3種離子強度下pH值對羅非魚肌球蛋白溶解度及分子構象的影響

付葦婭，周春霞,2*，朱潘紅，鄭惠娜,2，洪鵬志,2，楊萍,2

1(廣東海洋大學 食品科技學院，廣東省水產品加工與安全重點實驗室，廣東 湛江，524088) 2(廣東海洋大學 深圳研究院，廣東 深圳，518120)

3種離子強度下pH值對羅非魚肌球蛋白溶解度及分子構象的影響

付葦婭1，周春霞1,2*，朱潘紅1，鄭惠娜1,2，洪鵬志1,2，楊萍1,2

1(廣東海洋大學 食品科技學院，廣東省水產品加工與安全重點實驗室，廣東 湛江，524088) 2(廣東海洋大學 深圳研究院，廣東 深圳，518120)

研究了3種離子強度下，不同pH值(2.0～12.0)對羅非魚(Oreochromisniloticus)肌球蛋白溶解性、表面疏水性、SDS-PAGE及α-螺旋含量的影響。結果表明，在實驗范圍內，離子強度增大使肌球蛋白等電點向酸性方向偏移，在低離子強度(1 mmol/L KCl)、生理離子強度(150 mmol/L KCl)及高離子強度(600 mmol/L KCl)條件下，其溶解度最小的pH值分別為5.5、5.0和4.5，極端酸性(pH 2.0)和堿性(pH 11.0～12.0)條件下，肌球蛋白溶解度較高(>80%)；在中性和高離子強度條件下，分子表面疏水性低，α-螺旋含量高，穩定性較好；酸誘導去折疊過程中，在等電點附近表面疏水性較低，在偏離等電點的酸性條件下，表面疏水性增加，而極端酸性條件下展開的肌球蛋白分子可能會發生折疊，分子降解及靜電相互作用導致溶解度增大；堿誘導去折疊過程中，表面疏水性隨pH值的升高而增加，肌球蛋白重鏈通過二硫鍵形成聚合物；在中性、堿性和極端酸性條件下，α-螺旋含量隨著鹽濃度的增加而增大，高鹽對肌球蛋白的二級結構有保護作用。總體分析，在高鹽濃度和極端堿性條件下，肌球蛋白呈現“熔球態”構象。

