自體脂肪基質血管成分改善植皮效果的初步臨床實驗研究

毛曦媛 李華 程辰 李青峰

論著

自體脂肪基質血管成分改善植皮效果的初步臨床實驗研究

毛曦媛 李華 程辰 李青峰

目的 在植皮術中輔以自體基質血管成分（stromal vascular fraction，SVF）進行治療，觀察其植皮效果的改善情況。方法 于植皮術同時行脂肪抽吸術，取得患者自體脂肪組織，通過膠原酶消化后提取SVF；植皮區行患者自身對照，實驗組植皮區皮下注射SVF（1×105cells/cm2），對照組注射等量生理鹽水；術后1個月、3個月、6個月及12個月隨訪，觀察皮片彈性、色澤、質地及回縮率。結果 2014年4月至2015年12月，共18例患者。SVF輔助植皮實驗組和對照組均未出現皮片存活不佳、壞死（P＞0.05）。隨訪結果顯示：術后6個月和12個月，實驗組較對照組色澤更接近取皮區正常皮膚（P＜0.05）；術后3個月和6個月，實驗組含水量均明顯高于對照組（P＜0.05）；術后3個月、6個月和12個月，實驗組皮片摩擦力均明顯低于對照組（P＜0.05）；術后3個月、6個月和12個月，實驗組皮片彈性優于對照組（P＜0.05）；術后1個月和3個月，實驗組的皮片回縮率明顯低于對照組（P＜0.05）。結論 SVF輔助皮片移植可有效改善皮片色澤和質地，明顯減少皮片回縮，是一種安全有效的方法。

基質血管成分 皮片移植 皮片回縮

修復皮膚缺損的方法主要有皮片移植與皮瓣移植。皮片移植成功率高，操作簡便，對供區損傷小，但是存在術后回縮、皮膚色素沉著、質地僵硬等問題，不適用于功能部位及影響美觀的部位；皮瓣雖然沒有皮片的這些缺點，但皮瓣存在供區損傷大，手術難度高，并且皮瓣術后常較臃腫，需進行后期修整。皮片移植后效果不佳主要是因為皮片回縮和皮片質地改變，可能與皮膚膠原蛋白及皮下脂肪缺失有關。

脂肪是重要的皮下組織成分，對皮膚有支持營養等作用，脂肪組織中含有大量多能間充質干細胞，即脂肪來源干細胞 （Adipose-derived stem cells，ASCs），能夠分化為中胚層來源的多種組織細胞［1］，促進組織再生、創面愈合及血管新生［2］。此外，ASCs還能分泌多種細胞因子［3］。

ASCs體外分離培養和臨床應用，尚存在技術問題和相關的倫理問題，限制了ASCs的臨床應用。

基質血管成分 （Stromal vascular fraction，SVF）最早由Rodbell和Jones發現報道［4］，是脂肪組織經過膠原酶消化和離心以后得到的細胞沉淀，它是富含脂肪來源干細胞的復合細胞群，其中包括ASCs、血管內皮細胞、多種血細胞等細胞成分［5］，已在多項臨床實驗中得到應用［6-7］。SVF最主要的優點就是獲取簡便，無需體外培養，分離后就可直接利用。SVF被證實具有促進組織再生、愈合、血管化的能力［8］。

為了觀察SVF是否能改善皮片移植的效果，我們在前期動物實驗中利用SVF輔助皮片移植，觀察到早期皮片血供增加、皮片存活率增高；遠期皮片回縮率降低、皮片質地改善；組織學觀察到皮片下膠原組織增多、多種促血管生成的細胞因子分泌增加。這些結果提示，SVF輔助皮片移植能有效改善皮片移植的效果［9］。

為了進一步觀察SVF輔助皮片移植在臨床應用中的效果，我們進行自身對照的臨床實驗，在植皮同時輔助自體脂肪SVF移植，術后隨訪，觀察皮片彈性、色澤、質地及回縮率，評價SVF輔助皮片移植對皮片移植效果的改善作用。

1 材料和方法

1.1 主要試劑和儀器

注射用膠原酶 （上海喬源生物制藥有限公司），鹽酸利多卡因注射液（麗珠集團利民制藥廠），鹽酸腎上腺素注射液 （東北制藥集團沈陽第一制藥有限公司）。

Cutometer dual MPA 580皮膚測試儀（Courage+Khazaka，德國），恒溫搖床 （太倉市華美生化儀器廠），離心機（Thermo Scientific，美國），離心管（BD，美國），40 μm濾網（BD，美國），10 mL移液管（Corning，美國），通用移液管（Thermo Scientific，美國）。

