豬輪狀病毒與豬傳染性胃腸炎病毒混合感染的實驗室診斷

方振華 沈振國 孫倩 丁利

摘要[目的]對海南省某豬場腹瀉病死仔豬病原進行實驗室診斷。[方法]通過臨床癥狀觀察與病理剖檢，結合RT-PCR方法和病毒的分離培養進行病原鑒定。[結果]經過RT-PCR擴增，獲得了PRV和TGEV陽性目的片段；應用MA-104細胞與PK-15細胞分別進行PRV與TGEV的分離培養后，可見典型的細胞病變，經過RT-PCR進一步鑒定最終確診為PRV和TEGV混合感染。[結論]通過采用緊急接種和保守治療等綜合防治措施，獲得了較好的防控效果。

關鍵詞豬輪狀病毒；豬傳染性胃腸炎病毒；混合感染；實驗室診斷

中圖分類號S858.28文獻標識碼A文章編號0517-6611（2017）14-0089-02

Abstract[Objective] To make laboratory diagnosis of dead pigs from a hoggery of Hainan Province.[Method] By using the clinical examination，pathologic autopsy，RTPCR and cell culture methods，the pathogen of dead pigs were separated and identified.[Result] The positive fragments of porcine rotavirus（PRV）and transmissible gastroenteritis virus （TGEV）were obtained by RTPCR.After PRV and TGEV were isolated and cultured in MA104 cells and PK15 cells respectively，the typical cytopathic effect displayed.The mixed infection of PRV and TGEV was further identified by RTPCR.[Conclusion] Better curative effects were obtained after comprehensive treatment measures such as emergent inoculation and conservative treatment were taken.

Key wordsPorcine rotavirus；Transmissible gastroenteritis virus；Mixed infections；Laboratory diagnosis

豬傳染性胃腸炎病毒（Porcine transmissible gastroenteritis virus，TGEV）是冠狀病毒科冠狀病毒屬成員，可導致豬傳染性胃腸炎（Transmissible gastroenteritis，TGE）[1-2]。該病是豬的一種高度接觸性腸道傳染病，各種年齡的豬均可發病，以嘔吐、嚴重腹瀉和失水為主要特征，10日齡以內的仔豬病死率很高，可達100%。近幾年來，我國該病的發生和流行呈上升趨勢，給養豬業造成了極大的經濟損失[3-5]。豬輪狀病毒（Porcine rotavirus，PRV）屬于呼腸病毒科輪狀病毒屬的成員，是導致仔豬病毒性腹瀉的主要病原之一[6-7]。該病毒易感染仔豬，尤其是1～4周齡仔豬的發病率可超過80%，該病在世界范圍內均有分布[8-9]。豬傳染性胃腸炎和豬輪狀病毒感染的發病年齡、流行特點、臨床癥狀及病理變化十分相似，時有混合感染[10]。傳統的診斷方法（如臨床觀察病變、熒光抗體檢測、免疫組織化學法等）操作步驟較為繁瑣，且較難進行TGEV和PRV鑒別診斷。2016年12月，海南省某豬場哺乳仔豬出現拉稀癥狀，并迅速波及全群，排黃白色、水樣有惡臭味的糞便，病豬嘔吐物中有未消化的凝乳塊。仔豬體重減輕，脫水嚴重。10日齡內新生仔豬多在腹瀉后2～4 d死亡，病死率達100%。筆者通過臨床癥狀觀察和病理剖檢，結合RT-PCR和病毒的分離培養進行病原鑒定。

1材料與方法

1.1試驗材料動物組織/細胞基因組RNA提取試劑盒和瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒均為北京索萊寶科技有限公司產品；反轉錄試劑盒和PCR SuperMix購自北京全式金生物技術有限公司；病料來自海南某豬場。

1.2試驗方法

1.2.1PRV VP4 基因引物。根據GenBank 數據庫的PRV-VP4 保守序列，設計1 對引物，并由上海生物工程股份有限公司合成。上游引物P1為5′-CACCAAACGCAACAACAGGA-3′；下游引物P2為5′-GATTAGCTGCTGGAAGTCCGT-3′。預計擴增基因片段822 bp。