羅非魚肌球蛋白；pH值；離子強度；去折疊；溶解度；構象

羅非魚是我國淡水養殖的主要魚類之一。魚肌肉蛋白的主要成分是肌球蛋白，占肌原纖維蛋白的55%～60%，決定了魚肌肉鹽溶性蛋白的溶解性及相關功能特性[1-2]。肌球蛋白分子含有2個球狀頭部和1個棒狀尾部，由2條分子質量為220 kDa的肌球蛋白重鏈(MHC)和4條分子質量為17～22 kDa的肌球蛋白輕鏈(LHC)組成[1]。在體外受pH值、離子強度、熱處理等的影響，魚肌肉蛋白分子結構、溶解度及相關性質發生變化，尤其是MHC的降解或聚合[3-4]。在廣泛pH范圍(2～12)內，低鹽(10 mmol/L NaCl)條件下酸誘導鱈魚肌肉MHC降解，而堿性條件下MHC通過二硫鍵形成聚合物；而高鹽(600 mmol/L NaCl)使肌肉蛋白等電點向酸性方向偏移約2個pH單位，且在酸性條件下發生聚集，堿性條件下分子發生重折疊[3]。極端酸/堿處理都會導致鱈魚MHC的球狀頭部構象完全改變，LHC大部分損失，在極端酸性(pH 2.5)條件下，肌球蛋白分子棒狀尾部完全解離，而極端堿性(pH 11.0)條件下分子不發生解離，再調節pH值回到中性(pH 7.5)時，肌球蛋白棒狀尾部折疊成原有構象，而球狀頭部不能重新折疊回原有構象[5]；酸/堿處理前加鹽(600 mmol/L NaCl)對體系有保護作用，調節回中性(pH 7.3)后肌球蛋白分子變性程度較小[6]。極低離子強度條件(不含鹽)下，pH值4～7時，鮭魚肌球蛋白的溶解度極低，隨著離子強度(0～0.5 mol/L KCl)增加，靜電和疏水相互作用變化導致溶解度增大[7]，通常認為一定范圍內這種鹽溶(salting-in)效應與Cl-在蛋白表面選擇性結合使蛋白分子間靜電斥力增強有關，且隨鹽濃度的進一步增大，高鹽離子會屏蔽蛋白質分子表面電荷，壓縮雙電層，產生鹽析(salting-out)效應[8-9]，鮭魚肌球蛋白體系鹽濃度高于0.5 mol/L KCl時，溶解度即開始下降[7]；在低于等電點的酸性(pH 3.5)條件下，帶正電的蛋白分子與Cl-結合，豬肉肌原纖維蛋白的溶解度也隨NaCl濃度(低于0.8 mol/L)的增加而下降[10]。但是，在等電點和中性條件下，豬肉肌原纖維蛋白的溶解度隨NaCl濃度(0.2～0.8 mol/L)的增加而增大，且在此鹽溶過程中靜電相互作用增加不明顯[10]，其鹽溶機理主要與陽離子(Na+)高水合程度有關[10-11]。也有研究報道，當體系KCl濃度從0.1增加0.5 mol/L時，秘魯魷魚肌原纖維蛋白分子所帶電荷增加，同時高鹽離子的屏蔽效應增強，分子間相互吸引作用的下降導致溶解度增加[12]。因此，離子對蛋白質的影響非常復雜，Na+和K+對蛋白質分子穩定性的影響也不完全相同[13]，肌肉蛋白的溶解可能與蛋白來源、體外離子強度、離子類型及pH值等因素的共同影響有關，不同條件下的鹽溶機理可能不完全相同，其加工應用特性也不一樣。為此，本研究以羅非魚肌球蛋白為對象，試驗3種典型的KCl濃度條件下，廣泛pH范圍內肌球蛋白分子去折疊過程中分子結構和性質的變化，以探討肌球蛋白溶解性與構象的關系。

1 材料與方法

1.1材料與試劑

鮮活羅非魚：2016年3月～8月購自湛江當地市場，體重為(900±100)g，迅速帶回實驗室，手工去內臟、去頭、去皮，取背部白肉、分裝、-75 ℃儲存備用。

5-腺苷三磷酸二鈉鹽(ATP)、二硫蘇糖醇(DTT)，廣州齊云生物科技有限公司；乙二醇-雙-(2-氨基乙醚)四乙酸(EGTA)，上海源葉生物科技有限公司；三羥基甲基氨基甲烷(Tris)，廣州化學試劑廠；快速Lowry法蛋白含量測定試劑盒(2000T)，上海荔達生物科技有限公司；SDS-PAGE凝膠快速配制試劑盒、SDS-PAGE蛋白上樣緩沖液(5X)、考馬斯亮藍染色液(常規法)，碧云天生物技術研究所；蛋白質分子質量標準(寬)，寶生物工程(大連)有限公司；8-苯胺基-1-萘磺酸(8-Anilino-1-naphthalenesulfonic acid，ANS)、6-丙酰基-2-(N，N二甲胺基)萘(N,N-dimethyl-6-propionyl-2-naphthylamine，PRODAN)，購于美國SIGMA公司；以上試劑均為分析純；馬來酸(maleic acid)，美國MP公司，為優級純試劑。其余試劑均為分析純。

1.2儀器與設備

Avanti J-26sxp高效離心機，美國Beckman公司；UV-2550型紫外分光光度計，RF-5301P熒光分光光度計，日本島津公司；ECP3000電泳儀和DYCZ-24DN雙垂直電泳槽，北京六一儀器廠；UVP凝膠成像系統，美國UVP公司；Chirascan圓二色譜儀，英國應用光物理公司。