1.2 倫理審議及患者知情同意

本實驗通過我院倫理委員會倫理審議 ［滬九院倫審（2014）20號］。術前告知患者實驗目的、實驗內容、可能出現的情況及處理原則，患者表示理解并簽署知情同意書。

1.3 病例招募

病例納入標準：①雙側對稱部位或者同一部位多處行植皮術患者，一側為對照組，不加干預；一側為治療組，給予SVF干預；或一側肢體上多個手指植皮術患者，隨機選擇其中部分手指進行干預，其余手指為對照組；②身體健康無基礎疾病；③有良好的供皮區，同一供皮區能滿足多處創面修復。

病例排除標準：①不適合行皮片移植者，或供皮區存在不適宜切取皮片者，如感染、血運障礙、延期愈合史、軟組織活力下降、放療史或將接受放療、活動性潰瘍等；②合并嚴重內科疾病（如糖尿病、肝炎、冠心病、動脈硬化、腎小球腎炎、自身免疫性疾病等），或存在心、肺、肝、腎功能不良，經外科醫生評定不能夠耐受手術風險者；③BMI＞30的肥胖癥患者；④有長期吸煙史，并且目前仍吸煙者；⑤孕婦及哺乳期婦女；⑥有精神性疾病、無自知力、不能確切表達及合作者；⑦未簽署知情同意書者；⑧正參加其他臨床實驗的患者；⑨其他研究人員認為不適合參加臨床實驗的患者。

1.4 病例的隨機化與分組

將患者編號，按照隨機數字表，將患者植皮區按左右兩邊隨機分為實驗組和對照組。

1.5 脂肪抽吸手術及SVF分離提取

常規抽脂方法抽吸患者腹部脂肪約50～60 mL，吸出的脂肪靜置分層，用0.9%氯化鈉注射液清洗2～3次，去除下層液體。將抽取的脂肪液混合原酶，消化時濃度為0.02%，置離心管中，37℃消化1 h，然后置于離心機中，1 000 r/min離心10 min，棄上清液，加入10 mL 0.9%氯化鈉注射液重懸，40 μm濾網過濾，置于離心機中1 500 r/min離心5 min，洗滌2～3次，得到沉淀細胞集合即為SVF。

1.6 SVF移植

在植皮區打包前，以1mL針管將獲得的SVF均勻注于實驗組皮片與植皮受區之間隙處，同時輔以輕柔按摩促進SVF均勻分散作用于受區。1 cm2植皮區域注射SVF細胞數量約1×105cells/cm2，對照組植皮區注射等量0.9%氯化鈉注射液，植皮區打包加壓固定。

1.7 病例隨訪及檢測

植皮術后1個月、3個月、6個月和12個月隨訪受試者。使用Cutometer dual MPA 580皮膚測試儀檢測移植皮片和皮片供區周圍正常皮膚的質地，皮膚測試儀含有不同測試探頭，可分別測試彈性、含水量、色素、摩擦力、溫度等指標。使用皮膚檢測儀前，對應探頭需連接Cutometer dual MPA 580主機，每次于同一皮片表面的不同部位測試3次，取平均值。所測試的部位分別為：實驗組皮片；對照組皮片；取皮區正常皮膚。

每次隨訪時用透明薄膜覆蓋植皮區，然后使用記號筆在透明薄膜上沿著植皮區邊緣描畫出雙側植皮區范圍，沿邊緣裁剪后置于深色背景下，用同一數碼相機設置相同參數以相同高度進行拍攝，之后存入電腦，使用繪圖分析軟件AutoCAD進行分析比較，計算皮片的回縮率。

觀察并記錄是否出現皮片血供不佳、愈合不良或者感染等情況，評價SVF輔助植皮的安全性。

1.8 統計學分析

2 結果

2.1 病例入組情況

2014年4月至2015年12月，入組受試者共18人，男、女各9例，年齡3～60歲。均行全身多處對稱部位植皮手術或者同一部位多處植皮手術。所有患者第1個月均回訪，最早入組的受試者已完成12個月隨訪，最晚入組的受試者已完成3月隨訪，4名受試者完全失隨訪。