1.2.2TGEV N 基因引物。根據GenBank數據庫的TGEV-N 保守序列設計1 對引物。上游引物為5′-AGAGGCAGGCAACAATCCAA-3′，下游引物為5′-GTGACTTCTATCTGGTCGCCAT-3′。預計擴增基因片段386 bp。

1.2.3病毒RNA 的提取。取病豬腹瀉糞便0.1 g，加入1.5 mL 離心管中，用生理鹽水2倍稀釋，反復凍融3次，4 ℃ 5 000 r/min 離心10 min，收集上清液。上清液按照總RNA 提取試劑盒的說明書進行總RNA提取。

1.2.4RT-PCR。

1.2.4.1cDNA合成。以提取的總RNA 為模板，以Oligo（dT）18為引物，進行反轉錄（RT）反應。反應體系為：總RNA 2 μL、Oligo（dT）18（0.5 μg/μL）1 μL、2×TS Reaction Mix 10 μL、Trans Script RT/RI Enzyme Mix 1 μL、RNase-free Water 6 μL。反應條件為：42 ℃孵育 30 min，85 ℃ 5 min。最后，將反轉錄產物于-20 ℃下保存，備用。

1.2.4.2PCR。反應體系：模板cDNA 2 μL、SuperMix 12.5 μL、上下游引物（20 μmol/L）各1 μL、用滅菌的ddH2O補至25 μL。反應程序：94 ℃預變性5 min；94 ℃變性30 s，53 ℃退火30 s，72 ℃延伸30 s，共34個循環；循環結束后，72 ℃延伸10 min。反應完畢，PCR產物經過1.0%瓊脂糖凝膠電泳進行檢測。

1.2.5病毒分離。將上述處理的病料上清經0.22 μm濾膜過濾后接種于MA-104細胞和PK-15細胞，同時設置正常細胞對照，37 ℃下吸附1 h，加入含2%胎牛血清DMEM維持液，置于37 ℃二氧化碳培養箱中培養，并盲傳3代，觀察細胞病變，并將細胞培養物進行PRV和TGEV的PCR檢測。

2結果與分析

2.1PRV檢測結果

2.1.1病料PCR檢測結果。將采集的病料經過常規方法處理后，以提取總RNA為模板，進行RT-PCR擴增。經擴增，得到1條822 bp 的特異性條帶（圖1），表明待測樣品為PRV陽性。

2.1.2PRV的分離培養及鑒定。將PRV陽性病料過濾后接種于MA-104細胞，經盲傳3代后，培養48 h，細胞出現散在的灶狀細胞病變；培養72～96 h，細胞變圓，部分細胞脫落（圖2）。將細胞培養液進行PRV檢測，結果發現所分離病毒為PRV。

2.2TGEV檢測結果

2.2.1病料PCR檢測結果。將采集的病料經過RT-PCR擴增，得到1條386 bp的特異性條帶（圖3），表明待測樣品為TGEV陽性。

2.2.2TGEV的分離培養及鑒定。將TGEV陽性病料過濾后接種于PK-15細胞，經盲傳3代后，培養24 h，部分細胞出現皺縮；培養48～72 h，細胞聚集成團、脫落（圖4）。將細胞培養液進行TGEV檢測，結果發現所分離病毒為TGEV。

3討論與結論

豬傳染性胃腸炎病毒和豬輪狀病毒均是引起仔豬腹瀉的重要病原體，近年來，隨著我國養豬規模的不斷擴大，這2種病原引起的豬病呈上升趨勢，且多呈混合感染，給養豬業造成了巨大的經濟損失[4，10]。豬輪狀病毒和傳染性胃腸炎病毒的靶細胞均為豬小腸黏膜上皮細胞[1，11]。病毒混合感染時，感染病豬的小腸黏膜上皮細胞的損傷程度加劇，表現為大量上皮細胞變性、壞死，腸絨毛顯著萎縮變短，甚至脫落。由此可見，當2種病毒混合感染時，仔豬的嘔吐、腹瀉和脫水等病癥遠較單一病原引起的癥狀更為嚴重，病死率遠比單一病毒感染引起的高，給養殖場造成的經濟損失也會更大。