1.3實驗方法

1.3.1 肌球蛋白的提取

參照STAFFORD等[14]的方法，進行了改進。實驗所有操作均在4 ℃條件下進行，所用溶液均預先冷卻到4℃。取新鮮攪碎的魚肉200 g，加5倍(g/mL)緩沖液A(20 mmol/L 2HO2·NaH2PO4-12HO2·Na2HPO4，pH 7.0，0.02% NaN3)，高速勻漿(20 000 r/min，30 s)，浸提15 min后離心(5 500×g，10 min)，取沉淀重復上述過程2次。向所得沉淀中加入3倍(g/mL)提取液B(0.45 mol/L KCl，5 mmol/L ATP，7.5 mmol/L MgCl2，0.15 mmol/L DTT，pH 6.4)，攪拌15 min后離心(10 000×g，10 min)。4層紗布過濾，取濾液用9倍(mL/mL)蒸餾水稀釋，靜置10 min后離心(6 000 g，10 min)得沉淀。向沉淀中加入1/5倍(g/mL)緩沖液C(0.12 mol/L maleic acid，3 mol/L KCl，0.6 mmol/L DTT，pH 7.5)，混勻后放置2 h，混合體系中添加1/10倍(g/mL)ATP溶液D(0.11 mol/L ATP，55 mmol/L MgCl2，5.5 mmol/L EGTA，pH 7.5)溶液后，攪拌1 h。加入硫酸銨至飽和度40%～45%進行分級，沉淀于透析液E(20 mmol/L Tris-HCl，0.6 mol/L KCl，0.1 mmol/L DTT，pH 7.0)中透析至無SO42-檢出，然后離心(50 000×g，60 min)，所得上清液即為肌球蛋白溶液。采用Lowry法[15]檢測上清液蛋白含量，以牛血清白蛋白(BSA)為標準物，測量波長為750 nm，并進行SDS-PAGE電泳(5%分離膠，12%濃縮膠)，經凝膠成像系統計算蛋白質純度高于94%。

1.3.2 三種離子強度下酸/堿去折疊肌球蛋白樣液的制備

用透析液E稀釋肌球蛋白溶液至2.0 mg/mL，分別取50 mL溶液用2 mol/L的HCl調節pH值至6.0、5.0、4.0、3.0和2.0，用2 mol/L的NaOH調節pH值至8.0、9.0、10.0、11.0和12.0，各條件下溶液于低溫條件下攪拌30 min后離心(10 000 g，15 min，4℃)，所得上清液即為600 mmol/L KCl中酸/堿去折疊肌球蛋白樣液。

分別用低離子強度透析液(20 mmol/L Tris-HCl，1 mmol/L KCl，pH 7.0)和生理離子強度透析液(20 mmol/L Tris-HCl，150 mmol/L KCl，pH 7.0)透析肌球蛋白，采用LOWRY法[15]檢測測定透析后溶液的蛋白含量，并用對應的透析液稀釋肌球蛋白濃度至2.0 mg/mL，同上調節體系的pH值，離心所得上清液即為1 mmol/L KCl和150 mmol/L KCl溶液中酸/堿去折疊肌球蛋白樣液。各操件均在低溫條件下進行。

1.3.3 溶解度的測定

用各樣品對應的緩沖液適當稀釋上述各處理的樣品上清液，采用lowry法[15]測蛋白含量，肌球蛋白的溶解度按離心所得上清液蛋白含量占未處理前溶液中總蛋白含量的百分比計算。每個樣品測定3次以上。

1.3.4 電泳分析

SDS-PAGE電泳根據LAEMMLI[16]的方法，采用分離膠濃度為12%、濃縮膠濃度為5%的變性聚丙烯酰胺凝膠進行還原(含β-巰基乙醇)及非還原(不含β-巰基乙醇)電泳。

1.3.5 表面疏水性的測定

采用ANS和PRODAN熒光探針法[17]檢測可溶性蛋白的表面疏水性。將經過酸/堿去折疊處理的肌球蛋白上清液逐步稀釋(0.062 5、0.125、0.25和0.5 mg/mL)，取不同濃度的溶液各4 mL，分別加入20 μL的ANS溶液(8.0 mmol/L ANS，0.01 mol/L 2HO2·NaH2PO4-12HO2·Na2HPO4，pH 7.0)和10 μL的PRODAN溶液(1.0 mmol/L PRODAN，甲醇)，振蕩，分別靜置10 min和15 min(避光)，測定樣品的相對熒光強度(FI)。本實驗中，ANS熒光探針檢測的激發波長和發射波長分別為374 nm和485 nm，PRODAN熒光探針檢測的激發波長和發射波長分別為365 nm和465 nm，狹縫寬均為5 nm。減去各樣品溶液未加探針時的熒光強度即為每種蛋白的相對熒光強度值(RFI)。以RFI對蛋白質濃度作圖，其初始段的斜率作為蛋白質的表面疏水性指標(ANS-S0或PRODAN-S0)。每個樣品測定3次以上。

