斑馬魚模型在常見骨疾病研究中的應用

王小琦，孫 巖，張 洋，趙宏斌，李文輝

(1.昆明醫科大學第一附屬醫院，云南 昆明 650032；2.中國科學院昆明動物研究所，云南 昆明 650032)

斑馬魚模型在常見骨疾病研究中的應用

王小琦1，2，孫 巖1，2，張 洋1，趙宏斌1，李文輝2

(1.昆明醫科大學第一附屬醫院，云南 昆明 650032；2.中國科學院昆明動物研究所，云南 昆明 650032)

斑馬魚作為一種新型的脊椎模式生物，近年來在人類疾病模型中已廣泛應用，特別是在人類骨疾病模型的研究中已顯示出優勢，如在疾病的相關基因及其功能表達和藥效篩選評價等方面。這對于在骨疾病領域發揮特色療效的傳統醫藥而言，也具有重大的現實意義。本文就斑馬魚在骨質疏松、骨折、骨關節炎等常見骨疾病中的研究應用進行綜述,以便給未來的臨床相關研究提供一定的思路。

斑馬魚；骨疾病；動物模型

上世紀70年代初，美國的遺傳學家Streisinger所領導的研究團隊對斑馬魚進行了遺傳篩選, 建立了純合品系，并于1981年率先在《Nature》雜志報導了斑馬魚的各種基本實驗技術[1]。90年代初，《Nature》 和《Science》均發表相關專題[2, 3]，確立斑馬魚為一種新型的模式生物，完全具備成為分子發育生物學甚至人類基因組計劃脊椎動物模式生物的條件。而后，德美兩國的發育生物學家與遺傳學家通過高通量篩選，鑒定出幾千種斑馬魚基因突變體，開啟了斑馬魚基因功能研究[4, 5]。國內于1998年在清華大學建立了第一個以斑馬魚為模式動物的發育生物學實驗室，開啟了斑馬魚在我國的研究。2012年，國家斑馬魚資源中心(China Zebrafish Resource Center，CZRC)在中國科學院水生生物研究所正式成立，提供斑馬魚研究相關的資源共享和技術服務。目前我國已有250 個以上的實驗室利用斑馬魚開展多學科領域的研究。令人振奮的是，斑馬魚已被美國國家衛生研究院(NIH)列為繼人和小鼠之后的第三大模式生物，并被歐洲替代方法驗證中心(ECVAM)推薦為新的替代動物[6]。隨著研究的深入，目前斑馬魚模型在骨骼研究中的優勢也逐漸突顯，國內外專家紛紛開展以斑馬魚為動物模型的骨疾病研究，以期對多基因的復雜性骨疾病的病理機制和高通量藥物篩選進行更深入細致的探究而為人類骨健康創造一個美好的未來前景。本文就斑馬魚在骨質疏松、骨折、骨關節炎等常見骨疾病中的研究應用作一綜述,以便給臨床相關研究提供新的思路和指導。

1 斑馬魚的生物特點

1.1 斑馬魚的一般生物特性

以果蠅、線蟲為代表的無脊椎動物模型廣泛應用于發育、遺傳及相關領域研究，并取得了令人矚目的發展，但它們在胚胎結構及器官形成等方面都與脊椎動物存在差異，且一些器官缺乏基因同源性，導致人類某些特征不能采用無脊椎動物進行研究[7]。此外，以嚙齒類動物、兔、犬、靈長類等為代表的脊椎動物模型，雖可從整體水平直觀地模擬人的生理和病理過程，但存在費用昂貴、飼養繁瑣、繁殖速度較慢、操作復雜且存在風險、實驗周期長、受到法律倫理的限制等弊端。斑馬魚作為一種脊椎動物模式生物，以其獨特的優勢避免了其他脊椎動物的缺點。Sanger研究院在2001年開始對斑馬魚基因組測序[8]，于2009年完成全基因組測序，發現其與人類基因的相似度達到87%，而且兩者在基因和蛋白質的序列、功能上都具有很高的保守性。斑馬魚的心血管、血液、消化道、肝臟、腎臟、骨骼系統以及生理功能毒性反應方面與人類有許多共同特點，為開展比較醫學研究和建立人類疾病動物模型提供了重要基礎[9]。且斑馬魚具有飼養成本低、體積小、發育周期短、單次產卵數較高、胚胎體外發育且透明而可視、易獲突變體、施藥方式易操作、高通量篩選易實現等優勢[10, 11]。由此，我們就可以便捷、經濟、實時、有效地利用斑馬魚模型進行正反向遺傳篩選法以及藥物誘導的方法，選擇合適的基因型建立疾病模型，進行相應研究。

