毛瑞鑫,郭雙生
(中國航天員科研訓練中心人因工程國防科技重點實驗室,北京 100094)
光質對鈍頂螺旋藻放氧效率及抗氧化劑含量影響的研究
毛瑞鑫,郭雙生?
(中國航天員科研訓練中心人因工程國防科技重點實驗室,北京 100094)
為探究光質對螺旋藻放氧效率及抗氧化劑含量的影響規律,從而為CELSS中螺旋藻高效培養光照系統的建立提供理論基礎,開展了鈍頂螺旋藻在紅、藍、綠、黃、白五種LED光質處理下的培養實驗,分析了不同光質對其生長速率、放氧效率和SOD、黃酮、VE、藻藍素和類胡蘿卜素五種抗氧化劑含量的影響規律。實驗結果如下:1)紅光處理下螺旋藻放氧效率可達161.7 mg·L-1·kW-1·h-1,較白光處理提高了32.64%,而黃光、綠光和藍光處理下均低于70 mg·L-1·kW-1·h-1;2)藍光處理下SOD活性、黃酮和VE含量最高,比白光處理分別提高了24.20%、57.45%和35.45%;綠光處理下藻藍素含量最高,可達74.50 mg·g-1。因此,紅光最有利于螺旋藻放氧,可以作為螺旋藻培養光源的主要光質。藍光有利于SOD、黃酮和VE合成,綠光有利于藻藍素合成,可以作為光源的補充光質。
CELSS;螺旋藻;LED光質;放氧效率;抗氧化劑
受控生態生保系統(Controlled Ecological Life Support System,CELSS)是解決長時間、遠距離和多乘員的載人空間飛行、深空探測和星球定居的根本途徑[1]。螺旋藻具有光合效率高、生長繁殖迅速、營養價值高和富含抗氧化劑等特點,可以在CELSS的大氣平衡調控和食物穩定性供給等方面起到重要的補充和應急作用[2-4]。
光照是影響螺旋藻生長發育的限制因子,探究其對不同波段光質的吸收利用能力、優化光源的光質條件,對于螺旋藻高效培養光照系統的建立具有重要意義。研究表明:紅光是螺旋藻生長的高效光質,能顯著促進其生長和放氧活性,提高糖類物質等含量;藍光對螺旋藻生長和繁殖具有顯著抑制作用,但能提高藻蛋白產量;黃光可以被螺旋藻高效利用;綠光不是螺旋藻生長的高效光質,甚至產生抑制作用[5-8]。光質不僅會對光合作用產生直接影響,還會誘發抗氧化系統發生變化,表現在保護酶體系活性(如超氧化物歧化酶、過氧化酶等)以及非酶促體系抗氧化劑(小分子和次生代謝物類抗氧化劑,如抗壞血酸、類黃酮、類胡蘿卜素以及酚酸類等物質)含量的變化。航天員在深空探測任務中面臨的最嚴重問題之一是空間宇宙輻射[9],通過攝入富含藻藍素、類胡蘿卜、黃酮素和維生素E等天然抗氧化劑的螺旋藻可能起到提高免疫力、抗輻射和抗衰老的作用[10-12]。目前,針對光質對螺旋藻抗氧化劑含量的研究還較少。此外,螺旋藻作為生物部件在CELSS中最重要的作用之一是參與大氣平衡調控,光質對其放氧活性及放氧效率的影響是重點研究內容,而目前的研究主要集中在放氧活性方面,對能效比研究較少。因此,本文在紅、黃、藍、綠、白五種LED光質處理下進行鈍頂螺旋藻培養,旨在掌握不同波長光質對螺旋藻光合放氧效率和抗氧化劑含量的影響規律,為篩選螺旋藻高效培養的光質條件打下基礎。
鈍頂螺旋藻(Spirulina platensis,882),由中國科學院水生生物研究所藻類生物學重點實驗室提供。
以氣升式光生物反應器為培養設備,如圖1所示。培養罐中加入3 L培養液和100 mL鈍頂螺旋藻藻液,分別在不同光質處理下進行培養,培養周期7天,重復3次。
1)培養基質:Zarrouk培養基[13]。
2)光照強度:調節光源功率,使各處理反應器中心位置(距燈板20 cm)的光合有效輻射強度(PAR)為2.80 mW/cm2。
3)光質:紅(R,波長為620 nm~630 nm,功率為34.5 W)、藍(B,460 nm~470 nm,42.5 W)、綠(G,520 nm~530 nm,49.3 W)、黃(Y,580 nm~590 nm,60.2 W),以白(W,色溫為6000~6500 K,42.0 W)為對照。
4)攪拌方式:氣升式供氣攪拌,通氣量為0.6 L/min,CO2濃度為500 ppm。
5)培養溫度:25℃。