1.3.6 二級結構含量分析

二級結構含量采用圓二色譜儀檢測。將經過酸/堿去折疊處理的肌球蛋白上清液稀釋至蛋白濃度0.1 mg/mL，進行圓二色譜測定。波長掃描范圍為190～260 nm，樣品池光徑為1 mm，上樣量0.3 mL，測量溫度為5 ℃，測定分辨率為0.5 mm，掃描速度為100 nm/min，靈敏度為20 mdeg，響應時間為0.25 s，以未添加肌球蛋白的緩沖液做空白，實驗結果取3次掃描的平均值。α-螺旋含量的計算公式如下[18]：

(1)

(2)

式中：[θ]obs為蛋白質溶液在222 nm處測得的橢圓率，mdeg；MW為肌球蛋白分子的平均氨基酸殘基分子質量，取115 g/mol；c為測量的肌球蛋白溶液的濃度，0.1 mg/mL；L為樣品測量時的比色皿光程長度，cm；[θ]222為222 nm處的摩爾橢圓率，deg·cm2/dmol。每個樣品測定2次取平均值。

1.3.7 統計分析

利用JMP 7.0軟件進行方差分析，差異顯著性(p<0.05)分析使用多重比較。采用Origin 7.5軟件對各指標的變化趨勢作圖。

2 結果與討論

2.1 pH值對羅非魚肌球蛋白溶解性的影響

選取0.001、0.15和0.6 mol/L KCl三種代表性的鹽濃度，分別試驗pH值對肌球蛋白溶解度的影響，結果如圖1。

圖1 三種離子強度下pH值對羅非魚肌球蛋白溶解性的影響Fig.1 Effect of pH on solubility of tilapia myosin at three ionic strength levels

前者為低離子強度溶液，體外在此低離子強度條件下，肌球蛋白組裝成纖絲，呈不溶狀態；0.15 mol/L為肌肉組織的生理離子強度，此狀態下肌球蛋白是不溶的，表現為分散的粗絲狀態；后者是可提取肌球蛋白的高離子強度，此狀態下肌球蛋白呈單體狀態[9,19]。由圖1可知，在實驗范圍內，3種KCl濃度條件下，肌球蛋白溶解度隨pH值變化的曲線趨勢基本相似，其溶解度最小的pH值分別為5.5、5.0和4.5(p<0.05)；而隨著pH值偏離等電點，由于肌球蛋白所帶凈電荷的增多導致蛋白分子間靜電斥力增強，肌球蛋白溶解度增大，但不同pH值和鹽濃度條件下的溶解度不同。(1)在0.001 mol/L KCl條件下，在pH值5.0～7.0范圍內，肌球蛋白的溶解度較低(<15%)；在偏離此范圍的酸性條件下，溶解度迅速增加，pH值由5.0到4.0過程中溶解度由7.05%升高至68.5%，且在極端酸性(pH 2.0～3.0)條件下，溶解度在80%左右；當pH值由7.0至10.0的過程中肌球蛋白的溶解度迅速升高，且在極端堿性(pH 11.0～12.0)條件下，溶解度達到80%以上。(2)在0.15 mol/L KCl條件下，pH值從5.0向酸性方向偏移，溶解度的變化規律與低離子強度條件下的變化類似；pH值由等電點向堿性方向變化時，當pH值由6.0上升到7.0過程中，溶解度迅速增加達到51.6%，pH值由7.0到11.0變化過程中，溶解度的變化不太劇烈，而在極端堿性條件下，溶解度高于80%。(3)在0.6 mol/L KCl條件下，在pH值4.5～3.0范圍內，肌球蛋白的溶解度較低(<13%)，當pH值從3.0降低至2.0時，溶解度明顯增大(p<0.05)，達到85.4%；而pH值從4.5到7.0時，溶解度急劇增大(p<0.05)到100%；在極端堿性條件下，溶解度高于90%。(4)比較而言，隨著離子強度的增大，肌球蛋白的等電點向酸性方向偏移，且離子強度越大偏移越大，其原因可能是Cl-與帶正電氨基酸的結合能力比K+與帶負電氨基酸的結合能力更強[3,9]；由等電點范圍向酸性偏移(pH 5.0→3.0)的過程中，肌球蛋白的溶解度均是隨著離子強度的增大而減小，而由等電點范圍向堿性偏移(pH 5.0→9.0)的過程中，肌球蛋白的溶解度均是隨著離子強度的增大而增大。