術前均按照實驗設計隨機將植皮受區分成實驗組和對照組，術前常規拍照，并記錄受試者完整信息。植皮手術由同一組醫師完成，術中所需的脂肪組織獲取和SVF提取由另一位醫師單獨完成，術后隨訪則由同一位醫師完成（圖1）。

圖1 植皮手術及SVF移植Fig.1 Skin grafting and SVF transfer

2.2 皮膚測試儀測試移植皮片質地

皮膚測試儀測試植皮皮片和供皮區的色素、含水量、摩擦力、溫度等指標。

隨訪發現，實驗組移植皮片色素沉著減少，其顏色更接近于取皮區正常皮膚顏色，在植皮后期6個月和12個月隨訪時實驗組較對照組有明顯改善（P＜0.05）；含水量方面，移植皮片實驗組從第3個月隨訪起，皮片含水量均高于對照組皮片，并且在植皮恢復期（3個月、6個月）時，實驗組皮片含水量明顯高于對照組（P＜0.05）。移植皮片的摩擦力即皮片的光滑程度，摩擦力越大，皮片越粗糙。在隨訪早期即觀察到實驗組皮片光滑程度有明顯改善，從隨訪第3個月至第12個月時，實驗組皮片摩擦力均明顯低于對照組（P＜0.05）；移植皮片的溫度在隨訪過程中保持穩定（圖2）。

圖2 植皮皮片的色素、含水量、摩擦力及溫度Fig.2 The skin color，water content，friction and skin temperature of the grafted skin

2.3 皮膚測試儀測試移植皮片彈性

皮膚測試儀測試植皮皮片和供皮區皮膚的彈性，兩組移植皮片之間進行對比。隨訪結果顯示，實驗組皮片彈性均優于對照組皮片，并且在皮片移植后第3個月起即有明顯改善（P＜0.05），實驗組皮片彈性更接近于取皮區正常皮膚的彈性（圖3）。

圖3 移植皮片彈性測試結果Fig.3 The elasticity of the grafted skin

2.4 移植皮片回縮率

皮片移植后回縮是皮片移植的難點，移植的皮片越薄，回縮越嚴重，特別是關節周圍的皮片移植。

各個隨訪時間點，實驗組回縮率均低于對照組，第1個月和第3個月時有統計學差異。植皮皮片在隨訪第1個月時回縮率，實驗組為（2%±1.0%），對照組為（12%±1.6%），P＜0.05；第3個月時回縮率，實驗組為（12.5%±3.35%），對照組為（25%±5.0%），P＜0.05（圖4）。

圖4 植皮皮片回縮率Fig.4 The contracture of the grafted skin

2.5 SVF輔助皮片移植的安全性

本組患者術后均未出現皮片血運障礙、愈合不良、皮片感染或者皮片壞死等情況。隨訪時，患者植皮皮片均存活良好，未有局部皮溫異常，皮片及周圍未見紅腫感染等。抽脂部位部分患者可有局部青紫，1個月后消退，未有其他不適。SVF輔助皮片移植不影響皮片存活。

3 討論

SVF來源于脂肪組織，內含有多種組織細胞，其中最重要的細胞成分為ASCs［10］，擁有可誘導分化成多種組織細胞的能力和增殖能力，ASCs強大的內分泌能力是其發揮作用的主要方式之一［11］。ASCs作為成體干細胞，其使用和倫理限制較胚胎干細胞少，但是分離提取比較復雜，需要體外培養［12］。實驗室使用的培養液添加胎牛血清，有攜帶病原、污染細胞的風險，體外培養也可能因各種操作等原因導致細胞分化和變異，若再次返回人體進行干預處理，存在諸多安全隱患。這些都限制了ASCs在人體疾病治療方面的應用。而SVF來源于脂肪組織，是一類多細胞的集合，無需體外培養，其分離提取的步驟簡單，分離和處理可全程無菌操作，降低了分離提取污染的概率，同時分離時間較短，可直接在手術同時進行［13］，避免多次手術伴隨的其他風險。SVF無需培養即可直接應用，避免了使用異種血清涉及的倫理問題。