6)光周期:為23 h(亮)/1 h(暗)(每天暗處理1 h進行光合放氧活性測定)。
1)生長測定:每隔24 h,用UV-2300型紫外可見分光光度計測定波長為560 nm下藻液的吸光度(A560),以吸光度值代表藻液濃度。
2)干重測定:取100 mL藻液,采用已烘干至恒重的濾紙過濾,蒸餾水沖洗3次,藻體連同濾紙取出后于105℃下烘干3 h至恒重,求螺旋藻干重(g·L-1)。
3)類胡蘿卜素和藻藍素含量測定:取5 mL藻液離心(12 000 r/min,4℃),棄上清液,分別用90%丙酮和0.1 mol·L-1磷酸緩沖液(pH 7.8),提取測定類胡蘿卜素和藻藍素的含量(mg·g-1)[14]。
4)黃酮含量測定:稱取蘆丁10.0 mg,用60%乙醇完全溶解,50 mL的容量瓶中定容,得到0.2 mg·mL-1蘆丁對照品溶液。稱取烘干(50℃,3 h)樣品100 mg,加入HCl∶乙醇=1∶25,定容至10.0 mL,超聲15 min,參照Ren[15]的方法進行測定(mg·g-1)。
5)超氧化物歧化酶(SOD)和VE測定:取10 mL藻液離心(12 000 r/min,4℃),棄上清液,使用南京建成生物工程研究所試劑盒測定分別測定SOD(U·g-1)和VE(μg·g-1)的含量。
6)放氧效率測定:將過濾的新鮮藻絲體置于錐形瓶中,用Zarrouk培養基稀釋A560為0.8左右。暗處理0.5 h消耗藻液中的溶解氧后,繼續在該光質下培養1 h,測定溶解氧增量,計算放氧效率(mg·L-1·kW-1·h-1)。
7)光合放氧活性測定:每天于固定時間關閉光源1 h消耗藻液中的溶解氧后,繼續光照培養,同時用在線式溶氧儀測定藻液的光合放氧活性(mg·L-1·h-1)。
8)統計分析:采用SPSS軟件的AVONA程序進行分析,并對不同處理的平均值進行多重比較(Duncan,顯著性檢驗差異值P=0.05),以P<0.05和P<0.01作為統計學顯著和極顯著意義。兩組數據后標注相同字母表示兩個處理間不存在顯著性差異,兩組數據后標注不同字母時表示兩個處理間存在顯著性差異。
實驗中,以藻液在波長為560 nm下的吸光度(A560)和第7 d的螺旋藻干重表征其生長速率,如圖2和圖3所示。從圖2中可以看出:白光、紅光和黃光處理下的藻液吸光度變化接近,都能實現快速增殖且第7 d的A560達到2.0以上;綠光處理下螺旋藻生長緩慢;藍光處理下生長最慢,最終A560不超過0.7。干重方面:紅光處理下干重最高,達到1.12 g·L-1,比白光處理提高11.78%;黃光處理干重比白光處理減少9.34%;綠光和藍光處理下螺旋藻干重顯著減少,分別為0.45 g·L-1和0.30 g·L-1,比白光處理分別減少了57.94%和71.78%。可見,紅光是螺旋藻生長和干物質積累最高效的光質,螺旋藻對黃光的利用能力較高,而對綠光和藍光的利用能力較低。
螺旋藻等微藻的光能利用率可達20%,是普通高等植物的十倍以上,其作為CELSS的生物部件最重要的功能之一就是吸收CO2、再生O2。實驗中,研究了不同光質對藻液放氧活性和放氧效率的影響,如圖4和圖5所示。
從圖4可以看出,隨著培養時間的延長和藻液濃度的升高,藻液的放氧活性總體呈現先升高后降低的趨勢。一定范圍內,藻液濃度越高,可進行光合作用的藻絲體數量越多,藻液的放氧活性越高。然而,藻液在培養后期的放氧活性逐漸降低,這可能與光衰減和基質中的碳源含量降低等因素有關。藻液放氧活性最高的是紅光處理,可達6.05 mg·L-1·h-1,白光和黃光次之,綠光和藍光處理放氧活性較低,最高放氧量不超過3.5 mg·L-1·h-1。這一趨勢與干重基本一致:干重越高,該處理條件下的放氧活性越強。可以看出,螺旋藻生長越快、干重越高,光能利用越高,物質合成能力越強,放氧活性越強。放氧效率是單位功耗所能產生的氧氣量,其結果與放氧活性和功率兩方面因素有關。從圖5可以看出,消耗等量電能的情況下,放氧效率最高,即能效比最高的是紅光,達到161.7 mg·L-1·kW-1·h-1,比白光處理提高32.64%,而黃光、綠光和藍光的放氧效率較低,均不超過70 mg·L-1·kW-1·h-1。
