適應海南熱帶海洋環境產脂肪酶菌株的篩選及產酶條件研究

郭聰，吳海武，2，郭偉良，朱彥博，黃捷暢，周永燦，王世鋒，謝珍玉

（1.海南大學　海洋學院　海南省熱帶生物資源可持續利用重點實驗室　海南省水生生物技術重點實驗室，海南　海口570228；2.海南省農業科學院，海南　海口　571100）

適應海南熱帶海洋環境產脂肪酶菌株的篩選及產酶條件研究

郭聰1，吳海武1，2，郭偉良1，朱彥博1，黃捷暢1，周永燦1，王世鋒1，謝珍玉1

（1.海南大學海洋學院海南省熱帶生物資源可持續利用重點實驗室海南省水生生物技術重點實驗室，海南海口570228；2.海南省農業科學院，海南海口571100）

從海南熱帶海水中分離篩選得到10株產脂肪酶菌，其中菌株LD-1302產脂肪酶活性最高。根據16S rDNA序列分析和生理生化試驗結果，鑒定該菌為地衣芽孢桿菌Bacillus licheniformis。對該菌株的產酶條件進行優化，在pH 8、溫度37℃、鹽度32的條件下，經橄欖油誘導，起始濃度為3.75×105CFU/mL的LD-1302搖瓶發酵48 h時產脂肪酶活最高，脂肪酶活可達（34.97±1.45） U/mL。

脂肪酶；地衣芽孢桿菌；篩選；產酶條件

海南管轄海洋面積200多萬km2，海洋資源豐富；不過，當前海水養殖產生的含大量殘餌、動物殘體的養殖廢水及其它來源油脂性污水的任意排放，造成了該海區海洋環境的存在脂肪污染，嚴重影響當地海洋生態環境的健康（周永燦等，2013；Nejidat，2005）。因此，安全有效清除海南熱帶水產養殖和海洋環境中的脂肪是熱帶海洋生態環境修復和可持續利用的重要前提。脂肪酶是催化長鏈脂肪酸甘油酯水解和合成的羧酸酯酶，廣泛存在于動植物和微生物，其中以微生物脂肪酶資源最為豐富；因其廣泛的底物特異性、在有機溶劑中穩定性好、易于大規模生產及純化等優點而成為當代酶工業最受矚目的酶種之一（李鑫玲等，2011；彭立鳳等，2006；閆云君等，2006），也是環境中脂肪降解的主要原動力。

海南為我國唯一的熱帶沿海地區，在長期自然進化過程中，海南地區形成了獨特的微生物群落結構，存在豐富的產脂肪酶芽孢桿菌資源，為安全解決海南熱帶水產養殖和海洋環境中脂肪污染問題奠定了重要基礎（朱彥博，2013；吳海武，2014）。不過，有關產脂肪酶芽孢桿菌的海南土著菌種的相關研究迄今尚未見報道。為此，本文試圖從海南熱帶海洋環境中篩選產脂肪酶芽孢桿菌并闡述其產酶條件，這對于應用脂肪酶生物技術處理被油脂污染的熱帶海洋水體特別是熱帶養殖水體以及可持續發展熱帶海洋經濟具有重大意義。

1　材料與方法

1.1材料

樣品：從海南省樂東縣球港、陵水縣新村港、東方市板橋和三亞市南山等地的熱帶海水養殖環境中采集10份水樣。

主要試劑：蛋白胨、橄欖油（主要脂肪酸鏈長為C16-C18）、椰子油（主要脂肪酸鏈長為C8-C20）、葵花籽油（主要脂肪酸鏈長為C16-C22）、聚乙烯醇、蔗糖、4%聚乙烯醇（PVA）溶液、1 mg/mL羅丹明B溶液和橄欖油乳化液（4%PVA溶液：橄欖油=3:1，v/v）。

主要儀器：PCR儀 （型號：5331，德國Eppendorf股份公司）；冷凍離心機（型號：5180，德國Eppendorf股份公司）；食品勻漿機（型號：HFJ-10，上海楚定分析儀器有限公司）；倒置熒光相差微分數碼顯微鏡（型號：DM2500，德國Leica儀器有限公司）。

1.2培養基

改良富集液體培養基：（NH4）2SO42 g/L，MgSO4·7H2O 0.5 g/L，K2HPO41 g/L，蛋白胨5 g/L，橄欖油乳化液100 mL/L，滅菌海水定容至1 L，pH 7.0，121℃滅菌20 min。

