAT3;IL-6
癲癇(Epilepsy)是神經系統疾病中發病率僅次于腦血管疾病的第二大類疾病,是由大腦神經元的異常反復放電所引起,以機體暫時性中樞神經系統功能失常為特征的一組疾病和綜合征,臨床表現為運動、感覺、意識、行為、自主神經等功能障礙[1]。青霉素作為一種廣譜抗生素廣泛應用于臨床,但其也是一種經典的癲癇致病劑。青霉素急性點燃動物癲癇病發作的模型己獲公認,并被廣泛用于癲癇的電生理、生化、解剖學等方面的研究;但青霉素引起癲癇的機制仍不完全清楚,需進一步研究。
神經系統是由神經元和膠質細胞組成的復雜的網絡結構,星形膠質細胞與神經元關系密切,不僅起到傳統的支持、營養和保護神經元的作用,也積極參與神經系統的發生、發育及其疾病過程。因此,神經系統的病變必然涉及到星形膠質細胞的作用。反應性增生的星形膠質細胞參與了癲癇的反復發作。星形膠質細胞分化的過程中,STAT 蛋白家族在整個分化過程中都持續被激活。STATs家族包括7個成員[2],其中STAT3蛋白的研究倍受重視。研究發現,星形膠質細胞的特異性標志GFAP的啟動子區域有STAT3的結合位點,JAK/STAT信號途徑在星形膠質細胞增生中起著重要作用[3-5];也有研究表明,JAK/STAT途徑在星形膠質細胞增生中只起著微不足道的作用[6,7],因此研究STAT3在癲癇中的作用就十分必要。
研究表明,癲癇的發病與神經-免疫-內分泌網絡的調節失衡有關,以神經機制為主,免疫和內分泌因素分別在受體、信使和基因水平對其進行調節。IL-6作為具有最廣泛的生物學效應的細胞因子之一,具有促炎和抗炎的雙向作用,同時,IL-6的信號轉導也主要依賴于STAT3的參與[8]。因此,IL-6在癲癇疾病的致病機制研究尤為必要。基于此,本文擬通過構建青霉素誘導的大鼠癲癇動物模型,探討STAT3及IL-6在青霉素誘導的癲癇大鼠模型中的表達,為進一步研究癲癇發病機制提供實驗基礎。
1.1實驗動物及材料體重(240±20)g的健康成年SD大鼠48只,購于中南大學實驗動物中心,雌雄不限。青霉素由華北制藥股份有限公司生產;Trizol試劑購于北京達科為公司;MMLV逆轉錄試劑盒購自Fermantas; qRT-PCR試劑購自BioRad;STAT3,p-STAT3 抗體、內參和過氧化物酶標記的二抗均購自美國Cell Signaling Technology 公司;IL-6 ELISA試劑盒購于美國R&D公司,所用引物由華大基因公司合成。
1.2方法
1.2.1癲癇動物模型的建立(1)SD大鼠分組:SD大鼠隨機分成4組,每組12只;A組為空白對照組,B組為實驗對照組;C組為500 U/kg青霉素致癲癇組;D組為800 U/kg青霉素致癲癇組。(2)植入皮質電極:每組隨機選擇3只SD大鼠,用3%戊巴比妥鈉(35 mg/kg)腹腔麻醉并固定,切開頭皮,剝開顳肌等組織,暴露顱骨。待干燥后在前鹵后中線旁3.0 mm左右處各鉆一小孔,植入電極,其中一個為記錄電極,一個為參考電極,同時在耳根處另接一銅線為接地線。將所有銅線和皮膚一起縫合后單籠飼養,恢復7 d。(3)癲癇動物模型建立:空白對照組不進行任何處理,在相同條件下進行飼養;500 U/kg青霉素致癲癇組為按500 U/kg體重腹腔注射青霉素;800 U/kg青霉素致癲癇組為按800 U/kg體重腹腔注射青霉素;實驗對照組為等量生理鹽水注射。(4)腦電圖記錄及行為學觀察:采用RM6240C信號處理系統記錄皮層腦電圖,腹腔注射青霉素后即開始記錄,采集頻率為800 Hz,掃描速度為250 ms/div,靈敏度100 μl,時間常數為0.2 s ,連續描記1.5 h。行為學變化根據Racine標準分為6級[9]:0級為無行為學變化;Ⅰ級為SD大鼠出現胡須動及咀嚼;Ⅱ級為SD大鼠出現頭部抽搐或甩尾;Ⅲ級為SD大鼠出現單肢抽搐;Ⅳ級為SD大鼠出現多肢抽動或強直;Ⅴ級為SD大鼠出現四肢節律性抽搐、跌倒或翻滾。
