韋坤華,徐建平,蔡錦源,李林軒,繆劍華,高文遠
(1.天津大學藥物科學與技術學院,天津 300072;2.廣西藥用植物園/廣西藥用資源保護與遺傳改良重點實驗室,廣西南寧 530023;3.廣西科技大學鹿山學院,廣西柳州 545616;4.包頭醫學院,內蒙古包頭 014060)
白花蛇舌草(HedyoticdiffusaWilld.)為茜草科耳草屬一年生草本植物。全草入藥,味苦、甘,性寒。具有清熱解毒、利濕之功效,用于治療肺熱喘嗽、毒蛇咬傷、咽喉腫痛等疾病[1]。白花蛇舌草廣泛分布于亞熱帶地區,主產于我國福建、廣東、江西、浙江、湖南等地,云南、貴州及四川南部亦有大量分布[2]。化學研究表明,白花蛇舌草中主要含有萜類、蒽醌類、黃酮類、揮發油類、苯丙素和香豆素類、甾醇類、含酸化合物、多糖類化合物,其中萜類為白花蛇舌草的主要成分[3-4]。現代藥理研究發現,白花蛇舌草具有抗氧化、抗腫瘤、增強免疫、神經保護等多種藥理作用[5-10],具有重要的開發應用價值。
近年來,由于使用量增加,白花蛇舌草資源不斷枯竭,產量難以滿足市場需求。且在人工栽培種植過程中發現白花蛇舌草極易混入傘房花耳草等偽品植株,造成藥材品質下降。為了解決白花蛇舌草種源純化問題,筆者在前人研究[11-12]的基礎上,采用正交試驗設計,優化白花蛇舌草組織培養快速繁殖體系。同時,在研究過程中,發現白花蛇舌草不同部位在離體條件下較為容易再生獲得植株,因此,本研究也采用正交試驗設計對白花蛇舌草不同外植體的植株再生及培養體系進行篩選、優化,建立了不同外植體的快速繁殖培養體系,為其離體快繁技術的建立提供參考依據。
材料采自廣西壯族自治區藥用植物園,為野生白花蛇舌草的種子,種子播種于MS基本培養基,發芽后獲得無菌苗,再選取無菌苗的不同部位進行叢生芽誘導培養,最后對叢生芽進行生根培養。
1.2.1 種子消毒 取白花蛇舌草的成熟未開裂果實,依次用2%(體積分數)洗潔精水溶液浸泡5 min,線狀自來水沖洗15~30 min,用75%的乙醇滅菌15 s,無菌水沖洗1遍,再置于添加了2~3滴吐溫-20的0.1%(體積分數)氯化汞溶液中消毒9 min,無菌水沖洗3~5次,每次浸洗2 min,無菌濾紙吸干外植體表面的水分后,在無菌操作臺上將果實撥開,將種子接種于MS空白培養基上培養促進種子萌發。培養條件為光照度1 500~2 000 lx,光照時間12 h/d,溫度(26±2)℃。
1.2.2 試驗培養基設計 試驗采用正交試驗進行,以MS為基本培養基,應用正交表L9(34),對6-BA、KT和IAA等3個因素的3個水平設計正交試驗培養基。正交試驗的激素水平見表1。

表1 正交試驗因素水平
1.2.3 不同外植體的處理 將種子萌發后的嫩芽接種到添加0.5 mg/L 6-BA的MS培養基上培養,培養條件為光照度1 500~2 000 lx,光照時間12 h/d,溫度(26±2)℃。獲得足夠數量的叢生芽后,分別選取叢生芽的3個不同部位(帶芽莖段、幼嫩葉片、不帶芽莖段)作為外植體進行正交試驗。
帶芽莖段:切下1 cm的頂芽或帶1個腋芽的莖段,插入到培養基上培養,插入深度0.3~0.4 cm;幼嫩葉片:切取長約0.5 cm、寬度基本一致的幼嫩葉片,在葉片上用解剖刀輕輕劃2道傷口后,平鋪到培養基表面培養;不帶芽莖段的處理:選取幼嫩莖段,切取長度約0.5 cm的節間部分,平鋪到培養基表面培養。
1.2.4 材料培養及數據統計 每個試驗處理4瓶,每瓶接種5個外植體,培養條件為光照度1 500~2 000 lx,光照時間 12 h/d,溫度(26±2)℃,培養室中培養30 d后測定試管苗平均生長率和芽增殖系數。其中平均生長率=(30 d后材料質量-接種時材料質量)/接種時材料質量;平均芽增殖系數=(30 d后芽數-接種時材料數)/接種時材料數。
前期研究發現白花蛇舌草的外植體在無菌組培條件下較容易獲得叢生芽。為了明確不同激素組合對白花蛇舌草的帶芽莖段增殖的影響,本研究將1 cm的頂芽或帶1個腋芽的莖段,接種到正交試驗培養基中,每天觀察記錄接種材料的變化。結果發現,培養5 d開始,接觸培養基的切口部位開始膨大形成疏松愈傷組織,之后逐漸形成胚性愈傷,到11~13 d可明顯觀察到接觸培養基的切口部位形成叢生芽團,并長出少量成型叢生芽(圖1)。但不接觸培養基部分的腋芽或頂芽伸長,未見分化形成叢生芽。