2.2pH值對肌球蛋白電泳圖譜的影響

3種離子強度下，肌球蛋白經酸/堿去折疊處理后的還原(添加β-巰基乙醇)和非還原(未添加β-巰基乙醇)電泳結果如圖2所示。

因溶解度差異，本部分僅列出代表性的幾個樣品來說明。對于溶解度較低的pH范圍(pH 4.0～6.0)，肌球蛋白條帶較弱。在低離子強度條件下，在pH 4.0～5.0時基本沒有蛋白條帶出現；在生理離子強度和高離子強度條件下，在pH 5.0～6.0時蛋白條帶極其微弱，與溶解度的檢測結果相一致(圖譜未列出)。(1)在0.6 mol/L KCl溶液中，中性和堿處理的各蛋白樣品在非還原電泳圖上均出現分子質量高于200 kDa的條帶，且極端堿性(pH 11.0)條件下凝膠頂部多聚體更明顯，表明堿性條件下肌球蛋白更容易聚集；而經β-巰基乙醇處理后，肌球蛋白重鏈(約200 kDa)和3條輕鏈(約26、21和17 kDa)條帶清晰，未出現分子質量高于200 kDa的條帶，由此表明聚合物主要由肌球蛋白重鏈(MHC)彼此間通過二硫鍵形成；而極端酸性條件(pH 2.0和3.0)下蛋白條帶相對較弱，但本實驗中，pH 2.0時溶解度仍高于80%，推測可能是此條件下肌球蛋白重鏈降解。類似的結果在pH對鱈魚肌肉蛋白可溶性組分的研究中也有報道，當鹽濃度為600 mmol/L NaCl時，pH 2.0～5.0之間可溶性蛋白組分中肌球蛋白重鏈消失，推測可能是鹽析導致的蛋白質沉淀[4]，也可能是高鹽條件下SDS反離子結合度增大，在SDS-PAGE樣品處理過程中形成膠束被去除了[20]。(2)生理離子強度和低離子強度條件下，極端酸/堿去折疊處理的肌球蛋白均出現了分子質量高于200 kDa的條帶，且堿性和(或)生理離子強度下肌球蛋白重鏈的聚集更明顯，而經β-巰基乙醇處理后，均出現清晰的肌球蛋白重鏈和輕鏈條帶，而低離子強度和中性pH條件下，蛋白條帶很弱，與溶解度的檢測結果一致。