1.2 斑馬魚的骨骼發育特點

斑馬魚在骨骼發育方面與人類極其相似，其骨發育與人類骨生物礦化作用基本一致，存在軟骨內骨化過程，發育完整的斑馬魚骨擁有與人類長骨一致的分層結構[12]。此外，斑馬魚與人類在骨骼生長發育的分子機理方面也極為相似；參與人類成骨作用的BMP和Wnt信號通路被證實也存在于斑馬魚中；而且參與斑馬魚骨發育調控的關鍵基因—runx2、osteoprogenin(BMP-3) 與哺乳動物也具有高度的同源性。由此推斷，以斑馬魚為骨疾病模型做的相關實驗在多數情況下也是適用于人類的。因此，國內外專家在此方面做了大量研究，并取得了令人矚目的成果。2005年，Fleming[13]首次通過在培養水體中加入對哺乳動物有效的促骨形成藥物維生素D3類似物和甲狀旁腺激素(parathyroid hormone，PTH)，觀察斑馬魚幼魚頭部骨骼的發育狀況，與哺乳動物實驗結果一致,從而證實了斑馬魚為有效篩選促骨合成代謝藥物的動物模型系統，而且與嚙齒類動物模型相比，假陽性和假陰性發生率更小。而在成年斑馬魚骨骼發育不良的正向遺傳篩選中，Nan Li[14]以膠原蛋白Ⅰα1基因突變為靶點，成功模擬了人類的成骨不全癥，同時發現了Runx2基因、Osx基因、骨基質基因的順序表達，以及成骨細胞分化所需的轉錄調控體系與哺乳動物保持著一致性。隨后，Yang等[15]還發現，給斑馬魚胚胎注射與runx2b的表達相關的twist1a和twist1b mRNA 后，runx2b的表達被抑制，骨發育受阻；而敲除twist1a和twist1b基因后，runx2b表達增加，骨發育能力也相應增加，為人類骨骼發育疾病的治療提供新的研究靶點。最近，Pasqualetti S等[16]通過對成骨細胞特異標記物(堿性磷酸酶)和魚鱗外觀形狀特征的研究，發現斑馬魚魚鱗在分析成骨細胞在骨形成、骨礦化期間的行為是一種很好的模式樣本。由此可見，斑馬魚在篩選與骨發育疾病相關的靶向基因和有效藥物中，是一個強大的工具。

2 研究方法

以上述斑馬魚生物特點為基礎，國內外研究人員已經利用組織染色、轉基因技術以及影像學檢測對斑馬魚骨骼系統進行了更全面的研究，從而為骨疾病相關研究提供堅實的技術基礎。

2.1 組織染色

斑馬魚的胚胎發育全程透明、幼魚呈半透明，可觀察到器官形成。因此借助立體顯微鏡，熒光染色后就可清晰觀察到早期發育的骨骼。組織染色技術已廣泛應用于對斑馬魚模型的研究。其中，骨骼固定染色是最經典、可靠的方法, 適用于分析幼魚及成魚骨骼。目前國際上多采用阿辛藍、茜素紅復合染色法，較為公認的方法是Dingerkus and Uhler的傳統染色法和MB Walke的無酸染色法。近年來，國內的張燕麗研究團隊[17]根據斑馬魚的骨骼發育特點對上述染色方法進行了改進，即對不同發育階段的斑馬魚分別采用無酸染色法和雙染色法(傳統染色法+無酸染色法)染色，發現雖然兩種方法均可將其軟骨染為藍色，但仍存在一定差異。對于15 d內的斑馬魚，由于骨礦化不完全，無酸染色法較適合；而對于15 d以上的斑馬魚，由于骨礦化程度高，運用雙染色法更有利于突出其骨骼特征。利用張燕麗團隊的方法，可更直觀地反映斑馬魚骨化程度的改變及骨化次序，有利于在骨疾病研究中分析影響骨發育的因素。而Du SJ等人[18]在建立篩選斑馬魚胚胎骨骼發育突變體的可視化方法研究中發現，特異性地結合含鈣骨結構的鈣黃綠素熒光染色特點與所檢測的骨形態發生蛋白-2(BMP2)的表達一致，以此從骨骼發育正常的斑馬魚中篩選出有缺陷的突變體。因此他們認為與阿辛藍染色劑相比，鈣黃綠素熒光染色劑在斑馬魚胚胎骨骼發育及其對骨發育缺陷突變體的有效可視化篩選中更具敏感性和兼容性。最近，國內張姍姍等[19]首次采用鈣黃綠素染色法，分別對用于骨關節炎的氨基葡萄糖鹽酸鹽和骨質疏松的淫羊藿提取物進行促斑馬魚幼魚骨礦化的活性評價，發現此方法具有實驗周期短、染色時間短、操作簡單且對斑馬魚幼魚毒性低等優點，而具有早期、快速篩選促骨礦化藥物的可行性。當然，對斑馬魚不同形態發育階段及各階段不同時期的骨骼染色采用何種染色方法，還需更多的研究進一步證實，從而在提高實驗效率的同時，也可推廣活體染色可視化的應用。