改良羅丹明B顯色初篩培養基：（NH4）2SO42g/L，MgSO4·7H2O 1 g/L，K2HPO41 g/L，蛋白胨5 g/L，瓊脂15 g/L，橄欖油乳化液100 mL/L，滅菌海水定容至1 L，pH 7.0，121℃滅菌20 min；滅菌后冷卻至60℃加入6 mL羅丹明B溶液。

改良復篩固體培養基：蛋白胨10 g/L，MgSO4· 7H2O 1 g/L，K2HPO41 g/L，橄欖油乳化液100 mL/L，瓊脂15 g/L，滅菌海水定容至1 L，pH 7.0，121℃滅菌20 min。

生長培養基：（NH4）2SO42 g/L，MgSO4·7H2O 1 g/L，K2HPO41 g/L，蛋白胨5 g/L，橄欖油乳化液100 mL/L，滅菌海水定容至1 L，pH 7.0，121℃滅菌20 min。

計數固體培養基：蛋白胨10 g/L，酵母膏5g/L，瓊脂15g/L，滅菌海水1L，pH7.0，121℃滅菌20min。

改良產酶發酵培養基：蛋白胨10g/L，（NH4）2SO41 g/L，K2HPO41.5 g/L，MgSO4·7H2O 2 g/L，橄欖油10g/L，pH7.0，滅菌海水定容至1L，pH7.0，121℃滅菌20 min。

1.3產脂肪酶菌株的篩選

吸取10mL水樣至100mL滅菌海水中，180r/min、30℃振蕩10 min；并在80℃下水浴15 min，取出、靜置。吸取10 mL上清菌液至100 mL富集液體培養基中，在180 r/min、30℃下培養。2 d后，吸取5 mL富集培養菌液至100 mL新鮮的富集液體培養基中，進行二次富集，如此連續富集培養3次。吸取1 mL第3次富集培養菌液至9 mL滅菌海水中，依次倍比稀釋至10-4；吸取100 μL稀釋度為10-4的菌液在羅丹明B顯色初篩培養基上涂布，挑選在羅丹明B顯色初篩培養基上水解圈較大且在350 nm紫外燈下橙黃色熒光亮斑較大的菌落為篩選分離菌株。挑取菌落繼續于羅丹明B顯色初篩培養基上重復3次劃線分離培養，直到菌落形態一致。挑取羅丹明B顯色初篩培養基上的單菌落至復篩固體培養基上重復劃線培養，直至單菌落不再染上羅丹明B顯色劑。挑選在復篩固體培養基上的單菌落至改良產酶發酵培養基中，于200 r/min、30℃下振蕩培養48 h，測定篩選得到菌株的產脂肪酶活性，以最優產脂肪酶活性的菌株為目的菌株。

1.4菌株鑒定

1.4.1菌落形態及鏡檢

挑取純化單菌落于計數固體培養基上劃線，參照沈萍等的方法進行革蘭氏染色、芽孢染色（沈萍等，2005）。

1.4.216S rDNA序列測定和分析

單菌落振蕩培養18 h后，按照北京艾德萊生物科技有限公司的細菌基因組DNA快速提取試劑盒的說明提取目的菌株DNA，對菌株進行16S rDNA序列的 PCR擴增與測序 （徐先棟 等，2012）。

1.4.3生理生化鑒定

挑取純化單菌落，參照東秀珠的方法進行VP測定、丙酸鹽、淀粉水解、明膠水解、V-P培養物終pH>7、檸檬酸鹽、55℃、pH 5.7、pH 6.8、NaCl 5%、NaCl 7%等理化指標試驗（東秀珠等，2001）。

1.5活菌總數計數

吸取6 mL目的菌株過夜培養液（于生長培養基中培養10-12 h）轉入盛有60 mL生長培養基的三角瓶中，混勻后分別吸取5 mL混合液至標記0、1.5、3、4、6、8、10、12、14、16、18、20的12支無菌大試管中。于30℃、250 r/min條件下培養，并于相應時間點將標有對應時間的大試管取出，分別吸取1 mL各個時間點的生長培養菌液至9 mL滅菌海水中，依次倍比稀釋至10-5。吸取100 μL稀釋度為10-5的菌液于計數固體培養基上涂布、計數。

