羅燕平,李家林,張雪飛
(1.翁源廣業清怡食品科技有限公司,廣東韶關 512000;2.廣東省食品工業研究所,廣東廣州 510220;3.廣東省食品公共實驗室,廣東廣州 510220)
?
微波輔助提取青稞β-葡聚糖工藝優化
羅燕平1,2,李家林1,2,張雪飛2,3
(1.翁源廣業清怡食品科技有限公司,廣東韶關512000;2.廣東省食品工業研究所,廣東廣州510220;3.廣東省食品公共實驗室,廣東廣州510220)
以青稞為原料,采用微波輔助法提取β-葡聚糖。研究了微波功率、微波處理時間、pH值、粉碎粒度對其得率的影響,通過正交試驗優化了提取工藝。結果表明,微波輔助提取青稞β-葡聚糖得率的最佳工藝條件為微波功率800 W,微波處理時間160 s,pH值10.5,粉碎粒度60目。該條件下,β-葡聚糖的得率為5.92%;各因素對微波輔助提取青稞β-葡聚糖得率的影響大小依次為微波功率>pH值>微波處理時間>粉碎粒度。三氯乙酸法、Sevage法及木瓜蛋白酶法3種除蛋白方法中,木瓜蛋白酶法效果最佳,其蛋白質去除率可達88.6%,β-葡聚糖保留率可達91.3%。
青稞;β-葡聚糖;微波;提取
青稞是禾本科大麥屬的一種禾谷類作物,又稱裸大麥、元麥、米大麥,主要產自西藏、青海、四川、云南等地[1]。青稞具有豐富的營養價值,含有較高的β-葡聚糖、蛋白質、纖維素和維生素,以及含量較低的脂肪和糖類[2]。據檢測,青稞β-葡聚糖平均含量為6.57%,優良品種青稞25含量為8.6%,是小麥平均含量的50倍。根據國內外研究報道,β-葡聚糖具有清腸、調節血糖、降低膽固醇和調節免疫力的四大生理功能[3-5]。
傳統的β-葡聚糖提取方法有熱水法、酸法和堿法[6]。熱水法提取β-葡聚糖得率低,提取時間長;酸法提取β-葡聚糖純度低;堿法提取時間較長。微波作為一種現代化食品加工技術,加熱效率高、處理溫度低且加熱均勻,能夠較好地保持食品組分中的色香味和營養物質含量[7-9]。因此,本文采用微波輔助法,從青稞中提取β-葡聚糖,研究微波功率、微波處理時間、pH值和粉碎粒度4個因素對其得率影響,通過正交試驗優化提取工藝,為青稞β-葡聚糖的提取提供理論依據。
1.1試驗材料
青稞購于西藏市場;β-葡聚糖標準樣品,Sigma公司產品。
1.2試驗儀器
格蘭仕微波爐,廣州格蘭仕公司產品;723型可見分光光度計,上海棱光技術有限公司產品;RE-52B型旋轉蒸發儀,上海笠化儀器設備有限公司產品;PHS-25型數顯酸度計,上海虹益儀器儀表有限公司產品;Centrifuge 5430型臺式高速離心機,德國艾本德股份公司產品;SKD-2000型全自動凱氏定氮儀,上海沛歐分析儀器有限公司產品。
1.3試驗方法
1.3.1微波提取青稞β-葡聚糖的工藝流程
青稞→粉碎→微波輔助提取→中溫、α-淀粉酶處理→離心(4 000 r/min,10 min) →上清液pH值調至7→真空濃縮→醇沉(濃縮液3倍體積的95%乙醇) →離心(4 500 r/min,10 min) →沉淀冷凍干燥→青稞β-葡聚糖粗提物。
1.3.2青稞β-葡聚糖得率測定
采用剛果紅標準曲線法測定青稞提取物中β-葡聚糖含量[10],按下述公式計算青稞β-葡聚糖得率。

