(北京市理化分析測試中心,有機材料檢測技術與質量評價北京市重點實驗室,北京市科學技術研究院分析測試技術重點實驗室,北京 100094)
苜蓿(Medicagosativa)為多年生豆科草本植物,是世界上廣泛種植的豆科牧草之一,主要分布于地中海區域、非洲、西南亞和中亞地區。苜蓿因其高產、營養豐富且具有根瘤固氮[1,2]等優點,而被廣泛種植,被譽為“牧草之王”[3]。ABA是最早在對植物芽和種子休眠研究過程中發現的物質,其可作為植物抗旱能力重要的調節因子,ABA對于植物的細胞分裂與伸長、組織與器官分化、休眠與萌發、植物形態建成以及離體組織培養等方面具有重要作用[4,5]。通過分析ABA在植物體內分布的含量變化規律,研究其與抗逆能力的關系,將為合理、有效地配比外源激素,提高植物的抗逆性、培育出耐旱植物的新品種提供有力的理論依據[6]。因此建立快速準確的苜蓿中ABA的分析方法具有重要的應用意義和實用價值。
對于ABA的分析目前多采用生物鑒定法,免疫學方法,以及物理化學方法[7,8]。其中化學方法中的色譜法因其具有檢測方法專一,靈敏和準確高的特點,已成為植物激素檢測中常用的技術[9-11]。本實驗選取苜蓿根系樣品為研究對象,通過樣品前處理方法優化,HPLC分析方法學考察,建立了高效液相色譜測定苜蓿中脫落酸含量的方法,該方法具有快速、簡便、準確的優點,可以應用于植物中ABA含量的測定。
LC-20A高效液相色譜儀(日本Shimadzu公司);CR22G Ⅲ離心機(日本Hitachi公司)。
乙腈、石油醚(均為分析純,國藥集團化學試劑有限公司);甲醇(色譜純,美國Fisher Scientific公司;SPE專用柱管(購買自Agilent公司);Sep-Pak C18柱(購買自Waters公司); PVPP、ABA對照品(Sigma-Aldrich公司)。
1.2.1 提取方法
取苜蓿根系樣品,液氮冷凍研磨,采用避光冷浸提取(冰箱4℃)的方法進行提取。分別對提取溶劑、提取時間、料液比、提取次數等條件進行優選,研究不同提取條件對ABA含量的影響,最終確定ABA最佳的提取方法。
1.2.2 凈化方法建立
采用自制PVPP柱和Sep-Pak C18柱聯用進一步對樣品進行處理。首先,稱取PVPP0.5g,填入SPE專用柱管,并與活化后的Sep-Pak C18柱串聯。加入提取后樣品,待樣品完全通過PVPP柱和SPE柱,拆下PVPP柱,并對SPE柱進行清洗、洗脫,得到ABA凈化后樣品。
1.3.1 HPLC色譜條件
色譜柱ZORBAX Eclipse XDB-C18色譜柱(3.0 mm×150 mm,3.5 μm);CH3OH∶1%乙酸水溶液=35∶65等度洗脫;檢測波長254 nm,進樣量20 μL,流速0.4 mL/min,柱溫35℃。
1.3.2 線性范圍和檢出限
稱取ABA對照品25 mg置于25 mL容量瓶中,用甲醇稀釋至刻度,即得1.0 mg/mL ABA對照品溶液。從其中分別吸取5.0、2.5、1.0、0.5 mL置于4個10 mL容量瓶中,用甲醇稀釋至刻度,則濃度依次為0.5、0.25、0.1、0.05mg/mL。分別對上述對照品溶液進行HPLC分析,繪制標準曲線。其中,對0.05 mg/mL ABA對照品溶液用逐級稀釋的方式獲得檢出限和定量限,以信噪比(S /N≥3)的檢測量為檢出限,以信噪比(S/N≥10)的檢測量為定量限。
1.3.3 穩定性
取1.0 mg/mL ABA對照品溶液,分別在0、12、24、36、48h進行HPLC分析。測定峰面積積分值,考察ABA溶液的穩定性。
1.3.4 精密度
取1.0 mg/mL ABA對照品溶液,重復進行HPLC分析6次。測定峰面積積分值,考察方法精密度。
1.3.5 重復性
取同一種樣品按照1.2優化后的前處理方法平行提取6份,分別進行HPLC分析。測定峰面積積分值,考察方法重復性。
1.3.6 加標回收率
對已知含量的同一樣品分別添加3種不同質量濃度的ABA對照品,每個濃度水平樣品重復3次,按照1.2優化后的前處理方法進行提取,并進行ABA含量測定,考察加標回收率。
2.1.1 提取溶劑
稱取液氮研磨后苜蓿根系樣品1.0 g,按料液比1∶10 g/mL分別加入冷卻的甲醇、乙腈、水、80%甲醇、50%甲醇溶液(以上溶液均內含10 μg/L的抗氧化劑BHT),放置4℃冰箱提取24 h,浸提液以10000 r/min離心15 min得上清液,于35 ℃減壓濃縮至原體積1/3。用1 mol/L Na2HPO4調節至pH=8,加入等體積石油醚萃取脫色3次,棄去石油醚相后,加入0.1 g PVPP,常溫下搖床振蕩30 min,10000 r/min離心15 min棄去PVPP,濾液用2 mo1/L檸檬酸調節至pH=3,再用等體積乙酸乙酯萃取3次,合并酯相,于35℃減壓濃縮至干。所得殘留物加入3 mL pH 3.5磷酸鹽緩沖液溶解,過Sep-Pak C18預處理小柱進一步純化ABA(依次為5 mL甲醇清洗,5 mL磷酸鹽平衡,3 mL樣品上樣,5 mL 20%甲醇清洗,5 mL 80%甲醇洗脫)。其中,80%甲醇洗脫液在40 ℃濃縮至干,用流動相溶解至1 mL,溶液經0.45 μm微孔濾膜過濾后,進行HPLC分析。每個樣品平行提取3次,結果表明80%甲醇作為提取溶劑時,ABA的提取率最高(表1)。