1.6脂肪酶活力的測定

在40℃、pH 7.5條件下，以1 min催化水解反應底物（橄欖油）釋放1 μmol脂肪酸的酶量定義為1個脂肪酶活力單位（U） （施巧琴，1998）。搖瓶發酵48 h后，吸取發酵上清液于8 000 r/min、4℃下離心5 min，吸取上清酶液備用，參照李建武等的方法測定所篩菌株的產脂肪酶活（李建武等，1994）

1.7產酶條件的優化

改良產酶發酵培養基瓶裝量為50 mL/250 mL時，根據接種量、碳源、pH、溫度、鹽度等影響產脂肪酶的因素，依次進行LD-1302產脂肪酶活條件的優化。

1.7.1接種量對產酶的影響

研究菌起始濃度為5×105CFU/mL的LD-1302的接種量分別為0.50%、1.00%、1.50%、2.00%、2.50%時，對LD-1302產脂肪酶的影響，每隔24 h測定酶活一次，連續測定3次，篩選最適溫度接種量。

1.7.2碳源對產酶的影響

研究以1%的橄欖油、椰子油、葵花籽油為碳源時，對LD-1302產脂肪酶活性的影響，每隔24 h測定酶活一次，連續測定3次，篩選最適碳源。

1.7.3pH對產酶的影響

研究改良產酶發酵培養基起始pH分別為5、6、7、8、9時，對LD-1302產脂肪酶的影響，每隔24 h測定酶活一次，連續測定3次，篩選最適pH。

1.7.4溫度對產酶的影響

研究改良產酶發酵培養基搖瓶發酵溫度分別為27℃、37℃、47℃時，對LD-1302產脂肪酶的影響，每隔24 h測定酶活一次，連續測定3次，篩選最適溫度。

1.7.5鹽度對產酶的影響

研究海水鹽度分別為28、30、32、34、36時，對LD-1302產脂肪酶的影響，每隔24 h測定酶活一次，連續測定3次，篩選最適鹽度。

1.8采用SPSS

18.0統計軟件分析數據，并采Tukey法對影響酶活的因素進行分析比較。

2　結果

2.1產脂肪酶菌株的篩選

從羅丹明B初篩固體培養基上篩選得到10株水解圈較大的菌株，這些菌株在350 nm紫外燈下觀察，在菌落周圍均有明顯的橙黃色熒光圈（圖1）。重復3次搖瓶發酵后，10株菌的產脂肪酶活性存在一定的差異（表1），其中菌株LD-1302的產脂肪酶活性最高，酶活達（22.58±0.09） U/mL。發酵24 h后，LD-1302培養基表面存在不溶于水且浮在水面的絮凝狀乳白色蠟樣物質，48 h后該絮凝狀乳白色蠟樣物質消失。

圖1　350 nm紫外燈下產脂肪酶菌落周圍的橙黃色熒光圈

表1　10株產脂肪酶菌株的酶活

2.2菌株鑒定結果

2.2.1菌落形態及鏡檢

LD-1302菌落形狀不規則、凸面、白色不透明、邊緣為毛發狀；革蘭氏染色鏡檢呈紫色，為G+菌；芽孢染色鏡檢可觀察到綠色的芽孢、顯紅色的營養體。

2.2.216S rDNA序列測定與分析

以菌株LD-1302的DNA為模版，經細菌16SrDNA通用引物擴增獲得序列長度為1 512 bp的基因片段，對其測序并提交Genbank核酸序列數據庫。同源性分析結果表明，菌株LD-1302的16S rDNA基因序列與Genbank中的BCRC 15413等15株芽孢桿菌屬細菌的同源性達99.9%以上，利用MEGA 6.1構建系統進化樹，結果表明該菌株與地衣芽孢桿菌B.licheniformis聚為一支（圖2）。初步鑒定菌株LD-1302為地衣芽孢桿菌。

2.2.3生理生化鑒定

菌株LD-1302可于55℃下生長、淀粉水解試驗菌落四周出現無色透明圈、明膠水解培養基出現液化現象、V-P試驗培養基顯紅色、V-P試驗培養基的終pH顯酸性、檸檬酸鹽及丙酸鹽培養基顯藍色、均可在NaCl 5%、NaCl 7%的肉湯培養基中生長、在pH5.7、pH6.8的肉湯培養基中生長良好，符合對地衣芽孢桿菌的描述（東秀珠等，2001）。結合革蘭氏染色、芽孢染色及16S rDNA序列測定與分析結果，鑒定菌株LD-1302為地衣芽孢桿菌。