1.2.2熒光定量PCR技術檢測IL-6以及STAT3轉錄水平小鼠發生癲癇后2 h取腦組織,將海馬勻漿后用用Trizol提取總RNA,將RNA樣本用MMLV試劑盒逆轉錄合成cDNA,反應體系如下:5×buffer 4 μl,mRNA 2 μl,dNTP 1 μl,Oligd T 1 μl,DEPC水 11 μl,MMLV 1 μl,總共20 μl;于42℃ 15 min,95℃ 2 min進行cDNA合成反應保存在-80℃。剩余組織凍存備用進行Western blot實驗,或用多聚甲醛灌流固定腦組織進行免疫組化實驗。
并利用Primer2.0及Primer-Blast設計待測基因的引物(表1)用于qRT-PCR檢測mRNA表達量。所采用的qRT-PCR體系(20 μl)為:2×SYBR Premix(BioRad) 10 μl;Primers 0.2 μmol/L;cDNA 0.5 μl;qRT-PCR循環條件如下:95℃變性2 min,后以94℃變性15 s,55℃退火15 s,40個循環,每一循環結束后記錄熒光值,擴增完畢后繪制熔解曲線。采用△△Ct法計算各目的基因 mRNA的表達變化。使用BioRad CFX manager 2.0分析不同感染狀態下基因的差異表達情況。
ELISA檢測各組動物血清中IL-6分泌水平:動物在腹腔注射青霉素導致癲癇發作后2 h,尾靜脈取血0.5 ml,待凝固后分離血清,-20℃保存,測定前置室溫復融,混勻,4℃ 3 000 r/min離心5 min,取上清液按ELISA試劑盒說明書進行操作,檢測IL-6的表達。
1.2.3Western blot檢測各組動物STAT3的蛋白表達冰凍狀態下切取腦組織50 mg放入EP管,用剪刀剪碎,加入蛋白裂解液;取加入了細胞裂解液的樣本冰上孵育30 min,超聲粉碎后4℃ 12 000 r/min離心20 min,取少量用Bradford法測定蛋白濃度。取25 μg蛋白經100 g/L SDS-聚丙烯酞胺凝膠電泳分離,將剪好大小的PVDF膜放入甲醇溶液中10 s激活,然后將PVDF膜和厚濾紙一起浸入半干轉緩沖液中,室溫浸泡30 min;參照蛋白Marker切取所需目的蛋白所在的分離膠,浸入半干轉緩沖液中;采用恒壓20 V轉膜;轉移結束后加入封閉液(含5%脫脂奶粉的PBS-T溶液),平緩搖動的搖床平臺上于室溫溫育1 h,加入一抗,置于4℃搖床過夜。用辣根過氧化物酶標記的二抗檢測蛋白表達。用成像系統進行光密度掃描,對掃描結果進行統計學處理。

表1 qRT-PCR引物序列Tab.1 Primers for qRT-PCR

2.1大鼠行為學及腦電圖變化空白對照組和實驗對照組大鼠活動敏捷,進水進食正常,毛色順滑。腹腔注射500 U/kg或800 U/kg青霉素后,動物逐漸反應遲鈍,5~15 min后眼神呆滯,繼而出現點頭,頭部肌群抖動,扭腰等動作;20~30 min后,動物出現反復頭后仰性抽動并逐漸加重,之后擴展到四肢,出現發作性四肢及全身強直,四肢直立、背部弓起,身體扭曲,尾巴強直上翹,尖叫,全身肌肉強烈抽動,突然奔跑,跳躍,摔倒,全身強直持續抽搐,跌倒無法爬起,嚴重者死亡,整個發作以強直、陣攣表現為主。術后因癲癇大發作而致死6只。500 U/kg和800 U/kg青霉素注射組癲癇發作率均為100%。
空白對照組和實驗對照組大鼠為正常腦電波,無癲癇樣波形(圖1)。腹腔注射500 U/kg或800 U/kg青霉素組大鼠出現典型的尖波、棘波等癲癇放電(圖2)。
2.2各組動物開始抽搐所需時間及發作程度比較見表2、3。
2.3各組動物中IL-6以及STAT3轉錄水平空白對照組和實驗對照組之間,IL-6以及STAT3轉錄水平無顯著性差異(P>0.05,n=12)。腹腔注射500 U/kg或800 U/kg青霉素組和空白對照組和實驗對照組相比較,IL-6以及STAT3 mRNA 水平明顯升高,差異具有統計學意義(P<0.05,n=12)。見圖3。