對帶芽莖段培養的正交試驗結果見表2至表4。平均生長率結果來看,白花蛇舌草帶芽莖段培養30 d后,平均生長率在4.7~7.6倍之間。直觀分析結果發現,3種外源激素對帶芽莖段培養的平均生長率影響順序為A(6-BA)>C(KT)>B(IAA),且3種激素均表現出低濃度促進生長,但濃度過高均抑制平均生長率的進一步增高。方差分析結果發現,3種激素對白花蛇舌草帶芽莖段的平均生長率均具有顯著影響,F值分別為44.33、36.33和25.58。根據平均生長率的分析結果,確定帶芽莖段增殖的最佳培養基外源激素配方為A2B2C2,即MS+1.5 mg/L 6-BA+0.3 mg/L IAA+0.3 mg/L KT。
由芽的平均增殖系數結果可發現,白花蛇舌草帶芽莖段培養的平均芽增殖系數均在23倍以上。直觀分析結果發現,3種外源激素對葉片培養芽增殖系數影響順序為A(6-BA)>C(KT)>B(IAA),其中6-BA濃度的提高有利于促進帶芽莖段培養材料叢生芽的增殖,而適度增加IAA和KT濃度可促進叢生芽的增殖,但濃度過高具有抑制作用。方差分析結果表明,3種激素均對帶芽莖段培養材料均無顯著影響,P值均>0.1。但不同培養基上的芽增殖系數差異較大,最低的芽增殖系數為23.2倍,而最高的芽增殖系數為46.2倍。根據平均芽增殖系數的分析結果,確定帶芽莖段增殖的最佳培養基外源激素配方為A3B2C2,即MS+2.5 mg/L 6-BA+0.3 mg/L IAA+0.3 mg/L KT。

表2 白花蛇舌草莖段培養正交試驗結果與直觀分析

表3 白花蛇舌草帶芽莖段培養平均生長率方差分析

表4 白花蛇舌草帶芽莖段培養芽增殖系數方差分析
根據上述分析結果,3種外源激素對帶芽莖段培養材料的平均生長率具有顯著影響,對芽增殖系數沒有顯著影響,較高濃度下,芽的增殖系數也較高。在試驗過程中還發現,帶芽莖段培養的材料中,接種的母芽很少分化形成叢生芽,僅為頂芽抽長或長出少量腋芽,而且培養材料容易出現葉片黃化、老化的現象。而接觸培養基的切口部位長出的新的叢生芽由于生長空間限制,長勢不一致,不利于實際生產利用。因此根據結果分析與材料的實際生長狀況,確定嫩芽或腋芽增殖的最佳培養基外源激素配比為A2B2C2,即MS+1.5 mg/L 6-BA+0.3 mg/L IAA+0.3 mg/L KT。
在進行帶芽莖段培養的過程中,發現接觸培養基的幼嫩葉片出現膨大,并形成叢生芽的現象。為了驗證這一現象,并探討不同外源激素組合對白花蛇舌草葉片培養的影響,本研究將白花蛇舌草的無菌幼嫩葉片外植體接入不同激素不同水平的MS培養基,觀察記錄其生長發育情況。結果發現白花蛇舌草葉片培養的成芽率為100%,所有培養葉片均膨大形成疏松愈傷組織,再形成胚性愈傷,繼而形成叢生芽簇。幼嫩葉片在培養基上培養4~6 d開始從切口部位出現不同程度的蜷曲膨脹,6 d開始在膨大部位長出翠綠色成簇的不定芽點,10 d時不定芽分化更為明顯,高約0.5 cm,呈翠綠色,且向無切口部位擴大,之后逐漸形成叢生芽簇(圖2)。