螺旋藻富含超氧化物歧化酶(SOD)、維生素E(VE)、黃酮(Fla)、藻藍素(Phy)和類胡蘿卜素(Car)等多種生物活性物質,其抗氧化特性與許多化學抗氧劑相比,具有廉價易得、無不良反應等優勢。探究光質對螺旋藻抗氧劑含量的影響,對于高品質螺旋藻培養光照系統的建立有重要意義。不同光質處理下螺旋藻的SOD、黃酮、維生素E、類胡蘿卜素和藻藍素的含量如表1所示。
表1 不同光質處理下螺旋藻抗氧化劑含量(±s,n=3)Table 1 Antioxidant composition of Spirulina platensis under different light treatments(±s,n=3)

表1 不同光質處理下螺旋藻抗氧化劑含量(±s,n=3)Table 1 Antioxidant composition of Spirulina platensis under different light treatments(±s,n=3)
注:??表示P<0.01。
SOD??/U·g-11 135±28d1 283±75e858±56b663±20a1033±31c Fla??/mg·g-112.52±0.38b16.28±0.97d16.15±0.55d13.90±2.34c10.34±0.35a VE??/μg·g-1112.8±9.9c128.0±13.5d108.1±3.0bc109.0±10.5ab94.5±2.2a Phy??/mg·g-162.26±1.71a49.80±1.97b74.50±4.96c61.51±2.08a63.15±1.39a Car??/mg·g-12.07±0.04a0.94±0.09b1.87±0.10c1.39±0.16d1.73±0.09c
可以看出,光質對螺旋藻的五種抗氧化劑含量都有顯著影響。抗氧化酶系方面,SOD是生物體內清除自由基的首要物質,對于提高人體免疫力、抗輻射、抗衰老等都有重要作用。和白光處理相比,藍光處理下SOD活性提高了24.20%,紅光處理下提高了9.87%,而綠光和黃光處理分別減少16.94%和35.82%。可見,藍光可以大幅提高螺旋藻的SOD活性。非酶促體系抗氧化劑方面,黃酮和VE都是很強的抗氧化劑,類胡蘿卜素和藻藍素除作為光合色素的功能外,也具有抗氧化和抗衰老的作用,且這幾種物質在螺旋藻中含量很高,尤其是類胡蘿卜素和藻藍素。和白光相比,各單色光處理的黃酮和VE含量都有所提高,其中藍光處理下最高,分別提高了57.45%和35.45%。然而,藍光處理下藻藍素和類胡蘿卜素的含量最低,和白光處理相比分別減少了21.14%和45.66%,這可能與其作為光合色素的功能有關。紅光、黃光和白光的藻藍素含量相對接近,但綠光藻藍素含量達到74.50 mg·g-1,比白光處理提高17.74%。紅光處理下類胡蘿卜素含量最高,比白光處理提高19.65%。總體來看,藍光能顯著促進SOD、黃酮和VE的合成,但不利于藻藍素和類胡蘿卜素的合成;綠光有利于藻藍素合成;紅光有利于類胡蘿卜素合成。
紅光最有利于螺旋藻生長和干物質積累,螺旋藻對黃光的利用能力較高,而對綠光和藍光的利用能力較差,該結果與Markou等[6-8]的結果基本一致。然而,Madhyastha等[16-17]發現,螺旋藻在綠光和藍光處理下的生物量很高,分析認為,其單色光質不純、光譜范圍較寬、藻種等因素可能是導致實驗結果不同的主要原因。此外,和其他研究結果對比來看,本實驗中紅光與黃光和白光相比,吸光度變化沒有絕對的優勢,可能與光照強度較高有關。另外,紅光與黃光和白光的吸光度變化雖然接近,但干重仍然存在差異,可能與兩方面原因有關[18]。藻液的吸光度只能代表該處理下藻絲體的相對數量,其數值還與藻絲體形態和色素組成等因素有關,光質能夠影響藻絲體的形態建成和色素組成,如紅光會誘導藻絲體變長[14]和葉綠素a等光合色素含量減少[6]。另一方面,光質能夠影響螺旋藻的物質合成,如紅光能顯著促進糖類和脂質合成,而短波長光質更有利于蛋白質合成。因此,雖然紅光與白光和黃光的藻液吸光度接近,但其藻絲體的數量、長度和細胞內蛋白質等物質的含量仍有較大差異,進而導致其產量的不同。