圖1 對照組大鼠大腦皮層腦電圖Fig.1 EEG of control group rat

圖2 實驗組大鼠大腦皮層腦電圖Fig.2 EEG of experimental group rat

表2 各組動物開始抽搐所需時間比較±s)Tab.2 Time of began to twitch ±s)

表3 各組動物發作程度比較Tab.3 Comparing attack degree of different groups

圖3 各組動物中IL-6以及STAT3 mRNA 水平Fig.3 Expression of IL-6 and STAT3 mRNANote: BL.Blank;C.Control;500 U/ kg.Intraperitoneal injection 500 U/kg penicillin;800 U/kg.Intraperitoneal injection 800 U/kg penicillin.

圖4 各組動物中IL-6分泌水平Fig.4 Expression of IL-6 proteinNote: BL.Blank;C.Control;500 U/kg.Intraperitoneal injection 500 U/kg penicillin;800 U/kg.Intraperitoneal injection 800 U/kg penicillin.

圖5 各組動物STAT3蛋白表達水平Fig.5 Expression of STAT3 proteinNote: BL.Blank;C.Control;500 U/kg.Intraperitoneal injection 500 U/kg penicillin;800 U/kg.Intraperitoneal injection 800 U/kg penicillin.
2.4各組動物中IL-6分泌水平空白對照組和實驗對照組之間,IL-6分泌水平無顯著性差異(P>0.05,n=12)。腹腔注射500 U/kg或800 U/kg青霉素組和空白對照組和實驗對照組相比較,血清IL-6以分泌水平明顯升高,差異具有統計學意義(P<0.05,n=12)(見圖4)。
2.5各組動物STAT3的蛋白表達水平空白對照組和實驗對照組之間,STAT3及p-STAT3蛋白表達水平無顯著性差異(P>0.05,n=12)。腹腔注射500 U/kg或800 U/kg青霉素組和空白對照組和實驗對照組相比較,STAT3蛋白表達水平也無顯著性差異(P>0.05,n=12),但p-STAT3蛋白表達水平存在顯著性差異(P<0.05,n=12)(見圖5)。
癲癇作為腦血管疾病中的第二大類疾病,嚴重危害著人類的健康。青霉素自1928年被英國細菌學家弗萊明首先發現后,被廣泛應用于臨床,但其也是一種經典的癲癇致病劑。青霉素急性點燃動物癲癇病發作的模型己獲公認,并被廣泛用于癲癇的電生理、生化、解剖學等方面的研究。青霉素通過抑制γ-氨基丁酸能神經元,使內源性抑制性突觸活動減弱,同時谷氨酸或乙酰膽堿介導的神經細胞興奮性增強,導致癲癇發作性放電的產生及維持[10,11]。我們選擇500 U/kg或800 U/kg青霉素腹腔注射,大鼠出現以強直、陣攣表現為主的癲癇行為學發作癥狀,同時腦電波顯示典型的尖波,棘波等癲癇放電現象,成功建立了癲癇大鼠動物模型。該模型潛伏期短、持續時間久、單位時間內放電次數多,與人類的癲癇放電類似,可以很好地用于進一步的研究。