30 d后統計葉片外植體的平均生長率與芽增殖系數,結果見表5見表7。根據平均生長率結果,白花蛇舌草葉片外植體培養30 d后,最低的平均生長率為4.1倍,最高的平均生長率為8.1倍。平均生長率的直觀分析結果發現,3種外源激素對葉片培養平均生長率的影響順序為B(IAA)>C(KT)>A(6-BA),其中6-BA濃度增加,抑制平均生長率的提高,IAA濃度的增加可促進平均生長率的提高,而適度增加KT濃度可提高平均生長率,但濃度過高具有抑制作用。方差分析發現3種激素均對葉片的增殖具有影響,F值分別為10.11、43.00和21.44。根據平均生長率的分析結果,確定葉片增殖的最佳培養基外源激素配方為A1B3C2,即MS+0.5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L IAA+0.3 mg/L KT。
根據芽的平均增殖系數結果,白花蛇舌草葉片外植體培養的平均芽增殖系數均在25倍以上。直觀分析結果發現,3種外源激素對葉片培養芽增殖系數影響順序為A(6-BA)>C(KT)>B(IAA),其中6-BA和IAA濃度的提高有利于葉片培養材料叢生芽的增殖,而適度增加KT濃度可促進葉片培養材料叢生芽的增殖,但濃度過高具有抑制作用。方差分析發現,3種激素均對葉片培養無顯著影響,P值均>0.1。但不同培養基上的芽增殖系數差異較大,最低的芽增殖系數為25.3倍,而最高的芽增殖系數為54.5倍。根據平均芽增殖系數的分析結果,確定葉片增殖的最佳培養基外源激素配方為A3B3C2,即MS+2.5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L IAA+0.3 mg/L KT。
上述分析結果表明,3種外源激素對葉片培養的平均生長率具有顯著影響,對芽增殖系數沒有顯著影響,且芽的增殖系數隨著激素濃度的增加而增加。但在本試驗過程中發現,葉片培養材料的芽增殖系數增加到一定程度后,由于生長空間不足,容易造成叢生芽纖細、黃化等現象,培養時間稍微延長容易出現枯死,不利于種苗的工廠化生產。因此根據結果分析與材料的實際生長狀況,確定葉片增殖的最佳培養基外源激素配比為A1B3C2,即MS+0.5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L IAA+0.3 mg/L KT。在此培養條件下,平均生長率約為7.5倍,芽增殖系數約為40倍,材料生長狀況良好,叢生芽粗壯,色澤翠綠。

表5 白花蛇舌草葉片培養正交實驗結果與直觀分析

表6 白花蛇舌草葉片培養平均生長率方差分析

表7 白花蛇舌草葉片培養芽增殖系數方差分析
為了拓展外植體來源,為其他材料的組織培養,尤其是珍稀瀕危物種的組織培養提供技術依據,本研究還考察了不同激素組合對白花蛇舌草節間不帶芽莖段培養的影響。結果發現,白花蛇舌草不帶芽的莖段培養成芽率為100%,所有培養莖段均從兩端切口處膨大形成疏松愈傷組織后形成胚性愈傷,繼而形成叢生芽簇。根據試驗記錄,莖段在培養基上培養3~4 d開始從切口部位出現不同程度的膨大,10~12 d觀察到莖段兩端長出大量叢生芽(圖3)。
30 d后統計莖段外植體的平均生長率與芽增殖系數,結果見表8至表10。根據平均生長率結果,白花蛇舌草莖段外植體培養30 d后,最低的平均生長率為4.6倍,最高的平均生長率為9.4倍。從平均生長率的直觀分析結果發現,3種外源激素對葉片培養芽增殖系數影響順序為A(6-BA)> B(IAA)> C(KT),其中6-BA濃度的提高可顯著提高莖段培養材料的平均生長率,范圍值R為3.77,而IAA與KT濃度的提高對莖段培養平均生長率的影響不大,范圍值R分別為0.80和0.27。方差分析發現6-BA對莖段培養的平均生長率具有顯著影響,而IAA和KT無顯著影響。根據平均生長率的分析結果,確定莖段增殖的最佳培養基外源激素配方為A3B2C2,即MS+2.5 mg/L 6-BA+0.3 mg/L IAA+0.3 mg/L KT。