SVF及ASCs已廣泛應用于燒傷和整形外科領域的組織創傷修護和瘢痕修復中，如乳房軟組織缺損［13］、面部瘢痕［14］、半面萎縮［15］、足部難治性潰瘍［16］、皮膚創傷［17］等；其他方面，如多發性硬化癥［18］、退行性關節炎［19］、骨軟骨缺損［20］等也有大量研究應用。這些都證明了SVF和ASCs具有減少組織缺血缺氧、促進血管新生和促進組織再生的能力。我們前期的動物實驗中發現，SVF能在早期促進皮片存活，增加皮片的血供［9］，并且在后期減少皮片的回縮，同時增加了皮片的柔軟度。

本臨床實驗在植皮手術同時抽取受試者自體脂肪組織進行消化處理，術中即可獲得SVF，方法簡單，且不增加正常手術時間。少數患者抽脂部位局部出現青紫，這屬于抽脂后正常現象，多數在1個月之內便可自行恢復。

本組患者術后未見皮片愈合不佳或感染壞死等，實驗組和對照組均存活良好。

皮膚質地的測試是通過皮膚測試儀完成的，我們使用的皮膚檢測儀是德國Courage+Khazaka公司生產的Cutometer dual MPA 580皮膚測試儀，配備了測試彈性、色素、水分、摩擦力和溫度的探頭。Cutometer dual MPA 580皮膚測試儀測試各項指標的原理都不同：彈性測試是通過一定的負壓作用于皮膚，記錄皮膚的變形能力和回復至正常位置的能力；色素是測試皮膚的黑色素和血紅素的含量，皮膚的顏色主要是這兩種色素決定的，測試是基于光的吸收原理，測試探頭發出三種特定波長的光，接收器接受皮膚反射的光并處理得到的數據；皮膚水分的測試是基于電容法，這種方法是根據水的介電常數和其他物質的介電常數不同，測試電容器按照皮膚水分含量的不同顯示出電容量的變化從而計算出水分含量；皮膚摩擦力測試是測試探頭內部有個微型電動機和齒輪轉動裝置，當探頭在不同的皮膚表面測試時，因皮膚表面的摩擦力不同，電機轉動需要的扭矩則不同，皮膚越光滑電機轉動需要的扭矩就越小，根據不同皮膚表面測得的扭矩計算出皮膚摩擦力；皮膚的溫度測試則是利用特殊的傳感器接收皮膚表面發出的紅外線來測試皮膚表面的溫度，是一種皮膚表面溫度的非接觸式測量方法。此皮膚測試儀測試原理科學、結果穩定可靠，已在多項臨床實驗中用于皮膚質地的測試和評價［21-22］。

我們利用皮膚檢測儀檢測了皮片彈性、色素沉著、皮片的含水量、皮片表面的摩擦力還有皮片溫度，觀察到實驗組皮片質地較對照組有明顯改善。

植皮后皮片回縮一直是植皮技術難以解決的問題，臨床上觀察到皮片厚度越薄，術后回縮越嚴重。目前認為，皮片早期回縮是與皮片中彈性纖維含量有關，全厚皮片所含的彈性纖維多，早期回縮率大于刃厚皮片；而晚期回縮主要是由于創面回縮引起的，此時，皮片越厚越硬，回縮越小。Kucukkaya等［23］在動物實驗中發現，在皮片移植時，植皮部位注射肉毒毒素能減少創面周圍及基底部回縮，并促進皮片下成熟的膠原組織形成，有效降低移植皮片的回縮率。這可能與肉毒素減少創面基底和周圍肌肉回縮，減少了對皮片的回縮牽拉有關。另一影響因素則是皮片的早期血供情況［2］，皮片血供良好則存活良好、回縮較小，動物實驗表明，利用ASCs輔助皮片移植能有效改善創面血供，促進創面愈合，減少創面回縮率［24］。

我們發現，各個隨訪時間點，實驗組回縮率均低于對照組，第1個月和第3個月時有統計學差異。我們所有受試者在完成植皮手術拆線后，都定做了支架，在康復醫師的指導下，每日堅持佩戴支架并進行牽拉鍛煉。早期皮片回縮主要與彈性纖維回縮有關，這種回縮可通過持續支架牽拉和鍛煉改善，而晚期皮片回縮主要是與皮片基底創面回縮有關。早期，SVF中的ASCs能分泌多種促血管生成因子，促進局部組織的抗缺血缺氧能力和生產血管的能力［25］，減輕了早期皮片因缺血缺氧導致的存活不佳，促進早期皮片的存活，減少皮片的回縮率。我們觀察到SVF輔助皮片移植降低了皮片的回縮率，但在術后6個月和12個月時，雖然數值上實驗組回縮率低于對照組，但是沒有統計學差異，這可能與手術時輔助移植的SVF的量有關，若手術時增加SVF單位皮片面積的用量或者在6個月時再次獲取SVF用于皮片區的治療，可能能進一步降低皮片的遠期回縮率。

4 結論

SVF輔助皮片移植能夠有效改善植皮后的皮片質地，減少皮片回縮，并且方法簡單，安全可行。

［1］ Zuk PA，Zhu M，Mizuno H，et al.Multilineage cells from human adipose tissue：implications for cell-based therapies［J］.Tissue Eng，2001，7（2）：211-228.