表1 提取溶劑優化試驗
2.1.2 提取時間
80%甲醇作為提取溶劑,設定提取時間分別為4 h、8 h、16 h、24 h,其余條件同2.1.1,結果見表2,當提取時間為16 h和24 h時,ABA的提取率基本相同。故選取提取時間為16 h為單因素最佳條件(表2)。

表2 提取時間優化試驗
2.1.3 料液比
80%甲醇作為提取溶劑,提取時間16 h,設定料液比分別為1∶5 g/mL、1∶10 g/mL、1∶20 g/mL、1∶30 g/mL,其余條件同2.1.1,結果見表3。在料液比達到1∶20 g/mL之前,提取率隨提取液用量的增加而增加,當料液比繼續增大時,提取率基本保持不變。為了減少樣品后續減壓濃縮的時間,故選取料液比為1∶20 g/mL為單因素最佳條件(表3)。

表3 料液比優化試驗
2.1.4 提取次數的確定
選擇80%甲醇作為提取溶劑,提取時間16 h,料液比為1∶20 g/mL,提取次數分別為1次、2次、3次,其余條件同2.1.1,結果見表4。隨著提取次數增多ABA提取率提高,但提取次數達到3次時提取率呈下降的趨勢,一方面可能由于提取次數增多,導致其他雜質的溶出,從而干擾了ABA的提取,另一方面,可能為提取時間過長,導致ABA不穩定降解,故選取提取次數2次為最佳條件。綜上,ABA最佳的提取條件為:提取溶劑為80%甲醇,提取時間16 h,料液比為1∶20 g/mL,提取2次(表4)。

表4 提取次數優化試驗
2.1.5 凈化方法建立
基于PVPP對多酚類雜質吸附的特性和SPE對ABA良好的富集性,建立了PVPP和SPE聯用方法。通過在SPE專用柱管中裝填PVPP后與Sep-Pak C18柱串聯,對提取后樣品采用磷酸鹽緩沖液溶解后上柱凈化,一步完成去除多酚和ABA富集工作,大大縮短了樣品的凈化時間。
2.2.1 線性范圍和檢出限
以ABA對照品濃度為橫坐標,峰面積積分值為縱坐標,繪制標準曲線,回歸方程為Y= 226595.4X+1064.4,相關系數為0.9991。結果表明,ABA在0.05~1 mg/L范圍內線性關系良好。用逐級稀釋的方式獲得ABA的檢出限和定量限,其中檢出限為0.02μg/g和定量限為0.04μg/g,(圖1)。

圖1 ABA對照品標準曲線
2.2.2 穩定性
通過對不同時間點的ABA對照品溶液進行HPLC分析,測定峰面積積分值。ABA對照品峰面積積分值的RSD為2.40%,結果表明ABA在48 h內穩定性良好。
2.2.3 精密度
通過對ABA對照品溶液重復進行HPLC分析,測定峰面積積分值。ABA對照品峰面積積分值的RSD為0.97%,結果表明該方法精密度良好。
2.2.4 重復性
通過對同一種樣品進行平行提取,分別進行HPLC分析,測定峰面積積分值。樣品中ABA峰面積積分值的RSD為3.42%,結果表明該方法重復性良好。
2.2.5 加標回收率
加標回收率試驗結果見表5。低、中、高3種水平ABA溶液的加標回收率分別是91.7%、93.8%、105.2%,RSD 分別為3.85%、2.94%和2.58%,結果見表5。

表5 ABA回收率試驗結果(n=3)
采用上述建立的前處理和分析方法,分別對中苜1號、費納爾、敖漢苜蓿的根系樣品開展ABA含量的檢測。結果見表6、圖2。

表6 苜蓿中脫落酸含量測定

圖2 苜蓿中脫落酸含量測定HPLC色譜圖A.中苜1號;B.費納爾;C.敖漢
經樣品前處理方法優化,確定ABA最佳的提取條件為:提取溶劑80%甲醇(內含10 μg/L的抗氧化劑BHT),提取時間16 h,料液比為1∶20 g/mL,提取2次。同時,采用自制PVPP柱的方式,建立了PVPP吸附和SPE聯用方法,減少了前處理時間。并對HPLC分析方法進行考察,結果顯示ABA在0.05~1 mg/L范圍內線性關系良好,檢出限為0.02μg/g,定量限為0.04μg/g。該方法穩定性、精密度、重現性良好,加標回收率為91.7~105.2%。經實際樣品檢測,所建立的方法具有快速、簡便、準確的優點,可以廣泛應用于植物中ABA含量的測定。
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