禽偏肺病毒 Taqman熒光定量 PCR方法的建立及應用

劉佳佳，陳 峰，2，覃健萍，周慶豐，魯俊鵬，操 勝，王占新，田 野

(1．廣東溫氏食品集團股份有限公司，廣東 云浮 527439;2．華南農業大學動物科學學院，廣東 廣州 510642)

禽偏肺病毒 Taqman熒光定量 PCR方法的建立及應用

劉佳佳1，陳 峰1，2，覃健萍1，周慶豐1，魯俊鵬1，操 勝1，王占新1，田 野1

(1．廣東溫氏食品集團股份有限公司，廣東 云浮 527439;2．華南農業大學動物科學學院，廣東 廣州 510642)

根據GenBank中aMPV-C P基因序列，設計出一對特異性引物和Taqman探針，建立了aMPV-CTaqman探針熒光定量PCR方法。對該反應體系進行優化，進行特異性、敏感性及重復性試驗，并且建立標準曲線。結果表明，該方法只對aMPV-C檢測為陽性，具有良好的特異性;能夠檢測到(3.63×102)拷貝數，具有良好的敏感性;建立的標準曲線斜率為-3.312，截距為44.66，相關系數為R2=0.999，循環閾值和模板拷貝數具有良好的相關性，組內及組間重復性好。采用aMPV-C Taqman探針熒光定量方法、普通PCR方法對來自廣東、浙江地區25份番鴨疑似陽性aMPV-C的病料進行檢測，其中前者23份陽性，后者18份陽性。這表明aMPV-C Taqman熒光定量PCR方法對樣品的檢測具有特異性和敏感性高的特點，更適合臨床樣品的檢測。

C亞型番鴨偏肺病毒;熒光定量PCR;Taqman熒光探針

禽偏肺病是由禽偏肺病毒(avian metapneumovirus，aMPV)引起的急性上呼吸道感染，具有高度傳染性疾病之一［1］。禽偏肺病的死亡率僅為2% ～5%，但發生細菌或者支原體等繼發感染的情況下，死亡率可高達90%，對養禽業造成了嚴重的經濟損失［2］。目前只在中國華南地區番鴨身上分離到偏肺病毒［3］。

目前，有許多實驗室診斷方法，例如:病毒的分離鑒定、基因組的測定、特異性抗體的檢測等［4－6］，但是這些方法的缺點是靈敏性低。實時熒光定量PCR技術是指在PCR反應體系中加入熒光基團，利用熒光信號積累實施實時監測整個PCR進程并對模板進行定量分析的方法，其中Taqman探針法相較染料法特異性更高。因此本試驗建立的aMPV-C Taqman探針熒光定量PCR對禽偏肺病毒高效、快速的診斷有重要的臨床意義。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 病毒 aMPV-C分離株(S01株)、ND分離株、DRV分離株、MPV分離株、AIV分離株、IB分離株等均由本實驗室保存。

1.1.2 試劑 Taqman RT-PCR熒光定量一步法試劑盒，購自英偉創津;AxyPrep體液病毒DNA/ RNA小量試劑盒、DNA片段快速純化/回收試劑盒，購自愛思進生物技術(杭州)有限公司;一步法反轉錄試劑盒(PrimeScript One Step RT-PCR Kit Ver.2)，DNA Marker DL-2 000，購自TaKaRa公司;其他化學試劑如無水乙醇、氯仿等均為國產分析純產品。

1.2 方法

1.2.1 引物設計與合成 擴增片段位于P基因，引物由寶生物工程大連有限公司合成，探針5'端標記的熒光報告基團為FAM，3'端標記的熒光淬滅基團為BHQ。上游引物為:5'-GGTGAAGGCTGCTCCATTATG-3'，下游引物為5'-CCTCTCGCAAGAGACATGCA-3'，探針為 5'-FAM-AGGGAAAGACGGGAGTTBHQ-3'，全長為62 bp。

