豬繁殖與呼吸綜合征（PRRS）的檢測技術

陳曉輝+薛梅+朱俊平

摘要：豬繁殖與呼吸綜合征（PRRS）是一種嚴重危害養豬業的傳染病，常與其他病原混合感染，臨床診斷非常困難，要確診需要進行實驗室檢測。而及時診斷是防控PRRS的關鍵環節。從抗體的檢測和病原的檢測兩個方面對PRRS的檢測技術進行了簡要綜述，旨在為診斷PRRS提供指導。

關鍵詞：豬繁殖與呼吸綜合征；抗體檢測；病原檢測

中圖分類號：S858.28 文獻標識碼： 文章編號：1007-273X（2016）12-0009-02

豬繁殖與呼吸綜合征（Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome， PRRS）是由豬繁殖與呼吸綜合征病毒（Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome virus，PRRSV）引起的一種嚴重危害養豬業的傳染病。以妊娠母豬流產、死產、弱胎、木乃伊胎等繁殖障礙及各年齡階段豬的呼吸道癥狀為特征[1-3]。該病毒具有抗原變異性、嗜巨噬細胞性、持續感染性及抗體依賴增強性作用，臨床上常與其他病原混合感染使臨床表現形式復雜化[4-5]。要確診需要進行實驗室檢測，實驗室檢測方法很多，每種方法在檢測的特異性、敏感性、成本等方面存在差異。因此，建立有效且適合基層使用的PRRS檢測方法是防控PRRS的重要環節，本文就PRRS檢測方法進行了綜述，供參考。

1 抗體的檢測

免疫熒光抗體（IFA）試驗、免疫過氧化酶單層細胞試驗（IPMA）、血清中和（SVN）試驗及酶聯免疫吸附試驗（ELISA）等都可用于檢測PRRSV的特異性抗體，通過檢測抗體水平可以對豬個體或整個豬群的PRRSV感染狀況或疫苗免疫效果給予一定的評價。

1.1 PRRSV抗體檢出時間及維持時間

當豬感染PRRSV 7～14 d后，機體首先產生IgG抗體，機體產生的抗體隨著時間的積累呈增加的趨勢，當抗體達到峰值后在體內維持一段時間，然后抗體水平逐漸下降，不同檢測方法檢測出的抗體出現峰值時間、峰值維持時間以及抗體在體內存留時間均不一致。在試驗感染條件下，通過IgG-IFA、IPMA、ELISA、SVN方法可分別在感染后5～9、9～11、9～13、9～28 d內檢測到抗體。PRRSV特異性IgM抗體在接種后5 d可以檢測到，并可持續21～28 d。不同的方法檢測出的抗體峰值時間各不相同：IFA 30～50 d、IPMA 35～50 d、ELISA 30～50 d、SVN 60～90 d，隨后抗體滴度逐漸下降。感染PRRSV后用各種方法檢測的抗體消失時間為： IFA 4～5個月、ELISA 4～10個月以上、IPMA 11～12個月、SVN12個月[6-8]。疫苗免疫后各種方法的檢測結果與上述時間段基本一致。

1.2 酶聯免疫吸附試驗（ELISA）

ELISA適于大規模檢測，方便、易行，操作過程及結果判斷能夠標準化，且具有高度的特異性和敏感性，以間接ELISA和阻斷ELISA常見[6-8]。利用ELISA檢測血清中PRRSV抗體出現的時間與用IPMA和IFA檢測抗體出現時間基本相同，但是血清中PRRSV抗體持續時間明顯長于IPMA和IFA所檢測出的抗體維持時間，檢出時間長達1年左右。

ELISA診斷抗原有2種，一種是從細胞培養物中純化的全病毒抗原，另一種是重組的PRRSV核衣殼蛋白。無論是用全病毒還是用基因表達產物作為診斷抗原建立的ELISA，均具有較強的背景反應。IDEXX公司生產的PRRSV抗體ELISA檢測試劑盒在全球范圍內推廣使用，曾被認為是PRRSV抗體檢測的金標準。但不久通過對照試驗對該試劑盒檢測效果進行評價，發現IDEXX試劑盒存在假陽性結果，PRRSV全病毒抗原間接ELISA與IDEXX HerdChek ELISA試劑盒相比，前者特異性僅為26.6%，敏感性也僅為48.8%。如果該方法應用于實際生產中，將會對PRRS的凈化以及后備種豬的篩選帶來嚴重后果。因此，在ELISA試劑盒研制上還需要廣大從事ELISA試劑盒研制的人員做出更大的努力來彌補現有試劑盒的不足之處，進一步完善中國ELISA診斷試劑盒標準[8-10]。

1.3 免疫過氧化酶單層細胞試驗（IPMA）

IPMA是廣泛用于該病診斷的一種方法，其敏感性和特異性都較好，可用于PRRSV的血清抗體檢測、病毒鑒定及抗原檢測。自1991年建立至今，仍是歐洲和美洲國家廣泛使用的血清學診斷方法。利用IPMA和商品化的PRRSV ELISA試劑盒檢測抗體，并進行比較，發現利用同源性抗原檢測抗體，IPMA比ELISA試劑盒檢測出抗體的時間提前2～3 d，特別是對母源抗體的靈敏度更高，然而ELISA卻能在不損失特異性的基礎上提高敏感性，所以相比之下，ELISA更適合用來診斷PRRSV。由于IPMA結果判定具有一定主觀性，不能自動顯示，同時費時，檢測費用高，不適合大規模檢測，因此在實際生產中未得到廣泛應用[9，10]。

