牛場肥水灌溉對土壤nirK、nirS型反硝化微生物群落結構的影響

王 婷,劉麗麗,張克強,王 風,杜會英,高文萱,3,*

1 農業部環境保護科研監測所, 天津 300191 2 天津師范大學生命科學學院, 天津 300387 3 天津大學化工學院,天津 300072

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牛場肥水灌溉對土壤nirK、nirS型反硝化微生物群落結構的影響

王 婷1,2,劉麗麗2,張克強1,王 風1,杜會英1,高文萱1,3,*

1 農業部環境保護科研監測所, 天津 300191 2 天津師范大學生命科學學院, 天津 300387 3 天津大學化工學院,天津 300072

以徐水縣梁家營長期定位施肥試驗田為研究對象,利用末端限制性片段長度多態性(T-RFLP)分析和克隆文庫構建,研究了5種施肥處理(清水灌溉CK、無機肥灌溉CF、牛場肥水不同濃度、不同次數灌溉T4、T5和T11)下土壤中nirK、nirS型反硝化細菌群落多樣性及其群落結構的演變。結果表明,不同施肥處理下nirK、nirS型反硝化細菌群落多樣性無顯著差異,但群落結構卻有明顯變化：nirK型反硝化細菌群落結構既受施肥種類又受施肥量影響,優勢種群尤其對施肥種類和施肥量響應顯著；nirS型反硝化細菌則主要受施肥種類影響,施肥量影響微弱。牛場肥水處理和無機肥處理分別促進和抑制不同的nirS型反硝化細菌,群落主成分受無機肥促進、牛場肥水抑制。系統發育分析結果表明,土壤中nirK型反硝化細菌主要與假單胞菌屬(Pseudomonas)、產堿桿菌屬(Alcaligenes)和根瘤菌屬(Rhizobium)的反硝化細菌具有較近的親緣關系；nirS型反硝化細菌主要與勞爾氏菌(Ralstonia)和紅長命菌屬(Rubrivivax)有較近的親緣關系。試驗土壤中反硝化微生物多與目前已報道的好氧反硝化細菌親緣關系較近,這可能與微生物分析取自表層土有關。

nirK；nirS；反硝化細菌；牛場肥水灌溉；T-RFLP；群落多樣性

反硝化過程與土壤氮素損失和溫室氣體排放密切相關,是土壤研究中的重點問題[1]。反硝化作用致使土壤喪失20%—30%的氮肥,是土壤肥力下降的重要原因[2]；反硝化作用還產生大量N2O,全球70%的N2O排放來自土壤[3],其中農業生態系統的排放量約占25%[4],是導致溫室作用的重要因素；因此,反硝化過程研究對于保持土壤肥力、減少溫室氣體排放具有重要意義。反硝化過程是土壤微生物還原硝態氮生成NO、N2O和 N2的過程,其中亞硝酸還原酶(Nir)催化亞硝酸鹽還原成NO,是催化反硝化作用中最關鍵的一步反應,是整個反硝化過程中的限速步驟[5],因而其編碼基因(nir)成為反硝化細菌中研究最多的功能基因[5],在反硝化研究中被廣泛用作分子標記[6]。亞硝酸還原酶分為cd1-亞硝酸還原酶和Cu-亞硝酸還原酶兩種,分別由nirS和nirK基因編碼[6]。兩種基因在微生物中的分布存在差異,nirS基因在反硝化菌中的存在比nirK更廣泛,但nirK基因卻存在于許多親緣關系較遠的菌株中[5]。

施肥是影響土壤質量及其可持續利用最深刻的農業措施之一,對土壤結構、生物肥力和生產力等方面產生重要影響[7-9],施肥制度的不同也可導致土壤微生物種群數量和活性發生變化,進而影響土壤反硝化過程[10]。Chang Yin等[11]研究發現,施加無機肥顯著改變nirK型反硝化細菌的群落組成,而對nirS型反硝化細菌的群落組成影響不顯著；而施加有機肥則對兩者均無影響。宋亞娜等[12]發現,施用氮肥和氮肥用量增加有助于提高稻田土壤nirS型反硝化細菌群落多樣性指數和豐度,同時促使nirS型反硝化細菌群落結構發生改變,尤其在表層土壤中及水稻齊穗期內表現最為明顯。Wolsing和Prieme[13]通過長期定位試驗,發現施用有機肥和無機肥的農田中nirK型反硝化細菌的群落結構和反硝化速率均有明顯差異。因此,當施肥制度發生變化時,有必要研究土壤微生物中nirK和nirS型反硝化細菌群落變化,進而明確新的施肥制度對土壤反硝化過程的影響。