式中:Y——青稞β-葡聚糖得率,%;
M1——提取的青稞β-葡聚糖質量,g;
M——干燥的青稞原料質量,g。
1.3.3單因素試驗設計
主要研究微波功率(600,700,800,900,1 000 W)、粉碎粒度(40,50,60,70,80目)、pH值(8,9,10,11,12) 和微波處理時間(60,120,180,240,300 s)等因素對青稞β-葡聚糖得率的影響。試驗時,每個條件下試驗設計3次平均試驗。
1.3.4正交試驗設計
在單因素試驗的基礎上,選取微波功率、粉碎粒度、pH值和微波處理時間4個因素設計正交試驗,確定最優工藝條件。
1.3.5青稞β-葡聚糖粗品的除蛋白方法
青稞β-葡聚糖粗品去除蛋白質的方法主要有三氯乙酸法(TCA法)、Sevage法和木瓜蛋白酶法,以蛋白質的去除率和β-葡聚糖的保留率為指標進行研究,確定最佳的方法。
(1)三氯乙酸法(TCA法)。取200 mL多糖提取液,滴加8%的三氯乙酸200 mL,混勻靜置8 h,離心(4 000 r/min,10 min) 除去沉淀,得到脫蛋白液。分別測定蛋白質去除率和β-葡聚糖保留率。
(2) Sevage法。取200 mL多糖提取液,滴加1 000 mL Sevage試劑(氯仿∶正丁醇=5∶1),混合均勻,離心(4 000 r/min,10 min),除去水層和溶液層交界處的變性蛋白質。重復4次,直到離液面交界處無白色混懸,得到脫蛋白液。分別測定蛋白質去除率和β-葡聚糖保留率。
(3)木瓜蛋白酶法。取200 mL多糖提取液,加入木瓜蛋白酶,調節pH值至6~7,置于50℃水浴4 h,采用80℃水浴,滅木瓜蛋白酶40 min,得到脫蛋白液。分別測定蛋白質去除率和β-葡聚糖保留率。
按照下列公式計算蛋白質去除率和β-葡聚糖的保留率。
蛋白質去除率=

2.1單因素試驗結果
2.1.1微波功率對青稞β-葡聚糖得率的影響
微波功率在600,700,800,900,1 000 W條件下,對青稞中β-葡聚糖得率的影響。
微波功率對青稞β-葡聚糖得率的影響見圖1。

圖1 微波功率對青稞β-葡聚糖得率的影響
由圖1可知,青稞中β-葡聚糖得率會隨著微波功率的增大而逐漸上升,在800 W時達到最大值;繼續增加微波功率,β-葡聚糖得率會下降。這可能是因為加大微波功率,使部分不可溶β-葡聚糖的糖苷鍵發生變化,轉化為水溶性β-葡聚糖,所以β-葡聚糖得率升高。當微波功率過高時,導致β-葡聚糖結構被破壞,β-葡聚糖得率降低。因此,微波功率適宜選擇800 W。
2.1.2微波處理時間對青稞β-葡聚糖得率的影響
微波處理時間在60,120,180,240,300 s條件下,對青稞中β-葡聚糖得率的影響。
微波處理時間對青稞β-葡聚糖得率的影響見圖2。
由圖2可知,青稞中β-葡聚糖得率會隨著微波處理時間的增加而逐漸增加,在180 s時達到最大值;繼續增加處理時間,β-葡聚糖得率會下降。隨著微波長時間的加熱,青稞顆粒的胚乳細胞壁破裂,使其中的β-葡聚糖溶解,所以β-葡聚糖得率隨著微波處理時間的增加而上升。當微波處理時間過長時,導致β-葡聚糖結構被破壞,β-葡聚糖得率降低。因此,微波處理時間適宜選擇180 s。

圖2 微波處理時間對青稞β-葡聚糖得率的影響
2.1.3pH值對青稞β-葡聚糖得率的影響
pH值在8,9,10,11,12的條件下,對青稞中β-葡聚糖得率的影響。
pH值對青稞β-葡聚糖得率的影響見圖3。

圖3 pH值對青稞β-葡聚糖得率的影響
由圖3可知,青稞中β-葡聚糖得率隨著pH值的增加出現先增大后減小的趨勢,在pH值為10時,得率達到最大值。β-葡聚糖本身顯堿性,所以在堿性溶液中有利于β-葡聚糖的提取,但是pH值大于10后,β-葡聚糖的糖苷鍵會斷裂,導致β-葡聚糖得率下降。另外,pH值大于10后,提取液的顏色逐漸加深,這可能是提取過程中體系發生美拉德反應所造成。綜合考慮,pH值適宜選擇10。
2.1.4粉碎粒度對青稞β-葡聚糖得率的影響
粉碎粒度在40,50,60,70,80目的條件下,對青稞中β-葡聚糖得率的影響。
粉碎粒度對青稞β-葡聚糖得率的影響見圖4。

圖4 粉碎粒度對青稞β-葡聚糖得率的影響
由圖4可知,青稞中β-葡聚糖得率隨著粉碎粒度的增加出現先增大后減小的趨勢,在粉碎粒度為60目時,得率達到最大值。這是由于適宜的粉碎粒度有利于β-葡聚糖的充分溶解。粉碎粒度適宜選擇60目。
2.2正交試驗優化β-葡聚糖的提取
對影響β-葡聚糖得率的主要因素設計正交試驗,以β-葡聚糖得率為指標,采用L9(34)正交表安排試驗。
因素與水平設計見表1,正交試驗結果見表2,方差分析結果見表3。

表1 因素與水平設計
由表2中極差R可知,各因素對β-葡聚糖影響的次序為微波功率>pH值>微波處理時間>粉碎粒度。優化的提取條件為A2C3B1D2,即微波功率800 W,pH值10.5,微波處理時間160 s,粉碎粒度60目。