2.2 轉基因技術

轉基因技術可在時空上特異地表達或關閉特定基因，利用這類技術可更確切地研究目標基因及相關生物學過程。近年來，此技術也逐漸應用于對斑馬魚骨疾病模型的研究，為此領域帶來新突破。2006年， Rembold等[20]首次發現將報告基因插入到骨骼組織特異的啟動子后,即可篩選出穩定遺傳的轉基因斑馬魚，實時、直接的觀測斑馬魚骨骼發育機制及相關基因的聯系，而開啟了轉基因技術在斑馬魚骨骼發育研究中的應用。俄勒岡大學的Delaurier A研究組[21]于2010年，利用轉基因斑馬魚品系——Tg(sp7:EGFP)b1212，發現標記成骨和軟骨細胞的Sp7基因在幼魚耳囊泡、骨骼的發育中及成魚斷鰭后的再生中表達，表明這一品系為研究耳囊泡的形成、骨骼發育和骨再生提供了一個基本的工具。最近，Mitchell RE等人[22]通過構建一種新的斑馬魚轉基因品系——Tg(Col10α1BAC: mCitrine)，真實地模擬Col2a1a和Col10a1在肥大軟骨細胞的可視化內源性表達，用于實時追蹤其肥大軟骨細胞在骨骼發育過程中的功能，從而應用于人類骨關節炎(osteoarthritis, OA)疾病模型中。此實驗表明，此轉基因斑馬魚品系可作為研究骨關節炎遺傳學的新工具，并有望用于其他軟骨遺傳疾病，如遺傳性多發性骨軟骨瘤(multiple hereditary exostoses，MHE)。目前，在國家斑馬魚資源中心(China Zebrafish Resource Center，CZRC)，我們可以根據研究需求獲得與骨疾病相關的轉基因斑馬魚資源。如Tg(-2.2col10a1a:GFP)，用于標記來自成骨細胞的骨結構；Tg(UAS:bmp2b-UTRnanos3)，標記骨形態發生蛋2b (BMP-2b)；Tg(UAS:dnbmpr1aaUTRnan-os3)，標記骨形態發生蛋白受體IAa (BMPR-IAa)；Tg(UAS:wnt8a-UTRnanos3)，標記與骨形成密切相關的信號通路Wnt8a；而Tg(UAS:fgf8a-UTRnanos3)，與顱腦軟骨發育相關。我們可以利用這些轉基因斑馬魚品系，評估相應基因及編碼蛋白的功能，創建相應的疾病模型，也可根據其構建新的轉基因品系，為骨疾病的研究創造更好的技術平臺。

2.3 影像學檢查

影像學檢查具有快捷方便、直觀精確的特點。如雙能X線吸收法(dual-energy X-ray absorptiometry，DXA)是骨密度測定的金標準，而顯微CT (Micro-CT)是一種可以在不破壞樣本的情況下清楚了解樣本的內部顯微結構,直接評估骨骼結構的方法, 其分辨率可達到15 μm, 通過三維重建可獲得骨骼的三維結構及其參數。2009年，華盛頓大學醫學部的Green等人[23]將雙能X線吸收法、顯微CT等技術運用于斑馬魚成魚突變體的研究，可更精確地得到骨密度、礦物質含量等組織染色無法測量的參數，這樣就能為斑馬魚疾病模型及后續實驗提供更有力的科學依據。梅西大學的Bruneel B和Witten PE[24]在2015年回顧了X光、Micro-CT、光學投影層析和活體成像技術在斑馬魚骨骼可視化技術應用中的優點和局限性，最后還探討了光片照明顯微鏡 (light-sheet fluorescence microscopy) 在斑馬魚骨骼分析中應用的可能性。表明了影像可視化技術在斑馬魚骨骼分析中更精確的發展，斑馬魚模式生物在骨骼發育模型的研究應用中就更有價值。