圖2　菌株LD-1302的16S rDNA序列系統發育樹

2.3活菌總數計數

地衣芽孢桿菌LD-1302在以橄欖油為唯一碳源的生長培養基中延滯期較短，培養6 h活菌總數達到最高，為（94.67±3.21）×106CFU/mL，LD-1302在6～20 h內生長較為穩定，表明該菌株可利用有機碳源橄欖油，并在6 h時將培養基營養物質基本消耗殆盡（圖3）。

圖3　菌株LD-1302的生長曲線

2.4接種量對LD-1302產酶活性的優化

由圖4可知：以橄欖油為碳源時，菌株LD-1302的最適接種量為1.50%，即菌株起始接種濃度為3.75×105CFU/mL時，產脂肪酶活性最高，酶活可達到（31.64±0.34） U/mL，且在最少接種濃度為1.25×105CFU/mL時，也存在較高的產脂肪酶活性。采用SPSS 18.0統計軟件分析數據可知：接種量P=0.00<0.01、時間P=0.001<0.01，表明接種量、時間均對酶活影響極顯著；由接種量-酶活的同類子集結果可知：接種量為0.50%、2.50%時，酶活均值分別為15.35 U/mL、17.87 U/mL，在同一子集中，表明兩者對產脂肪酶活無明顯差異；接種量為1.00%、2.00%時，酶活均值分別為20.68 U/mL、19.02 U/mL，在同一子集中，表明兩者對產脂肪酶活無明顯差異，但產酶效果優于前兩者；接種量為1.50%時，酶活均值為26.53 U/mL，與前四者分屬不同子集，表明為接種量為1.50%時，產脂肪酶效果最好；由時間-酶活的同類子集結果可知：72 h時，酶活均值為17.72 U/mL，24 h、48 h時，酶活均值分別為21.35 U/mL、20.60 U/mL，在同一子集中，表明兩者對產脂肪酶活無明顯差異，但產脂肪酶活優于前者。

2.5碳源對LD-1302產酶活性的影響

圖4　接種量對LD-1302利用橄欖油產脂肪酶的影

由圖5可知：最適接種量的LD-1302經橄欖油、椰子油、葵花籽油誘導，最高產脂肪酶活分別為（23.42±0.84）U/mL、（10.76±0.51）U/mL、（9.77± 0.51）U/mL。采用SPSS 18.0統計軟件分析數據可知：碳源、時間的P=0.00<0.01，表明碳源、時間均對酶活影響極顯著；由碳源-酶活的同類子集結果可知：以椰子油、葵花籽油為碳源時，酶活均值均為8.51 U/mL，在同一子集中，表明兩者對產脂肪酶活無明顯差異，而以橄欖油為碳源時，酶活均值為17.54 U/mL，與椰子油、葵花籽油分屬不同子集，表明以橄欖油為碳源時，產脂肪酶效果最好；由時間-酶活的同類子集結果可知：24 h、72 h時，酶活均值分別為10.84 U/mL、9.06 U/mL，在同一子集中，表明兩者對產脂肪酶活無明顯差異，48 h時，酶活均值為14.66 U/mL，與前兩者分屬不同子集，表明48 h時，產脂肪酶活效果最好；同時椰子油、葵花籽油也可誘導該菌株產生較高的酶活。

圖5　碳源對產酶的影響

2.6pH對LD-1302產酶活性的影響

接種量為3.75×105CFU/mL、橄欖油、椰子油、葵花籽油為有機碳源時，菌株LD-1302在pH 8下有最大脂肪酶活，分別為（29.97±0.33）U/mL、（19.98±0.23）U/mL、（19.98±0.67）U/mL。（圖6（a）、圖6（b）、圖6（c））。