表8 白花蛇舌草不帶芽莖段培養正交實驗結果與直觀分析

表9 白花蛇舌草不帶芽莖段培養平均生長率方差分析

表10 白花蛇舌草不帶芽莖段培養芽增殖系數方差分析
根據芽的平均增殖系數結果,發現白花蛇舌草莖段外植體培養的平均芽增殖系數均在23.9倍以上。直觀分析發現,3種外源激素對葉片培養芽增殖系數影響順序為A(6-BA)>C(KT)>B(IAA),其中6-BA濃度的提高可顯著提高莖段培養材料的芽增殖系數,范圍值R為9.53;適度的IAA濃度可提高莖段材料的芽增殖系數,但濃度過高具有抑制作用;KT濃度的增加對莖段培養材料的影響不具有規律性,試驗中表現為較低與較高濃度均能提高培養材料的芽增殖系數。方差分析發現3種激素對葉片培養均無顯著影響,P值均>0.1。但不同培養基上的芽增殖系數差異較大,最低的芽增殖系數為23.9倍,而最高的芽增殖系數為45.0倍。根據平均芽增殖系數的分析結果,確定葉片增殖的最佳培養基外源激素配方為A3B2C3,即MS+2.5 mg/L 6-BA+0.3 mg/L IAA+0.5 mg/L KT。
上述分析結果表明,6-BA對莖段培養的平均生長率具有顯著影響,對芽增殖系數沒有顯著影響,IAA與KT對莖段培養的平均生長率和芽增殖系數均無顯著影響,但較高濃度的激素組合獲得較高的芽增殖系數。在試驗過程中觀察發現,莖段培養獲得的叢生芽長勢較為均一,色澤翠綠,植株健壯,是比較理想的工廠化生產材料。因此根據結果分析與材料的實際生長狀況,確定莖段培養的最佳培養基外源激素配比為A3B2C2,即MS+2.5 mg/L 6-BA+0.3 mg/L IAA+0.3 mg/L KT。在此培養條件下,平均生長率約為9.0倍,芽增殖系數約為40倍,材料生長狀況良好,叢生芽粗壯,色澤翠綠。
在體外培養條件下,白花蛇舌草的芽、幼嫩葉片與不帶芽莖段均適用于叢生芽的誘導培養,均可培養獲得大量叢生芽,且成芽率均達100%。但不同來源的外植體培養效果并不相同,幾乎所有叢生芽均是通過接觸培養基的切口部位萌動形成愈傷組織后再生形成叢生芽。嫩芽或帶腋芽嫩莖培養的材料,不接觸培養基部分往上延伸,但不分化形成叢生芽,頂部材料容易枯黃,而基部材料由于空間限制,叢生芽長勢不均一,難以獲得優質材料。以幼嫩葉片或不帶芽嫩莖為外植體培養的材料,獲得的叢生芽長勢較為均一,顏色翠綠新鮮,成苗質量較好,但需要控制叢生芽增殖系數,以免增殖系數過高,獲得的叢生芽缺少生存空間而出現黃化等現象。
不同的激素組合對白花蛇舌草外植體培養的影響不同,嫩芽或腋芽培養的最佳培養基激素配比為MS+1.5 mg/L 6-BA+0.3 mg/L IAA+0.3 mg/L KT;以幼嫩葉片為外植體培養的最佳培養基激素配比為MS+0.5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L IAA+0.3 mg/L KT;以莖段為外植體培養的最佳培養基激素配比為MS+2.5 mg/L 6-BA+0.3 mg/L IAA+0.3 mg/L KT。但綜合考慮整體試驗結果,3種材料的最適 6-BA 濃度均不相同,表明對3種不同外植體培養產生的不同影響主要來源為6-BA。
數據分析發現,白花蛇舌草不同外植體培養材料的平均生長率與芽增殖系數之間并不存在線性關系,平均增長率高的試驗組,芽增殖系數并不一定高,反之亦然。因此,在進行最佳培養條件確定時,需要綜合材料的培養狀況,選擇適宜生產最優質培養材料的培養方案。
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