表2 正交試驗結果

表3 方差分析結果
由表3可知,微波功率對青稞β-葡聚糖得率的影響顯著,pH值、微波處理時間、粉碎粒度對得率的影響不顯著。
按照優化的條件,即粉碎粒度60目,微波功率800 W,微波處理時間160 s,pH值10.5的條件,取2 kg青稞提取β-葡聚糖,并進行3次驗證試驗,β-葡聚糖得率平均值為5.92%。

圖5 3種除蛋白方法比較
2.3β-葡聚糖粗品除蛋白方法比較
3種除蛋白方法比較見圖5。
由圖5可知,TCA法和Sevage法除蛋白的效果不是很好,同時TCA法和Sevage法所用的試劑三氯乙酸、氯仿和正丁醇均為有機溶劑,易揮發,對環境造成污染。木瓜蛋白酶法的蛋白質去除率和β-葡聚糖保留率均較高,并且木瓜蛋白酶用量較少。因此,除蛋白的最佳方法是木瓜蛋白酶法。
(1)微波輔助提取青稞β-葡聚糖得率的最佳工藝條件為微波功率800 W,微波處理時間160 s,pH值10.5,粉碎粒度60目。該條件下,β-葡聚糖的得率為5.92%。
(2)各因素對微波輔助提取青稞β-葡聚糖得率的影響大小依次為微波功率>pH值>微波處理時間>粉碎粒度。
(3)三氯乙酸法、Sevage法及木瓜蛋白酶法3種除蛋白方法中,木瓜蛋白酶法效果最佳,其蛋白質去除率可達88.6%,β-葡聚糖保留率可達91.3%;三氯乙酸法次之;Sevage法最差。
[1]賈瑩.青稞麩皮水溶性β-葡聚糖的提取、分離純化和性質研究 [D].上海:華東理工大學,2013.
[2]李濤,王金水,李露.青稞的特性及其應用現狀 [J].農產品工(學刊),2009(9):92-93,96.
[3]宋江南,田明杰,蘇立宏,等.青稞β-葡聚糖對高脂誘導的C57小鼠膽固醇代謝的影響 [J].中華疾病控制雜志,2013,17(2):93-95.
[4]李文,楊焱,周帥,等.8種食用菌水溶性粗多糖的β-葡聚糖含量與體外免疫活性研究 [J].食用菌學報,2012,19(1):65-69.
[5]張亞茹.叢峰松黑酵母β-1,3-1,6-葡聚糖對小鼠腫瘤及免疫功能的影響 [J].食品科學,2012,33(19):306-309.
[6]連喜軍,張平平,羅慶豐.西藏青稞β-葡聚糖提取研究 [J].糧食與油脂,2006(1):27-28.
[7]陳業高,海麗娜,畢先鈞.微波輻射在天然藥用活性成分提取分離中的應用 [J].微波學報,2003,19(2):85-89.
[8]Kratchanova M,Pavlova E,I Panchev.The effect of microwave heating of fresh orange peels on the fruit tissue and quality of extracted pectin[J].Carbohydrate Polymers,2004,56:181-185.
[9]王尚玉,舒靜,夏文水.燕麥麩皮β-葡聚糖的微波輔助浸提技術研究 [J].食品工業科技,2005,26(16):143-144,171.
[10]江春艷,嚴冬,袁瑞瑛,等.紫外分光光度法測定西藏青稞中β-葡聚糖的含量 [J].西藏大學報,2010,25(1):11-12.◇
Optimization of Microwave-Assisted Extraction Technology of β-Glucan from Barleys
LUO Yanping1,2,LI Jialin1,2,ZHANG Xuefei2,3
(1.Wengyuan Guangye Swiss Food Science&Technology Co.,Ltd.,Shaoguan,Guangdong 512000,China;2.Guangdong Food Industry Institute,Guangzhou,Guangdong 510220,China;3.Guangdong Food Public Laboratory,Guangzhou,Guangdong 510220,China)
Microwave assisted extraction technology is used to extract β-glucan from barley.The effect of microwave power,microwave processing time,pH,particle size on barley β-glucan yield are studied.Orthogonal tests are used to optimize extraction process.Results show that the optimized extraction process should be as follows:microwave power 800 W,microwave processing time 160 s,pH 10.5 and particle size 60.In this condition,the yield of β-glucan could reach 5.92%. The order of factors that influence the β-glucan yield is as follow:microwave power>microwave processing time>pH>particle size.It shows that the papain method is the best,its protein removal rate could reach 88.6%,β-glucan retention rate can reach 91.3%.
barleys;β-glucan;microwave;extraction
TQ914.1
A
10.16693/j.cnki.1671-9646(X).2016.07.039
1671-9646(2016)07b-0035-04
2016-05-31
韶關市科技計劃項目(韶科[2015]72號)。
羅燕平(1961— ),男,本科,工程師,研究方向為食品添加劑生產技術。