圖6　pH對LD-1302產脂肪酶的影響

采用SPSS 18.0統計軟件分析數據可知：pH、時間的P=0.00<0.01，表明pH、時間均對酶活影響極顯著。由圖6-1 pH-酶活的同類子集結果可知：pH 5、pH 6時，酶活均值分別為5.69 U/mL、8.21 U/mL，在同一子集中，表明兩者對產脂肪酶活無明顯差異；pH 7、pH 9時，酶活均值分別為14.21 U/mL、13.84 U/mL，在同一子集中，表明兩者對產脂肪酶活無明顯差異，但產脂肪酶活效果優于前兩者；pH 8時，酶活均值為22.87 U/mL，與pH 5、pH 6、pH 7、pH 9分屬不同子集，表明pH 8時，產脂肪酶活效果最好；由圖6（a） 時間-酶活的同類子集結果可知：24 h、48 h、72 h時，酶活均值分別為12.36 U/mL、17.65 U/mL、8.88 U/mL，分屬不同子集，表明三者對酶活的影響有明顯差異，且48 h時，產脂肪酶活效果最好。由圖6（b）pH-酶活的同類子集結果可知：pH 5時，酶活均值為3.18 U/mL；pH 6、pH 7、pH 9時，酶活均值分別為7.52 U/mL、8.80 U/mL、7.66 U/mL，在同一子集中，表明三者對產脂肪酶活無明顯差異，但產脂肪酶活效果優于前者；pH 8時，酶活均值為15.98 U/mL，與pH 5、pH 6、pH 7、pH 9分屬不同子集，表明pH 8時，產脂肪酶活效果最好；由圖6（b） 時間-酶活的同類子集結果可知：24 h時，酶活均值為7.10 U/mL；48 h、72 h時，酶活均值分別為9.99 U/mL、8.79 U/mL，在同一子集中，表明兩者對產脂肪酶活無明顯差異，但產脂肪酶活優于前者，且在48 h時酶活均值最大。由圖6（c）pH-酶活的同類子集結果可知：pH 5、pH 6時酶活均值分別為4.55 U/mL、6.03 U/mL，且在同一子集中，表明兩者對產脂肪酶活無明顯差異；pH 7、pH 9時酶活均值分別為8.25 U/mL、9.51 U/mL，在同一子集中，表明兩者對產脂肪酶活無明顯差異，但產脂肪酶活效果優于前者；而pH 8時酶活均值為14.95 U/mL，且與pH 5、pH 6、pH 7、pH 9分屬不同子集，表明pH 8時，產脂肪酶活效果最好；由圖6（c） 時間-酶活的同類子集結果可知：24 h時酶活均值為5.39 U/mL，48 h、72 h時酶活均值分別為10.92 U/mL、9.66 U/mL，在同一子集中，兩者對產脂肪酶活無明顯差異，但產脂肪酶活優于前者，且在48 h時酶活均值最大。因此，菌株LD-1302的最適pH為8，且在pH 5～pH 9的培養條件下也存在一定的產脂肪酶活性。

2.7溫度對LD-1302產酶活性的影響

接種量為3.75×105CFU/mL、pH為8、以橄欖油、椰子油、葵花籽油為碳源時，菌株LD-1302在37℃條件下搖瓶發酵48h后產脂肪酶活最高，依次為（30.97±0.58）U/mL、（20.98±1.2）U/mL、（20.31±0.58）U/mL；產脂肪酶活性跟溫度的關系均為37℃>27℃>47℃（圖7）。

采用SPSS 18.0統計軟件分析數據可知：溫度、時間的P=0.00<0.01，表明溫度、時間均對酶活影響極顯著。由7（a）溫度-酶活的同類子集結果可知：27℃、47℃時酶活均值分別為16.17 U/ mL、16.35 U/mL，在同一子集中，表明兩者對產脂肪酶活無明顯差異；37℃時酶活均值為25.97 U/ mL，且與前兩者分屬不同子集，表明37℃時，產脂肪酶活效果優于前兩者；由7（a）時間-酶活的同類子集結果可知：24 h、72 h時酶活均值分別為18.54 U/mL、17.16 U/mL，在同一子集中，表明兩者對產脂肪酶活無明顯差異，而48 h時酶活均值為22.79 U/mL，且與前兩者分屬不同子集，表明培養時間為48 h時，產脂肪酶活效果最好。由7（b）溫度-酶活的同類子集結果可知：27℃、47℃時酶活均值分別為10.02 U/mL、9.06 U/mL，在同一子集中，表明兩者對產脂肪酶活無明顯差異；37℃時酶活均值為14.95 U/mL，且與前兩者分屬不同子集，表明37℃時，產脂肪酶活效果優于前兩者；由7（b）時間-酶活的同類子集結果可知：24 h、72 h時酶活均值分別為9.95 U/mL、9.73 U/mL，在同一子集中，表明兩者對產脂肪酶活無明顯差異，而48 h時酶活均值為14.35 U/mL，且與前兩者分屬不同子集，表明培養時間為48 h時，產脂肪酶活效果最好。由7（c）溫度-酶活的同類子集結果可知：27℃、37℃、47℃時酶活均值分別為7.69 U/mL、14.91 U/mL、10.84 U/mL，分屬不同子集，表明三者對產脂肪酶活有明顯差異，且37℃時產脂肪酶活效果最好；由7（c）時間-酶活的同類子集結果可知：24h、48h、72 h時酶活均值分別為7.47 U/ml、15.39 U/ml、10.58 U/ml，分屬不同子集，表明三者對產脂肪酶活有明顯差異，且培養時間為48 h時，產脂肪酶活效果最好。因此，菌株LD-1302的最適產酶溫度為37℃，且在27℃、47℃的培養條件下也存在一定的產脂肪酶活性。