STAT蛋白家族是一組可以被許多細胞因子、生長因子和其他刺激所激活的信號通路分子,目前已發現7種STATs,以STAT3的研究最為深入[12]。STAT3 是一種存在于細胞漿與酪氨酸磷酸化信號通道偶聯的雙功能蛋白。受到刺激后,STAT3 在一個特定的酪氨酸位點(Tyr705)發生磷酸化,激活的 STAT3形成同源或異源二聚體而轉移至胞核,然后與特定的啟動基因結合,如早期即刻基因 c-fos 和 jun-B 啟動基因等[13-15]。STAT3 在腦內的激活可以由多種因素所引起,如腦缺血、炎癥刺激及癲癇等[16-18]。IFN-γ、IL-6、IL-10的信號傳導都需要STAT的參與,根據靶組織的不同, STAT3激活的結果可以是增殖、存活或者凋亡。IL-6家族、IL-10的信號轉導均主要依賴于STAT3,且均受細胞因子信號轉導抑制分子3(Suppressor of cytokine signaling 3,SOCS3)調控,但對SOCS3的調控敏感性不同[19]。我們本次研究發現,在青霉素誘導的癲癇大鼠模型中,腹腔注射500 U/kg或800 U/kg青霉素組和空白對照組和實驗對照組相比較,IL-6的 mRNA及血清水平均明顯升高,STAT3 的mRNA水平都較對照組增高,差異有顯著性意義。說明IL-6及STAT3 在青霉素誘導的癲癇中起著重要作用。但是在蛋白表達水平, 空白對照組和實驗對照組之間,STAT3及p-STAT3蛋白表達水平無顯著性差異。腹腔注射500 U/kg或800 U/kg青霉素組和空白對照組和實驗對照組相比較,STAT3蛋白表達水平也無顯著性差異,但p-STAT3蛋白表達水平存在顯著性差異,差異具有統計學意義。說明在青霉素誘導的癲癇中STAT3是通過磷酸化的方式發揮作用。
神經系統是由神經元和膠質細胞組成的復雜的網絡結構,星形膠質細胞與神經元關系密切,不僅起到傳統的支持、營養和保護神經元的作用,也積極參與神經系統的發生、發育以及神經系統的疾病過程。因此,神經系統的病變必然影響星形膠質細胞。癲癇發病機制研究的新進展已表明,膠質細胞在癲癇復發中具有重要作用。研究報道STAT3作為一個星形膠質細胞發展的重要的調節因子,主要是通過氧化磷酸化和線粒體呼吸爆發的作用發揮作用[20]。因此,對STAT3的抑制,可以通過影響星形膠質細胞活性或/和抑制線粒體的失能來去除其疾病修飾效應,作為癲癇病治療的有效靶點。
我們檢測到模型組和對照組相比較,IL-6的 mRNA及血清水平均明顯升高,和Liimatainen等[21]報道的相一致,但是對IL-6的升高在癲癇中的作用仍存在爭議。有報道認為癲癇發作后,可以激活腦內的免疫程序,引起IL-6 水平升高,并可進一步促進癲癇的發作[22]。也有文獻認為癲癇發作后引起 IL-6 水平升高可能是對嚴重的邊緣性癲癇的適應,可能對神經存活具有重要性[23]。這個還需要進一步的研究。同時,IL-6的信號轉導主要依賴于STAT3的參與[8]。IL-6與其膜受體結合后,激活STAT3,使其二聚化進入核內啟動多種基因轉錄活化,啟動多種效應,包括細胞增殖反應、急性炎癥反應以及細胞凋亡等。在癲癇動物模型中,可能是腦內IL-6的增加,引起STAT3的活化,活化的STAT3引起識別受體的進一步活化,通過一系列信號傳導,導致IL-6表達增加,形成持續的癲癇狀態。是否存在這種正反饋循環,還需進一步驗證。
有研究報道,300、500、700及800 U/kg青霉素腹腔注射均可以建立大鼠癲癇疾病動物模型[24,25]。本研究選擇500 U/kg及800 U/kg青霉素腹腔注射,目的是為了排除模型動物中IL-6及STAT3的變化不是因青霉素劑量所引起,實驗結果也證實了我們的假設,即IL-6及STAT3的變化與青霉素用量之間無必然聯系。本文研究證明,在青霉素誘導的大鼠癲癇模型中,STAT3及IL-6起著重要的作用,本文將為進一步深入研究癲癇的致病機制提供一個新的思路。
參考文獻:
[1]England MJ,Liverman CT,Schultz AM,etal.Epilepsy across the spectrum:promoting health and understanding.A summary of the Institute of Medicine report[J].Epilepsy Behav,2012,25(2):266-276.