隨著集約化飼養程度的不斷提高、養殖污染問題日益受到重視,將養殖廢物發酵產生的沼液作為一種優質的有機液體肥料,通過水肥還田替代傳統施肥方式,在很多國家和地區得到應用和推廣[14-15]。研究發現相比不施肥和常規施肥,沼液肥水灌溉不僅能夠提高作物質量,還能夠提高土壤微生物活性[16-20]。如鄭學博等[16]發現沼液全氮處理較不施肥和單施化肥處理提高了土壤細菌、真菌、放線菌數量和微生物總量；馮偉等[17]研究發現沼液與尿素配合施用可以提高小麥根際土壤微生物數量和酶活性；馮丹妮等[18]研究發現與清水對照和常規施肥相比,施用沼液會增加微生物數量并提高土壤酶活性。然而目前對于液態牛場肥水灌溉對土壤反硝化過程以及反硝化土壤微生物的影響尚未見報道。本研究利用在河北省徐水縣長期定位試驗,應用末端限制性片段多態性分析(Terminal restriction fragment length polymorphism,T-RFLP)和構建克隆文庫方法,探明了按當地農民習慣施肥以及不同灌溉次數、不同濃度的牛場肥水灌溉的施肥方式下,冬小麥-夏玉米大田0—5 cm土層中nirS、nirK型反硝化細菌群落的多樣性和組成變化,為深入探討牛場肥水灌溉施肥對大田氮素循環過程及反硝化作用影響提供相應依據,并為大田合理施肥、提高牛場肥水灌溉效果提供科學參考。

1 材料與方法

1.1 試驗設計與土壤樣品采集

本實驗以徐水縣梁家營長期定位施肥試驗田為研究對象。徐水縣地處太行山東麓,河北省中部,北緯38°09—39°09,東經115°19—115°46,屬大陸性季風氣侯,年平均氣溫11.9℃,年均降水量546.9毫米,年日照時數平均2744.9小時。試驗于2010 年10 月至2014 年6月在河北省徐水縣進行。冬小麥-夏玉米輪作是當地主要的種植制度,冬小麥當年10月上旬耕種,次年6月中旬收獲,冬小麥秸稈還田；夏玉米在小麥收獲后一周內耕種,當年9 月底收獲,夏玉米秸稈人工收獲,作為青貯飼料喂養奶牛。試驗地種植前耕層土壤有機質質量分數24.5 g/kg、pH值7.76、全氮質量分數1.39 g/kg、硝態氮質量分數13.09 mg/kg、銨態氮質量分數2.24 mg/kg、速效磷質量分數64.19 mg/kg。

實驗田每個小區長9m,寬6m,面積54m2,四周1m土體內用塑料布隔開,種植方式為冬小麥-夏玉米輪作。共設5個處理,每個處理設置3個重復小區,且小區之間隨機分布,CK處理為不施肥處理,僅用清水灌溉；CF處理為常規施肥處理,在播種后、拔節期分別施加底肥(冬小麥播種時施復合肥(N 含量15%,P2O5含量21%,K2O 含量6%)375 kg/hm2；冬小麥拔節期追肥尿素600 kg/hm2；玉米播種時施復合肥(N 含量25%,P2O5含量10%,K2O 含量10%)600 kg/hm2),其他生育期清水灌溉；T4、T5和T11為牛場肥水處理組,其中T4處理用30%的沼液灌溉1次(越冬期),T5處理用30%的沼液灌溉2次(越冬期、返青期),T11處理用50%的沼液灌溉兩次(越冬期、返青期),其他生育期均以清水灌溉。各處理的施肥方式、施肥時間和施肥成分見表1；肥水沼液原液成分見表2。

表1 各個處理施肥量

表2 灌溉肥水沼液原液成分

土壤樣品在小麥收割后(6月中旬)進行采集,采用5點法采集土樣,每個小區隨機選取5點采集0—5cm的表層土,去除根系、雜草、土壤動物和石塊等雜質后混勻,于-20℃冰箱保存。

1.2 土壤微生物總DNA提取

土壤微生物總DNA的提取方法和步驟按照土壤基因組DNA提取試劑盒FastDNAR SPIN Kit For Soil (MP Biomedicals,LLC)的說明進行。將提取的DNA用Nano Drop核酸蛋白儀(ND- 1000)測定濃度及質量,于-20 ℃冰箱中保存。