3 斑馬魚在骨疾病領域的研究應用

3.1 骨質疏松

骨質疏松是以骨量減低、骨顯微結構退化、骨脆性增高、易發生骨折為特征的全身代謝性骨疾病，而糖皮質激素是引起骨質疏松、增加骨折風險的常見因素。因此，國內外許多專家建立以糖皮質激素誘導骨質疏松的斑馬魚模型，并開展后續研究。2006年，Barrett R等[25]首次采用不同濃度潑尼松龍作用不同時間，創建斑馬魚骨質疏松模型，并最終確定潑尼松龍建模的最佳濃度為25 μM，最佳暴露時間為斑馬魚受精后4～5 h，且連續作用5 d；隨后還驗證了藥物RU486和雙膦酸鹽作用于骨質疏松模型后，斑馬魚骨量得到恢復，進一步表明糖皮質激素發揮作用是通過糖皮質激素受體介導的，也為目前廣泛應用于骨質疏松治療的雙膦酸鹽提供了實驗數據。而后，有國外研究人員利用此動物模型，對目前常用藥物阿侖膦酸鈉和依替膦酸鈉的抗骨質疏松藥效進行了實驗室藥效評價，證實其與臨床應用一致。而Siccardi 等[12]在1月齡斑馬魚的飲食中添加不同濃度的鍶鹽，采用Micro-CT 檢測12周后的骨密度，發現隨鍶鹽濃度增加，骨密度亦相應增加。這些研究都與臨床研究結果一致，亦提示斑馬魚骨質疏松模型對骨質疏松的治療具有臨床用藥指導價值。國外研究還發現[26]，使用糖皮質激素可導致斑馬魚魚鱗再生的缺損，且成骨細胞和破骨細胞中與骨質疏松相關基因的表達改變，與骨質疏松的病理機制一致。自2012年后，國內的研究團隊[27-30]也分別建立了地塞米松、潑尼松龍誘導的斑馬魚骨質疏松模型，先后用此類模型對西藥依替膦酸二鈉，中藥淫羊藿、續斷的代表成分以及復方接骨湯進行了抗骨質疏松活性評價，并采用計算斑馬魚頭骨礦化面積等數據，檢測淫羊藿黃酮對骨骼生長的促進作用，結果與已有的大鼠或細胞模型實驗結論一致，進一步揭示斑馬魚骨質疏松模型可用于高通量篩選防治骨質疏松的藥物，對臨床的指導具有合理性。

3.2 骨折修復與再生

斑馬魚的鰭相當于人類的四肢，又因尾鰭結構簡單、易于手術操作、損傷后不影響生存和便于觀察等特點,成為目前研究器官再生及骨折修復的重要部位。早在2003年，就有研究表明斑馬魚魚鰭有較強的再生能力，成年斑馬魚尾鰭被截斷后，可重新激活骨分化信號，使受損傷的骨骼、血管、神經、結締組織及表皮得到修復[31]。2006年底，美國華盛頓州立大學的研究團隊也通過對斑馬魚模型的研究，發現Wnt/β-Catenin信號通路可促進斑馬魚尾鰭的再生，相關蛋白Wnt8對成骨細胞增殖起到增強作用，而由Wnt5b激活的細胞信號通路可關閉由Wnt/β-Catenin開啟的基因，削弱成骨細胞的再生能力。斑馬魚機體通過開啟或關閉這些基因來調控成骨細胞的增殖狀態，從而調節尾鰭再生。而Sousa等[32]于2013年發表文章證實了斑馬魚鰭的擠壓骨折與人類骨折更為相似，當魚鰭受到擠壓時，骨細胞開始發生沉積，與骨發育相關的基因表達減緩，而骨橋蛋白、肌腱蛋白-C 表達時間延遲，這些表現與人類骨折修復機理都非常接近。因此，斑馬魚擠壓骨折模型較截斷模型能更好的模擬哺乳動物創傷引起的骨折，有助于此類骨折修復研究。De Vrieze 等[33] 通過研究在細胞外基質中與發育和再生相關的關鍵轉換酶——基質金屬蛋白酶 (Matrix，metalloproteinases，MMPs)，發現其可影響斑馬魚鱗片在再生過程中的重建，證實斑馬魚魚鱗再生模型可很好的應用于研究骨發育、再生、重建的機制。此外，Geurtzen K等[34]通過分析斑馬魚斷鰭和骨折以及顱骨損傷模型，闡明了成骨細胞去分化可提高骨愈合的機制。上述研究均體現了斑馬魚骨創傷模型，將有助于了解骨折修復和再生的關鍵機制，為骨折的修復再生帶來新的思路。