1.4 免疫熒光抗體（IFA）試驗

IFA法在美國被廣泛利用，該法需進行細胞培養、熒光鏡檢，結果借助肉眼來觀察，因實驗室操作方法的不同、技術人員的不同和非特異性熒光等原因產生較大的主觀性。對IFA和ELISA方法進行比較，結果發現二者具有很高的符合率，不符合的原因可能是血清抗體的水平太低。ELISA可以檢測抗體滴度比較低的血清，而用IFA則檢測不到，由此造成假陰性結果。

利用間接熒光抗體試驗對試驗感染PRRSV的豬的抗體進行檢測，結果表明，在感染病毒后9～14 d，首先檢測出IgG抗體，高滴度的IgG抗體可以維持7周；感染病毒后35 d再次接種PRRSV，體內IgG抗體滴度不發生變化，病毒血癥仍可檢測到。在接種5～28 d可以檢測到IgM抗體，35 d后再次接種病毒其抗體在短時間內增加。利用熒光抗體試驗在不同時間對IgM抗體水平進行檢測，在短時間內有助于鑒別是否感染PRRSV。因此，在實際生產過程中要盡可能避免假陰性結果的出現，在條件允許情況下結合其他檢測結果得出結論[9-11]。

血清中和試驗與IFA和ELISA相比，其敏感性低，原因可能是由于PRRSV特異的中和抗體出現比較晚，要在感染后30～60 d才能檢測到。對于急性感染的敏感性更差，與其他檢測方法的結果符合率低，達不到早期診斷的目的。因此，該方法不適合應用于實際生產中，僅限于實驗室診斷[10-12]。

血清學呈陽性的結果并不能確定PRRSV是否能引起臨床發病，也不能區別是感染野毒還是疫苗毒，也不能說明動物機體是否為病毒的攜帶者，僅能說明曾經感染過PRRSV。對于血清學陰性可能是未感染PRRSV或感染但還未產生抗體，或以前感染過但現在血清轉陰，或是檢測方法的敏感性不夠或操作誤差。因此，現有的血清學方法不適合監測整個豬群的群體情況，其僅能對單個個體作出初步診斷，要作出更準確的診斷，還應與免疫狀況或病毒分離或抗原的檢測相結合，才能達到對PRRS診斷、疫情凈化的目的[10-12]。

2 病原的檢測

病原的檢測主要包括免疫學檢測以及生物學檢測，其中免疫學檢測包括免疫熒光染色法、免疫過氧化物酶染色法以及免疫膠體金技術等，而生物學檢測主要進行病毒的分離；核酸的檢測主要利用分子生物學技術對病毒特定的基因組進行檢測。由于免疫學檢測存在較大的弊端，下面僅對生物學檢測以及核酸檢測技術作一簡單的概述。

2.1 生物學檢測—病毒的分離

用于PRRSV分離的細胞有原代豬肺巨噬細胞（PAM）、傳代細胞系CL2621和Marc145。其中PAM最常用，因為傳代細胞系對該病毒易感性差，故不能完全代替PAM，而且由于不是每批巨噬細胞對病毒的易感性都相同，所以在用PAM進行分離病毒前，還要進行批次試驗，只有當特定滴度的標準病毒在新的巨噬細胞中生長良好時，方可使用，該方法是診斷PRRSV感染的經典方法，多用于急性病例的確診和新疫區的確定，但是也存在不足之處，如費用較高、勞動強度較大，耗時多，且有可能污染其他病毒等，因此該方法不利于大規模豬場疫病的檢測[10-12]。

2.2 核酸檢測（反轉錄-聚合酶鏈式反應）

核酸檢測（反轉錄-聚合酶鏈式反應）反轉錄-聚合酶鏈式反應（Reverse transcription polymer-ase chain reaction， RT-PCR）廣泛應用于PRRSV的鑒定及臨床診斷，并在方法上不斷改進和提高，擴增的目的片段也主要是針對PRRSV的核衣殼蛋白基因，主要的原因是PRRSV基因組中ORF7編碼的核衣殼蛋白（N蛋白）中包括所有毒株都保守的共同表位和區別于歐洲型的特異性決定簇。RT-PCR比病毒分離更省時、省力，敏感性和特異性更強。用于RT-PCR檢測的樣品包括血清、精液及肺臟、脾臟等組織[13-15]。

利用RT-PCR對試驗感染豬進行抗原和抗體檢測，并與病毒分離和ELISA抗體檢測結果進行了比較，結果發現該方法可以在感染24 h后檢測到病毒的核酸，但不能分離到病毒，而抗體只能在感染后第9d檢測到，由此可見RT-PCR的靈敏度明顯高于病毒分離和ELISA，有利于早期診斷[13-15]。

PCR方法可以區分歐洲株與美洲株，但其臨床應用意義并不大。國外應用PCR診斷PRRSV已取得很大進展，許多學者根據PRRSV不同的ORF序列，設計了不同引物，建立了檢測PRRSV核酸的RT-PCR方法。隨著RT-PCR技術的發展，也陸續出現了熒光標記的RT-PCR方法，如采用TaqManTMRT-PCR或分子信標RT-PCR方法檢測臨床樣品，這些方法比常規RT-PCR方法的特異性更強，敏感性更高，但需要更高的成本。應特別注意的是，因其敏感性特別高，易引起假陽性，因此在檢測時應盡可能避免RNA的污染。RT-PCR方法在PRRS的診斷及監測中發揮很大作用，在ELISA檢測為陽性的基礎上，再用高敏感性的RT-PCR進行確診，這不僅可以降低費用，而且可拓寬RT-PCR的應用前景，如后備種豬的篩選，持續性感染豬的診斷及豬群的凈化等[13-15]。

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