1.3nirK、nirS型反硝化細菌 T-RFLP 分析

按照表3進行PCR擴增,擴增產物用Mini BEST DNA Fragment Purification Kit VER 4.0(TaKaRa)試劑盒進行純化回收,并用Nano Drop核酸蛋白儀(ND- 1000)檢測純化產物濃度及質量。產物回收后,nirK基因擴增產物用內切酶HaeⅢ(TaKaRa)進行酶切,nirS基因擴增產物用內切酶HhaⅠ(TaKaRa)進行酶切,反應體系和條件按各內切酶說明書進行。酶切產物送生工生物工程(上海)股份有限公司進行測序分析。

表3 聚合酶鏈式反應中的引物及反應條件

1) 上下游引物分別標注為F和R; 2) 用于PCR T-RFLP實驗的上游引物都用6-FAM熒光標記

1.4nirK、nirS基因克隆及測序分析

以土壤基因組DNA為模板,按照表3進行PCR擴增,產物用Mini BEST DNA Fragment Purification Kit VER 4.0(TaKaRa)試劑盒進行純化,純化后的產物分別與pMD19R-T Vector載體進行連接反應。

將10 μL連接產物分別轉化到100 μL大腸桿菌JM109感受態細胞中,涂在含有X-Gal、IPTG、Amp的LB瓊脂平板培養基上37 ℃過夜培養后進行藍白斑篩選,挑取白斑克隆子,用通用引物M13F(5′-TGT AAA ACG ACG GCC AGT-3′,TaKaRa),M13R(5′-CAG GAA ACA GCT ATG ACC-3′,TaKaRa)進行菌落PCR驗證,選取大約100個克隆子擴大培養后送生工生物工程(上海)股份有限公司進行測序分析。

1.5 數據處理

綜合T-RFLP數據,計算不同處理nirK、nirS型反硝化細菌多樣性指數[14],并且用CANOCO for Windows 4.5軟件對nirK、nirS基因T-RFLP 結果進行PCA分析。用MEGA 5.0軟件構建nirK、nirS基因系統發育樹。相關數據的方差分析和相關性分析采用SPSS 17.0軟件進行。

2 結果與分析

2.1 施肥對土壤nirK型反硝化細菌的影響

2.1.1 不同施肥處理下土壤nirK型反硝化細菌群落結構變化

圖1 不同處理nirK型反硝化細菌T-RFs相對豐度百分比 Fig.1 Percentage of relative abundance of bacteria nirKT-RFs in different treatments (mean±SE,n=3)

圖2 不同施肥處理土壤nirK型反硝化細菌群落的主成分分析 Fig.2 Principal component analysis of soil denitrifying bacteria nirK under different fertilize treat

將不同處理土壤樣品的nirK功能基因擴增后用限制性內切酶HaeⅢ酶切并進行T-RFLP分析,得到55、65、95、100、105、110、125、155和190 bp 9種主要片段(圖1)。各處理間的優勢片段存在明顯差異, CK、CF、T4、T5和T11處理的最大優勢菌分別為155、110、95、105和155bp,說明不同施肥種類、不同施肥量都導致nirK基因T-RFs結果產生顯著變化。

根據nirK基因T-RFs數據進行主成分分析(圖2)發現,第1主成分PC1可以解釋46.8%的物種變量,第2主成分PC2可以解釋30%的物種變量。不同濃度的牛場肥水處理(T4、T5、T11)之間nirK型反硝化細菌主要種類具有明顯差異,T5處理主要分布在PC1的正軸,T4、T11則大部分分布在 PC1的負軸,說明不同濃度的牛場肥水灌溉對土壤中nirK型反硝化細菌主要種類影響不同。同時,CF處理分布在PC2的正軸而其余處理在PC2上相差不大,說明施加無機肥使土壤中nirK型反硝化細菌次要種類有所增加,而牛場肥水灌溉則無明顯影響。

2.1.2 不同施肥處理下土壤nirK型反硝化細菌多樣性變化

利用nirK基因T-RFs數據進行序列多樣性分析(表4),發現所有處理組之間, Shannon-wiener指數、Simpson指數、Margalef 指數和Pielou指數E都沒有顯著差異。

2.1.3nirK型反硝化細菌系統發育分析

本研究選取所有處理nirK基因混合樣品構建克隆文庫,共挑選了120個克隆子測序并進行NCBI網站的BLAST比對分析,剔除假陽性克隆與重復數據,結合酶切分型分析最終獲得了14個有代表性的操作分類單元。