實驗表明,螺旋藻光能利用效率越高,生長越快、干重越高,光合放氧活性越強。螺旋藻在紅光、白光和黃光處理下都具有較高的放氧活性,而在藍光和綠光處理下放氧活性較低。然而,張愛琴[8]認為藍光處理下的螺旋藻的放氧活性較高,黃光處理下生長的藻的放氧活性較低,其入射光波段較寬、光質不純可能是實驗結果不同的主要原因。
此外,光合放氧活性高,但放氧效率并不一定高。紅光是光合放氧效率最高的光質,其藻液的放氧活性最高,且功率最低,僅為34.5 W。黃光處理的放氧活性雖然較高,但功率達到60.2 W,導致其放氧效率較低。因此,結合放氧效率來看,雖然黃光也有利于螺旋藻的生長和光合放氧,但功耗較高,不應作為光源的主要光質,應采用紅光。Wang[7]通過分析單位功耗的螺旋藻產量也有一致的結論。
藻液放氧活性總體呈現出先升高后降低的趨勢,這是由于光照系統為外照光源且直接照射到反應器表面,光衰減效應會隨藻液濃度的升高不斷變強[19-20],從而導致光能利用率逐漸降低。此外,實驗中主要以Zarrouk培養基中的碳酸鹽為碳源,其pH值調節受與組成的緩沖體系影響。隨著藻液濃度升高和碳源的不斷消耗,pH的升高和碳源的不足也制約了螺旋藻的光合作用,進而導致其放氧活性不斷降低[21]。
首先,藍光能顯著提高螺旋藻的SOD、黃酮和VE的含量,提高其抗氧化能力。李倩[22]的研究也發現,與同等光合有效輻射(PAR)的白光相比較,白光輔助藍光(WB)處理的生菜葉片SOD活性顯著升高。藍光雖然在基因表達和物質合成中有重要作用,但作為單一光源照射時,由于具有較高的能量,極易造成藍光損傷[23-24]。因此,細胞通過合成更多的抗氧化劑以減少光脅迫。
其次,紅光能促進類胡蘿卜素的合成。Wu等[25]在紅藍LED光源對豌豆苗抗氧化活性的影響研究中也發現,紅光能夠明顯的增加β-胡蘿卜素的含量,這可能與其在光系統中的作用有關,而相關機理還有待研究。
另外,綠光處理下螺旋藻的生長較差,但藻藍素含量很高,達到74.5 mg·g-1,而藍光處理下藻藍素含量最低,這可能與其作為光合色素在光合作用中的功能有關。綠光不是螺旋藻生長的高效光質,作為單一光源時主要依靠藻藍素吸收傳遞,為了最大限度地利用綠光,細胞合成更多的藻藍素從而提高對綠光的吸收利用,而藍光處理下為減少對藍光的吸收利用,需要維持較低的含量。
因此,為了更好地提升螺旋藻抗氧化劑的產量和品質,應該以紅光作為光源的主要光質,結合一定劑量的藍光和綠光,最大限度地提高SOD、類胡蘿卜素、藻藍素、黃酮和VE等抗氧化劑的含量。
光質對于螺旋藻的生長、放氧效率和抗氧劑含量都有顯著影響。紅光能促進類胡蘿卜素的合成,是螺旋藻生長和放氧效率最高的光質,可以作為光源的主要光質;藍光可以大幅提高SOD、黃酮和VE等抗氧化劑含量,提升螺旋藻產品品質,可以作為光源的補充光質;綠光可以促進藻藍素合成,提高其對光質的利用能力,可以作為光源的補充光質;黃光能效比低,不適合作為光源的主要光質。
下一步工作中,應進行紅光、藍光和綠光等多種組合光質的研究,發揮單色光質間的協同作用,篩選出螺旋藻培養的高效光質組合及配比,為螺旋藻生物部件光照系統的建立奠定良好基礎。
(References)
[1] 郭雙生,吳志強,高峰,等.中國受控生態生保技術研究進展與展望[J].載人航天,2016,22(03):269-280.Guo S,Wu Z Q,Gao F,et al.Progress and prospect of con-trolled ecological life support technology in China[J].Manned Spaceflight,2016,22(03):269-280.(in Chinese)
[2] Li M,Hu D,Liu H,et al.Chlorella vulgaris culture as a regulator of CO2in a bioregenerative life support system[J].Advances in Space Research,2013,52(4):773-779.