圖7　溫度對LD-1302產脂肪酶的影響

2.8鹽度對LD-1302產酶的優化

由圖8可知：以橄欖油為有機碳源、接種量為3.75×105CFU/mL、pH 8、37℃時，菌株LD-1302在鹽度32時有最大脂肪酶活，為（34.97±1.45）U/mL。采用SPSS 18.0統計軟件分析數據可知：鹽度、時間的P=0.00<0.01，表明鹽度、時間均對酶活影響極顯著；由鹽度-酶活的同類子集結果可知：鹽度36時酶活均值為22.88 U/mL；鹽度28、30、34時酶活均值分別為25.71U/mL、28.60U/mL、27.29U/mL，在同一子集中，表明三者對產脂肪酶活無明顯差異，但產脂肪酶活效果略優于前者；鹽度32時酶活均值為30.59 U/mL，且與前四者分屬不同子集，表明鹽度32時，產脂肪酶活效果最好；由時間-酶活的同類子集結果可知：24 h、48 h、72 h時酶活均值分別為27.72U/mL、30.65U/mL、22.68U/mL，分屬不同子集，表明三者對酶活的影響有明顯差異，且培養時間為48 h時，產脂肪酶活效果最好。隨著鹽度的增加或減少，菌株LD-1302的產脂肪酶活性都有一定程度的降低，尤其是隨鹽度的增加，脂肪酶活下降較為顯著。

圖8　鹽度對LD-1302利用橄欖油產脂肪酶的影響

3　討論

本研究采用高溫水浴法從海南熱帶海水中篩選得到產脂肪酶活性較高的地衣芽孢桿菌LD-1302。當前，已報道的產脂肪酶芽孢桿菌主要有枯草芽孢桿菌、芽孢桿菌B5-12、芽孢桿菌WF63、蠟樣芽孢桿菌B.cereus等（胡德朋 等，2008；劉秀花等，2006；黃鷺強等，2010；Akanbi et al.2010），其脂肪酶活依次為2.8 U/mL、24.8U/mL、6.33U/mL、2.51 U/mL，均低于菌株LD-1302的酶活。菌株LD-1302最適應用于鹽度32、pH 8、溫度37℃的海水環境，在鹽度28～36、pH 5～9、27℃～47℃的海水條件下也存在較穩定產脂肪酶活性，并可在蔗糖等速效碳源及橄欖油、椰子油和葵花籽油等有機碳源的誘導下產較高脂肪酶活，這與本研究基于海水環境下篩選產脂肪酶活性菌株并在該環境條件下闡述影響其產酶活性的主要環境因素直接相關。