［2］ Gao WC，Qiao X，Ma SL，et al.Adipose-derived stem cells accelerate neovascularization in ischaemic diabetic skin flap via expression of hypoxia-inducible factor-1a［J］.J Cell Mol Med， 2011，15（12）：2575-2585.

［3］ Kim J，Choi YS，Lim S，et al.Comparative analysis of the secretory proteome of human adipose stromal vascular fraction cells during adipogenesis［J］.Proteomics，2010，10（3）：394-405.

［4］ Rodbell M，Jones AB.Metabolism of isolated fat cells.3.The similar inhibitory action of phospholipase C（Clostridium perfringens alpha toxin）and of insulin on lipolysis stimulated by lipolytic hormones and theophylline［J］.J Biol Chem，1966，241（1）：140-142.

［5］ Gimble JM，Bunnell BA，Chiu ES，et al.Concise review：Adiposederived stromal vascular fraction cells and stem cells：let's not get lost in translation［J］.Stem cells，2011，29（5）：749-754.

［6］ Yoshimura K，Sato K，Aoi N，et al.Cell-assisted lipotransfer for cosmetic breast augmentation：supportive use of adipose-derived stem/stromal cells［J］.Aesthetic Plast Surg，2008，32（1）：48-55.

［7］ Casteilla L，Planat-Benard V，Laharrague P，et al.Adiposederived stromal cells：their identity and uses in clinical trials，an update［J］.World J Stem Cells，2011，3（4）：25-33.

［8］ Kim DY，Ji YH，Kim DW，et al.Effects of platelet-rich plasma，adipose-derived stem cells，and stromal vascular fraction on the survival of human transplanted adipose tissue［J］.J Korean Med Sci，2014，29 Suppl 3：S193-S200.

［9］ Cheng C，Sheng L，Li H，et al.Cell-assisted skin grafting：improving texture and elasticity of skin grafts through autologous cell transplantation［J］.Plast Reconstr Surg，2016，137（1）：58e-66e.

［10］ Volz AC，Huber B，Kluger PJ.Adipose-derived stem cell differentiation as a basic tool for vascularized adipose tissue engineering［J］.Differentiation，2016，［Epub ahead of print］.

［11］ Xie Q，Xie J，Zhong J，et al.Hypoxia enhances angiogenesis in an adipose-derived stromal cell/endothelial cell co-culture 3D gel model［J］.Cell Prolif，2016，49（2）：234-245.

［12］ Lee SH，Lee JH，Cho KH.Effects of human adipose-derived stem cells on cutaneous wound healing in nude mice［J］.Ann Dermatol，2011，23（2）：150-155.

［13］ Gentile P，Orlandi A，Scioli MG，et al.A comparative translational study：the combined use of enhanced stromal vascular fraction and platelet-rich plasma improves fat grafting maintenance in breast reconstruction［J］.Stem Cells Transl Med，2012，1（4）：341-351.

［14］Gentile P，Orlandi A，Scioli MG，et al.Concise review：adiposederived stromal vascular fraction cells and platelet-rich plasma：basic and clinical implications for tissue engineering therapies in regenerative surgery［J］.Stem Cells Transl Med，2012，1（3）：230-236.

［15］ Yoshimura K，Sato K，Aoi N，et al.Cell-assisted lipotransfer for facial lipoatrophy：efficacy of clinical use of adipose-derived stem cells［J］.Dermatol Surg，2008，34（9）：1178-1185.

［16］Cervelli V，Gentile P，De Angelis B，et al.Application of enhanced stromal vascular fraction and fat grafting mixed with PRP in post-traumatic lower extremity ulcers［J］.Stem Cell Res，2011，6 （2）：103-111.