1.2.2 aMPV-C病毒總RNA的提取和目的片段的獲得 用AxyPrep體液病毒DNA/RNA小量試劑盒提取病毒液中的 RNA。用一步法反轉錄試劑盒(PrimeScript One Step RT-PCR Kit Ver.2)以抽提的核酸為模板進行反轉錄及PCR，獲得P基因目的片段。采用25μL體系，具體反應程序為:50℃ 30 min，94℃4 min;94℃ 30 s、53℃ 30 s、72℃ 15 s，30個循環，然后72℃延伸10 min，最后4℃終止反應。

1.2.3 陽性標準品的制備 將PCR獲得的目的片段純化后克隆到pMD-19T載體中，將重組獲得的質粒轉化到TOP10感受態細胞中增殖，經菌液鑒定、抽提質粒、酶切鑒定和測序，篩選出陽性質粒，經分光光度計測定其 OD值，即拷貝/μL=6.02×1023(拷貝/mol)×DNA濃度(g/μL)/MW(g/mol)，計算質粒拷貝數。

1.2.4 反應條件的優化 結合使用梯度PCR儀，選出最佳的退火溫度。在其他變量不變的情況下，以出現最小的樣本閾值循環數(Ct值)和最高熒光值以及不出現非特異性擴增為標準，分別對退火溫度，循環條件，循環次數和引物濃度等條件進行優化。

1.2.5 標準曲線的建立 提取的質粒經微量分光光度計測定其質量濃度，并計算重組質粒的拷貝數。用滅菌超純水將制備好的陽性標準品做10倍比例稀釋，得到連續10個稀釋度的模板進行熒光定量PCR，并做3個重復，建立標準曲線。

1.2.6 特異性試驗 設定非aMPV-C(aMPV-B、 NDV、ALV、IBV、MPV、DRV等)及空白對照，檢測本方法的特異性。

1.2.7 敏感性試驗 用滅菌超純水對 aMPV-C Taqman熒光定量PCR標準模板進行10×系列稀釋，以此計算出熒光定量PCR所能檢出的最低模板拷貝數，同時設置陰性對照。

1.2.8 重復性試驗 取3個稀釋濃度的陽性標準品分別作3個復孔，在組內和組間分別進行3次重復測定，將得到的Ct值通過SPSS16.0統計軟件計算其相應的變異系數CV%，進而檢測該反應體系的重復性或穩定性。

1.2.9 檢測方法的應用 取疑似陽性禽偏肺病毒感染的番鴨病料進行熒光定量PCR檢測及普通PCR檢測，比較檢測結果。

2 結果

2.1 克隆質粒鑒定結果 克隆的質粒經PCR及酶切鑒定，擴增出一條大小約為62 bp的特異片段，與預期結果相符。克隆的菌液測序結果表明目的基因已克隆到T載體上，并且與P基因序列同源性為100%。克隆的質粒經微量分光光度計測定其在260 nm處的吸光度為110 ng/μL，計算其原始的拷貝數為:3.63×1010copies/μL。

2.2 反應體系及反應條件優化 用10μmol/L的引物濃度和4μmol/L探針濃度，對質粒標準品的檢測可獲得較小的 Ct值和較大的ARn。熒光定量PCR的循環條件優化結果表明，三溫循環及退火溫度59℃為最佳的循環條件。

2.3 標準曲線的建立 取3.63×103～3.63×108拷貝/μL的重組質粒標準品為模板，進行熒光定量PCR擴增。熒光定量PCR結束后，用7 500system software進行數據分析，得到P基因的標準曲線方程為y=-3.312x+44.66和相關系數R2=0.999。待測樣品的Ct值可以從儀器讀取;把待測樣品的Ct值代入表達式就可以算出它的初始拷貝數。

2.4 特異性試驗 所建立的aMPV-C熒光定量PCR只對aMPV-C(S01)有特異性的擴增曲線，如中插彩版圖1。

2.5 敏感性試驗 以6倍系列稀釋的標準質粒(3.63×101～3.63×108拷貝/μL)為模板進行熒光擴增，在3.63×102拷貝/μL時仍有熒光曲線，表明該方法檢測靈敏度可達3.63×102拷貝/μL，如中插彩版圖2。