3.3 骨關節炎

斑馬魚在骨關節炎(OA)模型中的應用研究相對較晚，國外也鮮見報道。越來越多的證據表明，OA的易患因素中遺傳因素約占一半，而斑馬魚是理想的發育生物學和遺傳學模式生物。由此推斷，將斑馬魚模型運用于骨關節炎的研究將有助于闡明該病的發生機制。Mitchell[22]等以轉基因斑馬魚為模型，首次采用分析OA相關基因Mcf2l的時空表達模式，表明了Mcf2l在軟骨發育上的功能。此外，還對斑馬魚幼魚中六個OA易感基因的表達進行了篩選。說明轉基因斑馬魚模型在OA相關基因的功能研究方面的實用性，并可將其用于高通量篩選研究項目。萊頓大學醫學中心的Wiweger團隊[35]發現在骨軟骨瘤和骨性關節炎中，蛋白多糖上的糖胺聚糖(GAGs)在結構和組成上都發生了變化，并采用斑馬魚突變體分析了五種參與蛋白多糖合成的基因，表明了各個基因所決定的表型：dackel與軟骨形態；hi307與細胞外基質的組成；pinscher與細胞外基質的超微結構；hi954與軟骨細胞的超微結構；Knypek在Simpson-Golabi-Behmel綜合征顱面表型中的表達，支持了磷脂酰肌醇蛋白多糖4(GPC4)的參與。此外，他們推測骨骼發育不良可能與slc35b2，β3gat3和uxs1表達有關。這項研究促進了利用斑馬魚作為一種人類骨骼發育和相關病理學研究的動物模型，并證實斑馬魚可作為研究人類病因復雜的骨疾病的理想模型。

4 展望

斑馬魚的諸多優點，使其經過幾十年的研究發展，積累了很多研究成果，也建立了一系列技術平臺，從而在人類骨疾病的相關基因、功能研究及其藥效篩選和評價中，成為一個可靠工具。作為一種新興的脊椎模式生物，斑馬魚的基因與人類更加相似，在鑒定和分析調節胚胎發育和器官發生的未知基因、人類疾病的基因治療和藥物開發等方面都將 發揮重要作用，從而帶動整個生命科學的變革和發展。對于以經方驗方為特色的我國傳統醫藥而言，通過斑馬魚模型，可深入研究傳統醫藥的體內代謝特點及其在骨形成信號通路中的調控機制，從而有力推動我國傳統醫藥得到國際認可。

但斑馬魚模型還存在一些問題有待深入研究。如它缺少哺乳動物的一些器官，如：肺、皮膚、前列腺和乳腺，使其生物代謝過程與人存在差異性。以斑馬魚作為模式生物進行骨疾病模型及藥物篩選、藥效評價的研究報道相對較少，特別是與已深入基因水平的國外研究相比，國內剛剛起步，研究成果不多；斑馬魚缺乏滑膜關節，因此不能在此模型中充分研究參與滑膜關節形成的基因；此外，斑馬魚有20%相對于人類的的基因存在兩個同源基因，導致兩者基因絕對相似度沒有87%；斑馬魚模型與現有模型研究的相關性，以及斑馬魚模型實驗結果的穩定性和重復性也不十分明朗等。考慮到這些潛在的不足，我們并不是以期斑馬魚短期內取代經典的哺乳動物模型，而是在以脊椎動物為模式生物的骨疾病模型及其藥物開發研究中做一名探路者。

[1] Streisinger G, Walker C, Dower N, et al. Production of clones of homozygous diploid zebra fish (Brachydaniorerio) [J]. Nature, 1981, 291(5813): 293-296.