[3] 楊玉楠,王玉珂.生物再生式生命保障系統中微藻應用研究進展[J].航天醫學與醫學工程,2015,28(05):384-390.Yang Y N,Wang Y K.Application and advance of microalgae in bioregenerative life support system:A review[J].Space Medicine&Medical Engineering,2015,28(05):384-390.(in Chinese)
[4] 王高鴻,陳蘭洲,胡春香,等.空間飛行和輻射對微藻光合系統影響的觀察[J].航天醫學與醫學工程,2005,18(06):437-441.Wang G H,Chen L Z,Hu C X,et al.Studies on effects of spaceflight and irradiation on photosyn-thetic system of microalgae1[J].Space Medicine&Medical Engineering,2005,18(06):437-441.(in Chinese)
[5] Chen C,Yeh K,Aisyah R,et al.Cultivation,photobioreactor design and harvesting of microalgae for biodiesel production:A critical review[J].Bioresource Technology,2011,102(1):71-81.
[6] Markou G.Effect of various colors of Light-Emitting Diodes(LEDs)on the biomass composition of arthrospira platensis cultivated in semi-continuous mode[J].Applied Biochemistry and Biotechnology,2014,172(5):2758-2768.
[7] Wang C,Fu C,Liu Y.Effects of using light-emitting diodes on the cultivation of Spirulina platensis[J].Biochemical Engineering Journal,2007,37(1):21-25.
[8] 張愛琴,姜泉,謝小軍,等.不同光質對鈍頂螺旋藻生長和放氧放氫活性的影響[J].植物生理學通訊,1989,67(04):23-26.Zhang A Q,Jiang Q,Xie X J,et al.Effects of light quality on growth and photosynthetic oxygen and hydrogen evolution of Spirulina platensis[J].Plant Physiol Commun,1989,67(04):23-26.(in Chinese)
[9] 任錦,郭雙生,沈韞賾.LED光質對紫背天葵揮發油和酚類成分積累的影響[J].載人航天,2014,20(04):386-392.Ren J,Guo S,Shen Y Z.Effects of LED light quality on the accumulation of essential oils and phenols in gynura bicolor DC[J].Manned Spaceflight,2014,20(04):386-392.(in Chinese)
[10] Shukitthale B,Carey A N,Jenkins D,et al.Beneficial effects of fruit extracts on neuronal function and behavior in a rodent model of accelerated aging[J].Neurobiology of Aging,2007,28(8):1187-1194.
[11] 陳斌,周熙成.天然抗氧化劑對空間輻射的防護作用[J].航天醫學與醫學工程,2003,16(S1):514-518.Chen B,Zhou C X.Protective effect of natural dietary antioxidants on space radiation-induced damages[J].Space Medicine&Medical Engineering,2003,16(S1):514-518.(in Chinese)
[12] Amir A B,Ghobadi S.Studies on oxidants and antioxidants with a brief glance at their relevance to the immune system[J].Life Sciences,2016,146:163.
[13] Zarrouk C.Contribution a L‘etude D’une Cianophycee:Influence de Divers Facteurs Physiques Et Chimiques Sur la Croissance Et la Photosynthese de Spirulina Maxima(Setch.Et Garndner)Geitler[M].Faculte des Sciences,Universite de Paris,1966.
[14] 夏蕊琪.光照強度對螺旋藻形態及生理的影響[D].合肥:安徽農業大學,2013.Xia R Q.Effects of Light Intensity on Spirulina Morphological and Physiological of Spirulina Platensis[D].Hefei:Anhui Agricultural University,2013.(in Chinese)
[15] Ren J,Guo S,Xu C,et al.Effects of different carbon dioxide and LED lighting levels on the anti-oxidative capabilities of Gynura bicolor DC[J].Advances in Space Research,2014,53(2):353-361.