表4 不同施肥處理土壤反硝化細菌nirK基因多樣性指數

圖3 基于nirK型反硝化細菌系統發育樹(鄰接法)Fig.3 Neighbour-joining phylogenetic tree of nirK gene sequences每個克隆名稱后面的數字表示酶切片段長度,括號中的數字表示相同片段的克隆數

利用鄰接法構建系統發育樹(圖3),依據序列在進化樹上的分布和已知微生物的相似度,將進化樹分為3簇。第Ⅰ簇片段包括55、65、130、155、170、190bp,與假單胞菌屬(Pseudomonas)和產堿桿菌屬(Alcaligenes)有較高的分類值；第Ⅱ簇片段包括95、105、170、190bp,與根瘤菌屬(Rhizobium)有較高的分類值；第Ⅲ簇片段包括55、155和190bp,與根瘤菌屬(Rhizobium)和假單胞菌屬(Pseudomonas)的部分已知微生物相似。由于反硝化功能基因在不同微生物之間存在水平傳遞,所以反硝化菌nirK功能基因的系統發育學關系和16S rRNA 分類對應關系很差[21],存在相同片段長度代表不同反硝化菌和不同片段長度代表相同反硝化菌的情況。

2.2 施肥對nirS型反硝化細菌的影響

2.2.1 不同施肥處理下土壤nirS型反硝化細菌群落結構變化

將不同處理土壤樣品的nirS功能基因擴增后用限制性內切酶HhaⅠ酶切,主要得到70、100、110、120、160、172、327和336 bp 8種片段(圖4),其中172bp為CK、T4、T5和T11處理的最大優勢菌,120bp為CF處理最大優勢菌。

圖4 不同處理nirS型反硝化細菌T-RFs相對豐度百分比 Fig.4 Percentage of relative abundance of bacteria nirS T-RFs in different treatments (mean±SE,n=3)

70、100、120和172bp片段百分比含量受施肥影響顯著,說明這四種T-RFs所代表的反硝化菌群可能對施肥條件敏感。其中172bp在牛場肥水灌溉處理組(T4、T5和T11)中豐度較CF和CK顯著提高,而120bp表現出相反的趨勢。這兩種T-RFs都是nirS群落中的主要菌群,二者可能存在競爭關系,牛場肥水灌溉有利于172bp菌群生長而不利于120bp菌群生長,而常規施肥(CF)具有相反影響。70bp和100bp片段豐度雖然出現顯著變化,但是在各處理組間并未表現出明顯的規律性。

圖5 不同施肥處理土壤nirS型反硝化細菌群落的主成分分析 Fig.5 Principal component analysis of of soil denitrifying bacteria nirS under different fertilize treat

根據nirS基因T-RFs數據進行主成分分析(圖5)發現,第1主成分PC1可以解釋81.7%的物種變量,第2主成分PC2可以解釋10.1%的物種變量；牛場肥水灌溉處理(T4、T5、T11)與無機肥處理組(CF)的nirS型反硝化細菌主要種類PC1存在明顯差異,無機肥處理組(CF)主要分布在PC1的正軸,牛場肥水處理組全部則分布在PC1的負軸,說明nirS型反硝化細菌主要種類(PC1)受施肥種類影響明顯,牛場肥水處理大幅降低了主要成分所占比例而無機肥處理使主要成分比例提高；與清水灌溉相比,所有施肥處理均降低了nirS型反硝化細菌次要種類(PC2)所占比例,其中高施肥量處理(CF、T11)降低最明顯,說明nirS型反硝化細菌次要種類(PC2)主要受施肥量影響,高施肥量使其比例降低。但由于第2主成分僅能解釋10.1%的物種變量,遠低于第1主成分(81.7%),所以施肥量對nirS型反硝化細菌總體貢獻微弱。

2.2.2 不同施肥處理下土壤nirS型反硝化細菌多樣性變化

利用nirS基因T-RFs相對豐度數據進行序列多樣性分析(表5),發現清水灌溉組(CK)的Shannon-wiener指數(不顯著)和Simpson指數(顯著)略高于施肥處理組,而施肥處理組之間各指數均無顯著差異,說明施肥處理可能使nirS型反硝化細菌群落多樣性有所降低,而各施肥組之間多樣性無顯著差別。