[2]Aaronson DS,Horvath CM.A road map for those who don′t know JAK-STAT[J].Science,2002,296(5573):1653-1655.
[3]Xiao Q,Du Y,Wu W,etal.Bone morphogenetic proteins mediate cellular response and,together with Noggin, regulate astrocyte differentiation after spinal cord injury[J].Exp Neurol,2010,221(2):353-366.
[4]Leung YK,Pankhurst M,Dunlop SA,etal.Metallothionein induces a regenerative reactive astrocyte phenotype via JAK/STAT and RhoA signalling pathways[J].Exp Neurol,2010,221(1):98-106.
[5]Yamada T,Urano-Tashiro Y,Hashi Y,etal.The U-box-type ubiquitin ligase PRP19beta regulates astrocyte differentiation via ubiquitination of PTP1B[J].Brain Res,2013,1524:12-25.
[6]Vessal M,Dugani CB,Solomon DA,etal.Might astrocytes play a role in maintaining the seizure-prone state?[J].Brain Res,2005,1044(2):190-196.
[7]He Z,Li JJ,Zhen CH,etal.Effect of leukemia inhibitory factor on embryonic stem cell differentiation:implications for supporting neuronal differentiation[J].Acta Pharmacol Sin,2006,27(1):80-90.
[8]Gao B,Wang H,Lafdil F,etal.STAT proteins-key regulators of anti-viral responses,inflammation,and tumorigenesis in the liver[J].J Hepatol,2012,57(2):430-441.
[9]Racine RJ.Modification of seizure activity by electrical stimulation.II.Motor seizure[J].Electroencephalogr Clin Neurophysiol,1972,32(3):281-294.
[10]Gouveia TL,Scorza FA,Iha HA,etal.Lovastatin decreases the synthesis of inflammatory mediators during epileptogenesis in the hippocampus of rats submitted to pilocarpine-induced epilepsy[J].Epilepsy Behav,2014,36:68-73.
[11]Choi H,Kim YK,Kang H,etal.Abnormal metabolic connectivity in the pilocarpine-induced epilepsy rat model:a multiscale network analysis based on persistent homology[J].Neuroimage,2014,99:226-236.
[12]Hu X,Ivashkiv LB.Cross-regulation of signaling pathways by interferon-gamma:implications for immune responses and autoimmune diseases[J].Immunity,2009,31(4):539-550.
[13]El-Habr EA,Levidou G,Trigka EA,etal.Complex interactions between the components of the PI3K/AKT/mTOR pathway,and with components of MAPK,JAK/STAT and Notch-1 pathways,indicate their involvement in meningioma development[J].Virchows Arch,2014,465(4):473-485.
[14]Nur H,Rao L,Frassanito MA,etal.Stimulation of invariant natural killer T cells by alpha-Galactosylceramide activates the JAK-STAT pathway in endothelial cells and reduces angiogenesis in the 5T33 multiple myeloma model[J].Br J Haematol,2014,167(5):651-663.
[15]Gigante M,Diella S,Ranieri E.Targeting the JAK/STAT pathway in cytotoxic T lymphocytes(CTL)by next generation sequencing(NGS)[J].Methods Mol Biol,2014,1186:253-268.