[16] Madhyastha H K,Vatsala T M.Pigment production in Spirulina fussiformis in different photophysical conditions[J].Biomolecular Engineering,2007,24(3):301-305.
[17] Ravelonandro P H,Ratianarivo D H,Joannis Cassan C,et al.Influence of light quality and intensity in the cultivation of Spirulina platensis from Toliara(Madagascar)in a closed system[J].Journal of Chemical Technology and Biotechnology,2008,83(6):842-848.
[18] Schulze P S C,Barreira L A,Pereira H G C,et al.Light emitting diodes(LEDs)applied to microalgal production[J].Trends in Biotechnology,2014,32(8):422-430.
[19] 陳智杰,姜澤毅,張欣欣,等.微藻培養光生物反應器內傳遞現象的研究進展[J].化工進展,2012,33(07):1407-1413.Chen Z J,Jiang Z Y,Chen X,et al.Research progress of transport phenomena within photobioreactor for microalgae culturing[J].Chem Ind Eng Prog,2012,33(07):1407-1413.(in Chinese)
[20] Cornet J F,Dussap C G,Gros J B.Conversion of radiant light energy in photobioreactors[J].AIChE journal,1994,40(6):1055-1066.
[21] 陸建學,么宗利,夏連軍,等.碳酸鹽堿度對鈍頂螺旋藻生長的影響[J].生物學雜志,2011,28(04):43-46.Lu J X,Mo Z L,Xia L J,et al.Effects of the different carbonate alkalinity concentrations on growth of Spirulina platensis[J].Journal of Biology,2011,28(04):43-46.(in Chinese)
[22] 李倩.光質對生菜、丹參生長和次生代謝物的影響[D].西安:西北農林科技大學,2010.Li Q.Effects of Light Quality on Growth and Phy tochemical Accumulation of Lettuce and Salvia and Salvia Miltiorrhiza Bunge[D].Xi’an:Northwest A&F University,2010.(in Chinese)
[23] Kowallik W.Blue light effects on respiration[J].Plant Biology,1982,33(4):51-72.
[24] Ruyters,Günter.Effects of blue-light on pyruvate kinase activity during chloroplast development of unicellular green algae[J].Photochemistry&Photobiology,2008,35(2):229-231.
[25] Wu M C,Hou C Y,Jiang C M,et al.A novel approach of LED light radiation improves the antioxidant activity of pea seedlings[J].Food Chemistry,2007,101(4):1753-1758.
Study on Effects of Light Quality on Oxygen Evolving Efficiency and Antioxidant Content in Spirulina Platensis
MAO Ruixin,GUO Shuangsheng?
(National Key Laboratory of Human Factors Engineering,China Astronaut Research and Training Center,Beijing 100094,China)
A spirulina platensis cultivation experiment was performed under five different LED light qualities including red,blue,green,yellow and white to study the effects of light quality on the oxygen evolving efficiency and the antioxidant content in spirulina.The growth index,the oxygen evolving efficiency,and the contents of SOD,flavonoids,VE,phycocyanin and carotenoid of Spirulina platensis were measured and analyzed.The results were as follows:1)Oxygen evolving efficiency under red light treatment was 161.7 mg·L-1·kW-1·h-1,which was 32.64%higher than the white.However,the efficiency under yellow,green and blue light were all less than 70 mg·L-1·kW-1·h-1.2)SOD,flavonoids and VEwere highest with blue light treatment,which increased by 24.20%,57.45%and 35.45%respectively as compared with the white light.Phycocyanin was 74.50 mg·g-1with green light treatment which was the highest.It is concluded that the red light is the most efficient light quality for oxygen evolving,and can be used as the main light quality of light source for spirulina culture;Blue light is conducive to the synthesis of SOD,flavonoids and VE,and green light is beneficial to the synthesis of phycocyanin;Blue light and green light can be applied as the supplementary light.
CELSS;spirulina;LED light quality;oxygen evolving efficiency;antioxidant content
Q693
A
1674-5825(2017)06-0835-06
2016-10-17;
2017-09-06
載人航天預先研究項目(040201);人因工程國防科技重點實驗室基金(SYFD160051805)
毛瑞鑫,男,碩士研究生,研究方向為受控生態生保技術。E-mail:MRXSYZF@163.com
?通訊作者:郭雙生,男,博士,研究員,研究方向為受控生態生保技術。E-mail:guoshuangsheng@sina.com
(責任編輯:康金蘭)