2.3pH值對羅非魚肌球蛋白表面疏水性的影響

采用ANS和PRODAN兩種外源熒光探針檢測可溶性肌球蛋白的表面疏水性，探討蛋白質三級結構的變化[6,17]。由圖3可知，在廣泛pH范圍內，肌球蛋白的表面疏水性不同，且3種離子強度條件下，表面疏水性隨pH值的變化趨勢類似。(1)在中性條件下，肌球蛋白的表面疏水性較低，2種熒光探針檢測的疏水性值都較?。辉趬A性條件下，隨著pH值的升高，PRODAN-S0和ANS-S0值增大，表明肌球蛋白分子部分展開，表面疏水基團暴露；且在中性和堿性條件下，隨著離子強度的增加，肌球蛋白分子的聚集狀態變化，表面疏水性增大。低離子強度條件下，肌球蛋白分子處于聚集狀態，表面疏水性較低，而體外高離子強度條件下蛋白質分子間靜電相互作用被破壞，分子解離成單體，尾部的疏水基團充分暴露，結合更多的探針指示物[3-4]，因此在0.6 mol/L KCl溶液中，肌球蛋白的溶解性和表面疏水性明顯增加。(2)在酸性范圍內，表面疏水性的變化比較復雜，表明肌球蛋白分子在酸性條件下的穩定性較差。在pH 2.0～5.0范圍內，隨著pH值的降低，ANS-S0值增大(p<0.05)，可能與酸性條件下肌球蛋白分子的展開及此條件下帶凈正電荷的蛋白分子與ANS間的靜電相互作用有關。ANS是一種帶負電荷的陰離子熒光探針，可與蛋白表面的陰/陽離子基團通過離子對的形成發生強結合，因此ANS-S0所反映的是蛋白質表面疏水性以及ANS與蛋白質分子間的靜電作用[17]；比較而言，PRODAN是一種不帶電荷的溶劑敏感性探針，可以消除測量過程中可能存在的靜電相互作用的干擾[21]。因此，在酸性條件下，PRODAN-S0值明顯低于ANS-S0值，且極端酸性(pH 2.0～3.0)條件下，PRODAN-S0值低于中性和堿性條件下的PRODAN-S0值，由此推測肌球蛋白在酸性條件下的溶解可能受靜電相互作用的影響；在0.15 mol/L KCl和0.001 mol/L KCl條件下，肌球蛋白分子表面疏水性最低出現在pH 5.0，在偏離等電點的酸性范圍內，隨著pH值的降低，PRODAN-S0值先增大后減小，在實驗范圍內，pH 2.0條件下的PRODAN-S0值均低于pH 3.0，表明在極端酸性條件下肌球蛋白分子展開到一定程度后，進一步降低pH值也可能會使蛋白分子重新折疊，導致表面疏水性下降[22]；此外，等電點附近的蛋白構象呈現特殊變化，pH 6.0時表面疏水性值較大，因此時溶解度極低，其結構變化的機理，還需借助新技術進一步研究。(3)總體分析，堿誘導肌球蛋白去折疊過程中，分子部分展開，表面疏水性隨pH值的升高而增加，靜電相互作用和疏水相互作用導致溶解度增加，而酸誘導肌球蛋白去折疊過程中，在等電點附近表面疏水性較低，在偏離等電點的酸性條件下，表面疏水性增加，而在極端酸性條件下展開的肌球蛋白分子可能會發生折疊；結合溶解度的影響分析，分子在極端酸性條件下的溶解主要受分子降解及靜電相互作用的影響。

2.4pH值對肌球蛋白α-螺旋含量的影響

圖4 三種離子強度下pH值對羅非魚肌球蛋白α-螺旋含量的影響Fig.4 Effect of pH onα-helix content of tilapia myosin at three ionic strength levels

肌球蛋白分子包含球狀頭部和棒狀尾部，棒狀尾部95%是由α-螺旋構成，而球狀頭部含有的α-螺旋結構所占比例較少[23]，因此α-螺旋含量的變化可以反映出棒桿狀尾部的變化。不同離子強度下廣泛pH值對肌球蛋白二級結構的影響用圓二色譜進行表征。在實驗范圍內，在中性和堿性條件下，肌球蛋白的圓二色譜圖在208 nm和222 nm處均出現2個負的特征肩峰譜帶(光譜圖未列出)，這是典型的α-螺旋特征峰，由此計算α-螺旋含量。由圖4可知，3種離子強度下，pH值對可溶性肌球蛋白分子α-螺旋含量的影響與溶解性的變化趨勢類似，等電點pH值附近α-螺旋含量最低，隨著pH值偏離等電點α-螺旋含量升高，堿性條件下α-螺旋先升高后稍微下降。根據DUMETZ等[24]的研究報道，pH值對肌球蛋白α-螺旋含量的影響主要是改變肌球蛋白帶電氨基酸和肌球蛋白表面的α-羥基及α-氨基末端的質子化程度。在等電點附近蛋白分子表面凈電荷接近零，分子的靜電斥力下降導致肌球蛋白發生疏水聚集，肌球蛋白的溶解性和α-螺旋含量下降；而偏離等電點的酸性和堿性條件下，蛋白質所帶凈電荷增加，肌球蛋白逐漸恢復單體狀態，α-螺旋含量上升；但在極端酸性和堿性條件下，蛋白變性增加，α-螺旋含量降低。在0.5 mol/L NaCl溶液中，當pH值由7.0下降到5.5時，靜電作用和氫鍵穩定性的變化導致豬肌球蛋白α-螺旋含量由87.4%下降到15.8%[7]。此外，pH值對肌球蛋白α-螺旋含量的影響也與鹽濃度有關，在中性、堿性和極端酸性(pH 2.0)條件下隨著鹽濃度的增加，肌球蛋白的α-螺旋含量增加，可能與高鹽離子掩蔽蛋白質分子間的靜電斥力，減弱電荷對氫鍵的影響有關。