鑒別與診斷PRV、TGEV的傳統方法主要有抗原檢測、電鏡觀察、病毒的分離與鑒定、血清學診斷等[12-13]，這些方法大多操作比較繁瑣，且周期長，靈敏度不高。RT-PCR技術具有靈敏度高、特異性強、操作簡便快捷等優點，可以大大提高檢測效率。于曉龍[10]、閆兆吉等[13]對來自各豬場的病料進行了PRV和TGEV調查，認為RT-PCR方法是鑒別診斷TGEV 和PRV 最特異、敏感的方法。在該病例的診斷過程中，在進行臨床癥狀觀察及尸體剖檢的基礎上，選擇RT-PCR檢測技術作為確診的依據，并對病料進行病毒的分離和鑒定，進一步驗證了RT-PCR結果的準確性。筆者通過深入養殖場調查，發現該養豬場存在飼養管理水平較低、養殖密度高、免疫程序制定不合理等問題，造成了豬只免疫力下降，從而導致疾病的發生。目前，豬輪狀病毒和豬傳染性胃腸炎病毒感染尚無有效的治療藥物，對于患病豬只應大量補充等滲葡萄糖氯化鈉溶液，供給大量清潔飲水，進行緊急接種、保守治療，淘汰部分發病豬只等，同時養殖場應采取合理的監控措施及免疫程序，加強衛生和飼養管理，提高豬群的抵抗力是最為有效的防治方法。

參考文獻

[1] SONG Z H，DAI X J，YE C F，et al.Morphogenesis and proliferative rule of porcine transmissible gastroenteritis virus in porcine intestinal epithelial cells[J].J Virol methods，2016，238（12）：6-12.

[2] HU X L，LI N N，TIAN Z G，et al.Molecular characterization and phylogenetic analysis of transmissible gastroenteritis virus HX strain isolated from China[J].BMC Vet Res，2015，11：72.

[3] 王黎，李碧，周遠成，等.豬傳染性胃腸炎病毒RT-PCR檢測方法的建立及臨床應用[J].中國獸醫學報，2015，35（2）：190-194.

[4] 徐靜.豬傳染性胃腸炎病毒分離及部分特性鑒定[D].哈爾濱：東北農業大學，2015.

[5] 宋林林，王曉紅，姜博，等.豬傳染性胃腸炎病毒陜西分離株S蛋白抗原位點的真核表達[J].動物醫學進展，2016，37（8）：6-10.

[6] HULL J J，MARTHALER D，ROSSOW S，et al.Genomic sequence of the first porcine rotavirus group H strain in the United States[J].Genome Announc，2016，4（2）：1763-1777.

[7] GHOSH S，NAVARRO R，MALIK Y S，et al.Whole genomic analysis of a porcine G6P[13] rotavirus strain[J].Vet Microbiol，2015，180（3/4）：286-298.

[8] MAO X B，LIU M H，TANG J，et al.Dietary leucine supplementation improves the mucin production in the jejunal mucosa of the weaned pigs challenged by porcine rotavirus[J].PLoS One，2015，10（9）：137380.

[9] 馬士博.豬輪狀病毒流行毒株的分離及部分特性鑒定[D].哈爾濱：東北農業大學，2015.

[10] 于曉龍.豬傳染性胃腸炎病毒和豬輪狀病毒混合感染的PCR 檢測[J].中國農學通報，2006，22（8）：33-35.

[11] 王靜.永生化豬小腸上皮細胞系的建立及豬輪狀病毒對其影響的研究[D].楊凌：西北農林科技大學，2014.

[12] 高云航，孫澤威.豬輪狀病毒病診斷技術綜述[J].吉林農業大學學報，1999，21（S1）：77-79.

[13] 閆兆吉，劉婷婷，張惠，等.豬流行性腹瀉、豬傳染性胃腸炎和輪狀病毒混合感染的診斷實例[J].中國豬業，2014（12）：49-51.