[2] Concordet JP, Ingham P. Developmental biology. Catch of the decade [J]. Nature, 1994, 369(6475): 19-20.

[3] Kahn P. Zebrafish hit the big time [J]. Science, 1994, 264(5161): 904-905.

[4] Haffter P, Nusslein-Volhard C. Large scale genetics in a small vertebrate, the zebrafish [J]. Int J Dev Biol, 1996, 40(1): 221-227.

[5] Driever W, Solnica-Krezel L, Schier AF, et al. A genetic screen for mutations affecting embryogenesis in zebrafish [J]. Development, 1996, 123: 37-46.

[6] Mcgrath P, Li CQ. Zebrafish: a predictive model for assessing drug-induced toxicity [J]. Drug Discov Today, 2008, 13(9-10): 394-401.

[7] 于學慧, 張世棟, 張承梅. 發育生物學的理想動物模型——斑馬魚 [J]. 中國實驗動物學雜志, 2001, 11(3): 45-48.

[8] Howe K, Clark MD, Torroja CF, et al. The zebrafish reference genome sequence and its relationship to the human genome [J]. Nature, 2013, 496(7446): 498-503.

[9] 何嘉玲, 劉靜, 王天奇, et al. 斑馬魚的質量標準化 [J]. 中國實驗動物學報, 2014, 22(6): 99-102.

[10] Borski RJ, Hodson RG. Fish research and the institutional animal care and use committee [J]. ILAR J, 2003, 44(4): 286-294.

[11] Rubinstein AL. Zebrafish: from disease modeling to drug discovery [J]. Curr Opin Drug Discov Devel, 2003, 6(2): 218-223.

[12] Siccardi AJR, Padgett-Vasquez S, Garris HW, et al. Dietary strontium increases bone mineral density in intact zebrafish (Danio rerio): a potential model system for bone research [J]. Zebrafish, 2010, 7(3): 267-273.

[13] Fleming A, Sato M, Goldsmith P. High-throughput in vivo screening for bone anabolic compounds with zebrafish [J]. J Biomol Screen, 2005, 10(8): 823-831.

[14] Li N, Felber K, Elks P, et al. Tracking gene expression during zebrafish osteoblast differentiation [J]. Dev Dyn, 2009, 238(2): 459-466.

[15] Yang DC, Tsai CC, Liao YF, et al. Twist controls skeletal development and dorsoventral patterning by regulating runx2 in zebrafish [J]. PLoS One, 2011, 6(11): e27324.

[16] Pasqualetti S, Banfi G, Mariotti M. The zebrafish scale as model to study the bone mineralization process [J]. J Mol Histol, 2012, 43(5): 589-595.

[17] 張燕麗, 張翠珍, 彭剛, et al. 斑馬魚顱骨骨組織發育特征的研究 [J]. 口腔醫學研究, 2014, 02): 97-99.

[18] Du SJ, Frenkel V, Kindschi G, et al. Visualizing normal and defective bone development in zebrafish embryos using the fluorescent chromophore calcein [J]. Dev Biol, 2001, 238(2): 239-246.

[19] 張姍姍, 何秋霞, 韓建, 等. 利用斑馬魚模型評價氨基葡萄糖鹽酸鹽及淫羊藿的促進骨骼礦化作用 [J]. 山東科學, 2016, 29(2): 19-24.

[20] Rembold M, Lahiri K, Foulkes NS, et al. Transgenesis in fish: efficient selection of transgenic fish by co-injection with a fluorescent reporter construct [J]. Nat Protoc, 2006, 1(3): 1133-1139.

[21] Delaurier A, Eames BF, Blanco-Sanchez B, et al. Zebrafish sp7:EGFP: a transgenic for studying otic vesicle formation, skeletogenesis, and bone regeneration [J]. Genesis, 2010, 48(8): 505-511.

[22] Mitchell RE, Huitema LF, Skinner RE, et al. New tools for studying osteoarthritis genetics in zebrafish [J]. Osteoarthritis Cartilage, 2013, 21(2): 269-278.