3 結論

pH值對肌球蛋白溶解度及構象的影響與鹽濃度有關。離子強度增大使肌球蛋白的等電點向酸性方向偏移，高鹽對肌球蛋白的二級結構有保護作用；在中性和高離子強度條件下，羅非魚肌球蛋白重鏈(約200 kDa)和3條輕鏈(約26,21和17 kDa)條帶清晰，分子的穩定性較好；隨著pH值偏離中性環境，肌球蛋白分子結構發生去折疊；堿誘導肌球蛋白去折疊過程中，分子部分展開，靜電相互作用和疏水相互作用導致溶解度增加，肌球蛋白重鏈(MHC)彼此間通過二硫鍵形成聚合物；酸誘導肌球蛋白去折疊過程中，在偏離等電點的酸性條件下，分子部分展開和降解，而極端酸性條件下展開的肌球蛋白分子可能會發生折疊，分子降解及靜電相互作用導致溶解度增加。

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EffectofpHontilapiamyosinsolubilityandconformationunderthreeionicstrengthsolutions

FU Wei-ya1,ZHOU Chun-xia1,2*,ZHU Pan-hong1, ZHENG Hui-na1,2,HONG Peng-zhi1,2,YANG Ping1,2

1 (College of Food Science and Technology,Guangdong Ocean University, Guangdong Provincial Key Laboratory of Aquatic Product Processing and Safety,Zhanjiang 524088,China) 2 (Shenzhen Research Institute of Guangdong Ocean University,Shenzhen 518120,China)

Effect of various pH (2.0-12.0) on solubility of tilapia myosin and surface hydrophobicity, SDS-PAGE and α-helix contents of tilapia myosin were investigated at three ionic strength levels. Results showed that, in the experimental range, with increasing of ionic strength, the isoelectric point of myosin was shifted to acidic pH. In low ionic strength (1 mmol/L KCl), physiological ionic strength (150 mmol/L KCl) and high ionic strength (600 mmol/L KCl) solution, the pH of the minimum solubilities of myosin was 5.5, 5.0 and 4.5 respectively. At extreme acid (pH 2.0) and alkali (pH 11.0-12.0) condition, the solubility of myosin was higher than 80%. Under the neutral and high ionic strength, surface hydrophobicity was low and α-helix content was high and stability of myosin was good. During acid-induced refolding process, lower surface hydrophobicity was observed near the isoelectric point, and surface hydrophobicity increased under the acid condition of deviating from the isoelectric point. However, unfolded myosin might refold partly under extreme acidic conditions, and molecular degradation and electrostatic interactions could lead to the high solubility. During alkali-induced refolding process, the surface hydrophobicity increased with the rising of pH value, the macro-molecular polymer was formed through disulfide bonding between myosin heavy chains. In neutral pH condition, alkaline and extreme acidic conditions, α-helix content increased with the increase of salt concentration, and therefore high salt could protect the secondary structure of myosin. All above results indicated that myosin molecule could be unfolded to an intermediate sate similar to “molten globule” at extreme alkali and high salt condition.

tilapia myosin; pH; ionic strength; unfolding; solubility; conformation

碩士研究生(周春霞副教授為通訊作者，E-mail：chunxia.zhou@163.com)。

國家自然科學基金項目(31201389)；廣東省教育廳科技創新項目(2013KJCX0098)；廣東省省部產學研合作專項(2013A090100009)

2017-02-12，改回日期：2017-03-24

10.13995/j.cnki.11-1802/ts.014028