有關學者篩選的產脂肪酶活性的菌株均是在淡水或者添加NaCl不超過10‰的環境下篩選的（李鑫玲等，2011；胡德朋等，2008；劉秀花等，2006；黃鷺強等，2010；Akanbi et al，2010；魏濤 等，2011；陳林林等，2010；劉秀花 等，2006；Eltayib et al，2010），盡管這些菌株也存在一定的產脂肪酶活性，但其對海水環境的適應性尚未見報道。海水中含有Li+、K+、Ca2+、Mg2+、Zn2+、Sr2+、Ba2+等多種離子，存在較高滲透壓，對芽孢桿菌等細菌產脂肪酶、蛋白酶、淀粉酶等活性存在抑制作用（曹煜成等，2005；朱彥博等，2013），導致眾多在鹽度很低及不含上述離子條件下存在產脂肪酶活較高的菌株的產酶活性大大降低甚至消失。從菌株LD-1302的16S rDNA序列系統發育樹可知，雖然菌株LD-1302與Genbank中其他菌株的同源性均為99.9%，卻沒有明顯地高度聚為一支，由此我們推斷菌株LD-1302很可能為海南熱帶海洋環境中的地衣芽孢桿菌菌株，比目前常用的芽孢桿菌對熱帶海水環境具有更強的適應能力。這可能是在長期的歷史進化過程中，海南獨特的熱帶沿海地理環境形成了獨特的微生物細菌地理種群。

橄欖油的主要成分為棕櫚酸C16H32O2、亞油酸C18H32O2、油酸 C18H34O2、硬脂酸C18H36O2等的甘油三酯（湯富彬等，2013），菌株LD-1302產生的脂肪酶可將這些甘油三酯分解為C16-C18的游離高級脂肪酸，這些游離高級脂肪酸不溶于水浮于水的表面形成絮凝狀乳白色蠟樣物質，這是菌株LD-1302發酵24 h后在三角瓶中產生的浮于培養基表面的絮凝狀乳白色蠟樣物質的原因，隨著發酵時間的延長，這些絮凝狀乳白色蠟樣高級脂肪酸的混合物逐漸消失，推測菌株LD-1302除了產脂肪酶外，還可能產生烴類水解酶等其它酶類，將絮凝狀乳白色蠟樣物質分解為水溶性物質或小分子氣體。石油是一類以C6-C20的烷烴、環烷烴、芳香烴類為主的油質，近年來，我國海面溢油與深海溢油事件時有發生，這嚴重破壞了海洋生態環境，一定程度上制約了海洋經濟的可持續健康發展（馬麗等，2013；廖國祥等，2011；楊建強等，2011），而微生物修復技術因高效安全、環境友好、無二次污染等優勢，被逐漸應用于修復溢油、深海水產養殖等造成的海洋環境污染（王麗娜等，2013；鄭天凌等，2001），所以菌株LD-1302很可能對被石油污染的熱帶海洋環境存在較好的修復作用，當然，這還有待進一步的深入研究。

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（本文編輯：袁澤軼）

Screening of lipase producing strains adapting to the Hainan tropical marine environment and study on the lipase producing conditions

GUO Cong1,WU Hai-wu1,2,GUO Wei-liang1,ZHU Yan-bo1,HUANG Jie-chang1, ZHOU Yong-can1,WANG Shi-feng1,XIE Zhen-yu1
（1.Key Laboratory of Hainan University for Sustainable Exploitation of Tropical Biotic Resources,Key Laboratory of AquaticBiological Technology of Hainan,College of Marine Science,Hainan University,Haikou 570228；2.Hainan Academy of Agricultural Sciences,Haikou 571100,China）

10 lipase-producing bacterial strains were isolated from Hainan tropical seawater,and the lipase-producing activity of strain LD-1302 was the highest.The strain LD-1302 was identified as Bacillus licheniformis based on 16S rDNA sequence analysis and physiological and biochemical tests.The lipase fermentation condition for the strain LD-1302 was studied on the effect of carbon sources,pH,temperature,inoculation volume,lasting time and salinity,in the seawater environment with pH 8,the salinity of 32,the initial concentration of 3.75×105CFU/mL of LD-1302,which was fermentation of lipase-producing induced by the optimum carbon source of olive oil,and the highest lipase activity was produced in the fermentation of 48 h,and the lipase activity reached the maximal level of(34.97±1.45)U/mL.

lipase;bacillus licheniformis;screening;lipase-producing condition

S913

A

1001-6932（2016）04-0427-09

10.11840/j.issn.1001-6392.2016.04.010

2015-05-07；

2015-07-26

海南省產學研一體化專項資金項目（CXY20130028）；海南省重大科技項目（ZDZX2013014）；農業科技成果轉化資金項目（2011GB2F200009）；國家自然科學基金（41466002）。

郭聰（1989-），女，碩士研究生，主要從事水產動物健康養殖與病害控制技術研究。電子郵箱：1257303447@qq.com。

謝珍玉，博士，教授。電子郵箱：xiezyscuta@163.com。