[23] Green J, Taylor JJ, Hindes A, et al. A gain of function mutation causing skeletal overgrowth in the rapunzel mutant [J]. Dev Biol, 2009, 334(1): 224-234.

[24] Bruneel B, Witten PE. Power and challenges of using zebrafish as a model for skeletal tissue imaging [J]. Connect Tissue Res, 2015, 56(2): 161-173.

[25] Barrett R, Chappell C, Quick M, et al. A rapid, high content, in vivo model of glucocorticoid-induced osteoporosis [J]. Biotechnol J, 2006, 1(6): 651-655.

[26] De Vrieze E, Van Kessel MA, Peters HM, et al. Prednisolone induces osteoporosis-like phenotype in regenerating zebrafish scales [J]. Osteoporos Int, 2014, 25(2): 567-578.

[27] 王長梅, 韋英杰, 賈曉斌, 等. 潑尼松龍誘導斑馬魚骨質疏松模型的建立 [J]. 世界科學技術-中醫藥現代化, 2013, 15(3): 509-514.

[28] 韋英杰, 王長梅, 蔡雪婷, 等. 地塞米松影響骨骼發育的斑馬魚模型的建立 [J]. 藥學學報, 2013, 48(2): 255-260.

[29] 韋英杰, 王長梅, 詹揚, et al. 淫羊藿苷對潑尼松龍誘導的斑馬魚骨質疏松防治作用研究[C]. 2012年中國藥學大會暨第十二屆中國藥師周, 中國江蘇南京,2012.

[30] 景莉君, 王長梅, 韋英杰, 等. 接骨湯抗潑尼松龍誘導斑馬魚骨丟失的作用研究 [J]. 世界科學技術-中醫藥現代化, 2014, 16(5): 1071-1075.

[31] Akimenko MA, Mari-Beffa M, Becerra J, et al. Old questions, new tools, and some answers to the mystery of fin regeneration [J]. Dev Dyn, 2003, 226(2): 190-201.

[32] Sousa S, Valerio F, Jacinto A. A new zebrafish bone crush injury model [J]. Biol Open, 2012, 1(9): 915-921.

[33] De Vrieze E, Sharif F, Metz JR, et al. Matrix metalloproteinases in osteoclasts of ontogenetic and regenerating zebrafish scales [J]. Bone, 2011, 48(4): 704-712.

[34] Geurtzen K, Knopf F, Wehner D, et al. Mature osteoblasts dedifferentiate in response to traumatic bone injury in the zebrafish fin and skull [J]. Development, 2014, 141(11): 2225-2234.

[35] Wiweger MI, Avramut CM, De Andrea CE, et al. Cartilage ultrastructure in proteoglycan-deficient zebrafish mutants brings to light new candidate genes for human skeletal disorders [J]. J Pathol, 2011, 223(4): 531-542.

Application of zebrafish models in the research on bone diseases

WANG Xiao-qi1，2, SUN Yan1，2,ZHANG Yang1, ZHAO Hon-bin1,LI Wen-hui2

(1. First Affiliated Hospital, Kunming Medical University, Kunming 650032, China; 2. Kunming Institute of Zoology, Chinese Academy of Sciences, Kunming 650032)

Zebrafish (Daniorerio), as a new vertebrate model organism, has been widely used in human disease research in recent years, especially in the study of human bone diseases. The zebrafish models show some advantages, such as expression of disease-related genes and application in pharmacodynamic screening and evaluation, etc. It is also of great practical significance for the traditional medicine, which has a characteristic efficacy in the treatment of bone diseases. This paper reviews the research and application of zebrafish in research on bone diseases such as osteoporosis, fracture, osteoarthritis, and so on, aiming to provide some inspiration for the future clinically relevant research.

Zebrafish; Bone diseases; Animal models

國家自然科學基金委-云南省人民政府聯合基金項目(編號：U150220034)。

王小琦(1984-)，女，碩士研究生，研究方向：骨質疏松及骨質疏松后骨折，E-mail：287253120@qq.com。

趙宏斌(1967-)，男，主任醫師，研究方向：骨質疏松和民族醫藥學，E-mail：596829191@qq.com；李文輝(1967-)，男，研究員，研究方向：動物活性多肽，E-mail：leewh@mail.kiz.ac.cn。

綜述與專論

R-33

A

1671-7856(2017) 06-0086-06

10.3969.j.issn.1671-7856. 2017.06.018

2016-11-15