2.6 重復性試驗 3個稀釋濃度的陽性標準品分別作3個復孔，在組內和組間分別進行3次重復檢測，其Ct值和變異系數如表1所示，組內和組間的變異系數均小于2%。

2.7 對來自不同地區25份疑似陽性aMPV-C的病料進行Taqman熒光定量PCR及普通PCR檢測，其中前者23份陽性，陽性檢出率為92%;后者18份陽性，陽性檢出率為72%。

表1 熒光定量重復性試驗

3 討論

常規PCR技術可以快速的、特異的檢測很少拷貝數的aMPV，但不能準確定量，而且容易出現交叉污染產生假陽性、PCR后處理繁瑣［7－8］。熒光定量PCR技術不僅實現了PCR從定性到定量的飛躍，而且與常規PCR相比，它具有特異性更強，有效解決PCR污染問題，自動化程度高等特點，被廣泛應用于病原體檢測監控，醫學檢測，病毒載荷量測定，基因表達研究和食品衛生檢疫等方面。

本研究中根據aMPV-C基因組中相對保守的P基因為靶基因成功的建立了一個Taqman探針熒光定量PCR方法，該方法檢測特異性高，只能檢測出aMPV-C，對aMPV-B、NDV、ALV、IBV、MPV、DRV等無擴增，敏感性強，能檢測出2.6×102拷貝數。建立的標準曲線斜率為負3.312，截距為44.66，相關系數為R2=0.999，循環閾值和模板拷貝數具有良好的相關性，重復性試驗組內和組間的變異系數均小于2%。這說明所建立的aMPV-C Taqman熒光定量PCR檢測方法具有良好的穩定性和重復性，標準曲線的質量很好，具有很強的實用性。該方法用于臨床病料的檢測，其陽性檢出率為92%，而普通PCR的陽性檢出率僅為72%，該方法對aMPV-C感染、增殖規律的研究奠定了重要基礎。

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［3］ Sun S，Chen F，Cao S，et al．Isolation and characterization of a subtype C avian metapneumovirus circulating in Muscovy ducks in China［J］．Vet Res，2014，45:74．

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Establishment and application of Taqman fluorescence quantitative PCR method for avian metapneumovirus

LIU Jia-jia1，CHEN Feng1，2，QIN Jian-ping1，ZHOU Qing-feng1，LU Jun-peng1，CAO Sheng1，WANG Zhan-xin1，TIAN Ye1

(1．Guang Dong Wens Foodstuff Group Co．Ltd，Yunfu 527439，China; 2．South China Agricultural University，Guangzhou 510642，China)

In order to establish a method of aMPV-C Taqman probe fluorescence quantitative PCR，a pair of specific primers and Taqman probe were designed based on the P gene sequences of aMPV-C in the Genbank．Then the method system was optimized by the specific，sensitive tests，and replicative experiments，and the standard curve was established．The results indicated that the system had good specificity and sensitivity，and the aMPV-C samples including 3．63×102 copies/μL was positively tested．The cycle threshold and template copy number also had good correlation in the standard curve．It also had repeatability within the group and between the groups．25 positive aMPV-C samples were tested by two kinds of PCRs，and the results showed that23 samples were detected to be positive by the established PCR，and 18 samples were detected positive by the other PCR method．Our results suggest that the aMPV-c Taqman PCR is specific and sensitive for detecting clinical samples．

aMPV-C;real-time PCR;Taqman fluorescence probe

CHEN Feng

S852.65+1

A

0529-6005(2017)06-0034-03

2016-05-19

國家自然科學基金(31072138)

劉佳佳(1988-)，女，碩士生，研究方向為鴨病防制，E-mail:1255370172@qq．com．

陳峰，E-mail:chenfeng1224@126．com