[16]Choi JS,Kim SY,Cha JH,etal.Upregulation of gp130 and STAT3 activation in the rat hippocampus following transient forebrain ischemia[J].Glia,2003,41(3):237-246.
[17]Gautron L,Lafon P,Chaigniau M,etal.Spatiotemporal analysis of signal transducer and activator of transcription 3 activation in rat brain astrocytes and pituitary following peripheral immune challenge[J].Neuroscience,2002,112(3):717-729.
[18]Choi JS,Kim SY,Park HJ,etal.Upregulation of gp130 and differential activation of STAT and p42/44 MAPK in the rat hippocampus following kainic acid-induced seizures[J].Brain Res Mol Brain Res,2003,119(1):10-18.
[19]Hong F,Jaruga B,Kim WH,etal.Opposing roles of STAT1 and STAT3 in T cell-mediated hepatitis:regulation by SOCS[J].J Clin Invest,2002,110(10):1503-1513.
[20]Grabenstatter HL,Del AY,Carlsen J,etal.The effect of STAT3 inhibition on status epilepticus and subsequent spontaneous seizures in the pilocarpine model of acquired epilepsy[J].Neurobiol Dis,2014,62:73-85.
[21]Liimatainen S,Fallah M,Kharazmi E,etal.Interleukin-6 levels are increased in temporal lobe epilepsy but not in extra-temporal lobe epilepsy[J].J Neurol,2009,256(5):796-802.
[22]Liimatainen S,Fallah M,Kharazmi E,etal.Interleukin-6 levels are increased in temporal lobe epilepsy but not in extra-temporal lobe epilepsy[J].J Neurol,2009,256(5):796-802.
[23]Schwob JE,Fuller T,Price JL,etal.Widespread patterns of neuronal damage following systemic or intracerebral injections of kainic acid:a histological study[J].Neuroscience,1980,5(6):991-1014.
[24]張茜,白潔,張琳娜,等.氧化苦參堿對青霉素致癇大鼠血清中細胞因子的影響[J].寧夏醫學院學報,2006,28(3):202-203.
[25]白海俠,李軍.青霉素癲癇動物模型的實驗研究[J].現代中醫藥,2006,26(2):42-43.
[收稿2015-11-11修回2016-03-10]
(編輯張曉舟)
Expression of STAT3 and IL-6 in epilepsy rat caused by penicillin
CHEN En,LIN Lin,Lü Sai-Ping,CHEN Jie-Ni,CHEN Chun-Jing,ZOU Xue-Sen.Clinical Laboratory,Jiangxi Province Tumor Hospital,Nanchang 330029,China
Objective:To investigate the expression of IL-6 and STAT3 in the epilepsy rat caused by penicillin.Methods: The model of epilepsy in rats was made by abdominal injecting penicillin.Then the EEG and behavior was observed in each group and the level of IL-6/STAT3 transcription and cytokine IL-6 secretion in different groups was compared using qRT-PCR and ELISA respectively.The protein expression of STAT3 was detected using Western blot.Results: 500 U/kg and 800 U/kg rats injected penicillin were induced epilepsy and show typical epileptic seizures behavioral and brain waves,seizures was 100%;the level of IL-6/STAT3 transcription and IL-6 secretion in the model of epilepsy was significantly higher than control.There was no significant difference in the expression of STAT3 protein levels,but a significant increase in p-STAT3.Conclusion: Expression of STAT3 and IL-6 plays an important role in the Epilepsy Rat caused by penicillin.
Epilepsy;Rat;STAT3;IL-6
10.3969/j.issn.1000-484X.2016.08.006
R741.02文獻標志碼A
1000-484X(2016)08-1112-06
陳恩(1982年-),男,醫學博士,主管檢驗師,主要從事分子免疫方面的研究,同時供職于中南大學湘雅醫學院免疫學系,E-mail:cheneng3821@sina.com。
及指導教師:鄒學森(1961年-),男,主任技師,碩士生導師,主要從事免疫檢測方面的研究,E-mail:tom445x@126.com。