2.2.3nirS型反硝化細菌系統發育分析

本研究選取所有處理nirS基因混合樣品構建克隆文庫,共挑選了110個克隆子進行測序分析,剔除假陽性克隆和重復數據,最終獲得了27個有代表性的操作分類單元。

表5 不同施肥處理土壤反硝化細菌nirS基因多樣性指數

圖6 基于nirS序化化細列的反硝菌系統發育樹(鄰接法)Fig.6 Neighbour-joining phylogenetic tree of nirS gene sequences每個克隆名稱后面的數字表示酶切片段長度,括號中的數字表示相同片段的克隆數

實驗得到的大多數nirS序列和已知的反硝化微生物相似性較低,但和NCBI數據庫中來自土壤的其它nirS序列有較高的相似性(73%—99%)。利用鄰接法構建系統發育樹(圖6),依據序列在進化樹上的分布和部分已知微生物的相似度,將進化樹分為5簇。克隆序列主要集中分布在第Ⅰ、Ⅲ簇,其中第Ⅰ簇與副球菌屬(Paracoccus)有較高的相似度,包括T-RFs 70 、120 、160、172、180、190 、203 、244p、313 和335 bp片段；第Ⅲ簇與β-變形菌綱(β-Proteobacteria)的伯克氏菌目(Burkholderiales)的Ralstonia和Rubrivivaxgelatinosus有較高的相似度,包括T-RFs 70 、100 、160和172 bp片段。第Ⅱ、Ⅳ、Ⅴ簇沒有相似的已知物種。

3 討論

影響土壤反硝化作用的因素主要有溫度、pH、水分、含氧量、碳氮類型和碳氮比以及土壤質地、土壤利用和耕作方式等[22]。在本研究中,各試驗田的光照、土壤、作物、種植方式、灌溉方式均相同,即去除溫度、水分、含氧量、土壤質地和耕作方式的影響,不同施肥方式通過pH、碳氮類型和碳氮量對反硝化微生物產生影響。本試驗的土壤樣品取自0—5cm的表層土,氧氣含量高,利于好氧反硝化細菌生長。研究發現土壤中nirK型反硝化細菌主要與假單胞菌屬(Pseudomonas)、產堿桿菌屬(Alcaligenes)、根瘤菌屬(Rhizobium)的反硝化細菌具有較近的親緣關系。nirS型反硝化細菌主要與副球菌屬(Paracoccus)、伯克氏菌目(Burkholderiales)反硝化細菌具有較近的親緣關系；這些反硝化微生物多與目前已報道的好氧反硝化細菌親緣關系較近。

大量研究表明,nirK型反硝化細菌對施肥敏感,不同的施肥條件會對nirK型反硝化細菌群落結構產生影響。例如羅希茜等[23]發現長期單施化肥(尿素)即可明顯改變nirK型反硝化細菌群落結構組成；Wolsing[13]、Chen[24]、以及Martin Wolsing[25]等人均發現施加無機肥和有機肥對nirK型反硝化細菌群落結構演變造成顯著差異。可見有機肥與無機肥的施用對nirK型反硝化細菌群落結構有顯著影響。這與本研究中CK、CF以及不同水平牛場肥水處理組(T4、T5和T11)造成nirK基因T-RFs顯著變化的結果相一致。此外,本研究還發現,T4、T5和T11之間nirK型反硝化細菌群落結構差異也顯著,說明即使是相同施肥種類,不同的施肥量也會導致nirK型反硝化細菌群落結構發生明顯變化；但CF、T4、T5、T11和CK之間群落變化不具有規律性,這一點也體現在PCA分析中,各處理點呈現隨機分布的趨勢。這種nirK型反硝化細菌群落結構隨施肥的種類和施肥量呈現無規律顯著變化的現象,說明nirK型反硝化細菌對施肥種類、施肥量都十分敏感,施肥條件小幅改變都可能造成群落結構出現顯著變化。另外,本研究發現所有處理在四種多樣性指數上都無顯著差異,說明施肥條件改變不會對nirK型反硝化細菌群落多樣性造成影響,這與羅希茜[23]等人的發現一致。