［17］Zimmerlin L，Rubin JP，Pfeifer ME，et al.Human adipose stromal vascular cell delivery in a fibrin spray［J］.Cytotherapy，2013，15 （1）：102-108.

［18］Jurgens WJ，Kroeze RJ，Zandieh-Doulabi B，et al.One-step surgical procedure for the treatment of osteochondral defects with adiposederived stem cells in a caprine knee defect：a pilot study［J］.Biores Open Access，2013，2（4）：315-325.

［19］ Chlapanidas T，Farago S，Mingotto F，et al.Regenerated silk fibroin scaffold and infrapatellar adipose stromal vascular fraction as feeder-layer：a new product for cartilage advanced therapy［J］.Tissue Eng Part A，2011，17（13-14）：1725-1733.

［20］Kim YS，Lee HJ，Choi YJ，et al.Does an injection of a stromal vascular fraction containing adipose-derived mesenchymal stem cells influence the outcomes of marrow stimulation in osteochondral lesions of the talus？A clinical and magnetic resonance imaging study［J］.Am J Sports Med，2014，42（10）：2424-2434.

［21］ Gillbro JM，Merinville E，Cattley K，et al.In vivo topical application of acetyl aspartic acid increases fibrillin-1 and collagen IV deposition leading to a significant improvement of skin firmness ［J］.Int J Cosmet Sci，2015，37 Suppl 1：41-46.

［22］Fox LT，du Plessis J，Gerber M，et al.In Vivo skin hydration and anti-erythema effects of Aloe vera，Aloe ferox and Aloe marlothii gel materials after single and multiple applications［J］.Pharmacogn Mag，2014；10（Suppl 2）：S392-S403.

［23］Kucukkaya D，Irkoren S，Ozkan S，et al.The effects of botulinum toxin A on the wound and skin graft contraction［J］.J Craniofac Surg，2014，25（5）：1908-1911.

［24］Kato Y，Iwata T，Morikawa S，et al.Allogeneic transplantation of an adipose-derived stem cell sheet combined with artificial skin accelerates wound healing in a rat wound model of type 2 diabetes and obesity［J］.Diabetes，2015，64（8）：2723-2734.

［25］Piccolo NS，Piccolo MS，Piccolo MT.Fat grafting for treatment of burns，burn scars，and other difficult wounds［J］.Clin Plast Surg，2015，42（2）：263-283.

Effect of Autologous Stromal Vascular Fraction （SVF）in Adipose Tissue on Skin Grafting

MAO Xiyuan，LI Hua，CHENG Chen，LI Qingfeng.Department of Plastic and Reconstructive Surgery，Shanghai Ninth People's Hospital，Shanghai Jiaotong University School of Medicine，Shanghai 20011，China.Corresponding author：LI Qingfeng
（E-mail：dr.liqingfeng@shsmu.edu.cn）.

Objective To explore the improving effect of autologous stromal vascular fraction （SVF）in adipose tissue on skin grafting.Methods The adipose tissue was harvested at the same time of skin grafting，then digested and processed；SVF （1×105cells/cm2）was obtained and injected into the grafted skin as the treatment group，while saline was injected as self-control；The elasticity，color，texture and contracture of skin grafts were observed and measured 1 month，3 months，6 months and 12 months after operation.Results From April 2014 to December 2015，18 patients were enrolled.No necrosis of skin grafts was observed in both control group and treatment group（P＞0.05）.During the follow-ups，compare to the control group，the skin color of the treatment group was more similar to the normal skin 6 months and 12 months after operation （P＜0.05）；The skin water content of the treatment group was higher than that of the control group 3 months and 6 months after operation （P＜0.05）；Compare to the control group，the frictional force and the skin elasticity of the treatment group were both improved 3 months，6 months and 12 months after operation （P＜0.05）；The contracture rate of the treatment group was lower than that of the control group 1 month and 3 months after operation （P＜0.05）.Conclusion The transplantation of SVF is a safe and effective method for skin grafting by improving skin color，texture and reducing skin contracture.

Stromal vascular fraction；Skin grafting；Skin retraction

·論著·

R622

A

1673－0364（2016）04－0207－06

10.3969/j.issn.1673-0364.2016.04.001

國家科技支撐計劃（2012BAI11B03）。

200011 上海市 上海交通大學醫學院附屬第九人民醫院整復外科。

李青峰（E-mail：dr.liqingfeng@shsmu.edu.cn）。

（2016年3月24日；

2016年5月9日）