有研究表明,nirS型反硝化細菌群落結構受環境影響顯著,如莫旭華等[26]發現,不同類型的反硝化細菌對無機氮肥的反應不同而導致了nirS型反硝化細菌群落結構改變,但未改變nirS型反硝化細菌的多樣性；尹昌等[27]研究發現,黑土中nirS型反硝化菌種群的群落結構和豐度對長期施用有機肥有顯著的響應。也有研究發現nirS型反硝化菌種群對環境的變化不敏感,如Yoshida等[28]發現,在水稻土中nirS型反硝化菌對環境變化不敏感；Chang Yin等[11]發現,我國南方水稻土中nirS型反硝化菌的群落結構對施加無機肥和無機肥處理處理均沒有顯著的響應。根據上述研究,nirS型反硝化細菌對施肥響應存在一定矛盾,推測可能與土壤條件、作物種類有關,nirS不敏感的研究都是以水稻為研究對象,再如羅希茜等[23]也發現水稻土nirS型反硝化細菌群落結構對氮肥施加不敏感。本研究以冬小麥-夏玉米輪作田為研究對象,發現施肥種類會對nirS型反硝化細菌群落結構產生顯著影響,這與莫旭華等[26]和尹昌等[27]研究發現相符。此外,本研究發現牛場肥水灌溉條件下,不同施肥量(T4、T5和T11)之間群落結構變化不大。因此推測,nirS型反硝化細菌對施肥種類有一定敏感性,而對不同牛場肥水施肥量在實驗條件下不敏感。

4 結論

本文采用T-RFLP技術,系統研究不施肥、無機肥和不同水平牛場肥水處理對nirK、nirS型反硝化細菌群落結構和多樣性的影響。結果表明：

(1)實驗條件下,不同施肥條件使nir型反硝化細菌群落結構發生改變：nirK型反硝化細菌對施肥種類、施肥量都十分敏感；而nirS型反硝化細菌對施肥種類有一定敏感性,對不同牛場肥水施肥量不敏感。

(2)實驗條件下,不同施肥條件對nirK和nirS型反硝化細菌群落多樣性造成的影響無顯著性差異。

(3)本試驗土壤中nirK和nirS型反硝化細菌主要與好氧反硝化細菌親緣關系較近。

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Effects of cattle fertilizer on community structure ofnirK- andnirS- type denitrifying bacteria in soil

WANG Ting1,2, LIU Lili2, ZHANG Keqiang1, WANG Feng1, DU Huiying1, GAO Wenxuan1,3,*

1Agro-EnvironmentalProtectionInstitute,MinistryofAgriculture,Tianjin300191,China2TianjinNormalUniversity,collegeofLifeSciences,Tianjin300387,China3TianjinUniversity,SchoolofChemicalEngineeringandTechnology,Tianjin300072,China

Field experiments of winter wheat-summer maize rotation were conducted in Xushui, Hebei Province, North China Plain irrigation area, to explore the effects of dairy effluent irrigation on diversity and community structure ofnirK- andnirS- type denitrifying bacteria through terminal restriction fragment length polymorphism (T-RFLP) analysis and gene sequence analysis. Five treatments were designed, including no fertilizers treatment (CK), conventional fertilization (CF) and dairy effluent irrigations with 3 fertilizer levels (T4, T5 and T11). The results showed that no significantly differences were noted in diversity indexes ofnirK- andnirS- denitrifying bacteria in all treatments. And T-RFLP analysis ofnirKandnirSgenes addressed significant differences in community composition: both fertilizer type and amount affected the relative abundance ofnirK- T-RFs significantly, especially for dominant T-RFs, and therefore affectednirK- community composition; organic and inorganic fertilizer treatments increased or decreased differentnirS- T-RFs′ relative abundance, resulting in significant differences innirS- community composition. Phylogenetic analysis ofnirKandnirSgene indicated that thenirK- type denitrifiers were mainly composed ofPseudomonas,AlcaligeneandandRhizobium,nirS- type denitrifiers were mainly composed ofRalstoniaandRubrivivax. Most of these identified denitrifying bacteria were belong to families of aerobic denitrifying bacteria. A possible reason was that samples for biological analysis were taken from topsoil.

nirK;nirS; denitrifying bacteria; cattle fertilizer; terminal restriction fragment length polymorphism (T-RFLP); community structure

國家自然科學基金面上項目(41371481)；國家科技支撐計劃(2012BAD15B02)

2016- 04- 18; 網絡出版日期:2017- 02- 22

10.5846/stxb201604180714

*通訊作者Corresponding author.E-mail: wenxuangao@hotmail.com

王婷,劉麗麗,張克強,王風,杜會英,高文萱.牛場肥水灌溉對土壤nirK、nirS型反硝化微生物群落結構的影響.生態學報,2017,37(11):3655- 3664.

Wang T, Liu L L, Zhang K Q, Wang F, Du H Y, Gao W X.Effects of cattle fertilizer on community structure ofnirK- andnirS- type denitrifying bacteria in soil.Acta Ecologica Sinica,2017,37(11):3655- 3664.