999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

不同濃度環(huán)孢菌素A處理對牛肉宰后成熟過程中品質(zhì)及細胞凋亡因子的影響

2018-05-13 19:43:44馬秀利王琳琳韓玲余群力殷元虎韓廣星朱躍明
食品與發(fā)酵工業(yè) 2018年4期

馬秀利,王琳琳,韓玲*,余群力,殷元虎,韓廣星,朱躍明

1(甘肅農(nóng)業(yè)大學 食品科學與工程學院,甘肅 蘭州,730070) 2(黑龍江省畜牧研究所,黑龍江 齊齊哈爾,161005) 3(山東綠潤食品有限公司,山東 臨沂,276600) 4(張掖市萬禾草畜產(chǎn)業(yè)科技開發(fā)有限責任公司,甘肅 張掖,734000)

宰后成熟是肌肉在內(nèi)環(huán)境改變條件下發(fā)生的復雜的生理生化反應過程,可提高肌肉品質(zhì),尤其能有效改善肌肉的嫩度及風味。目前關于宰后肌肉成熟嫩化的主要理論是肌肉結(jié)構(gòu)變化及肌原纖維骨架蛋白的有限降解而使肌肉嫩化[1]。隨著肉品理論的不斷發(fā)展與完善,繼組織蛋白酶和鈣激活酶之后,細胞凋亡酶(Caspases)降解肌原纖維蛋白理論逐漸被認為是改善宰后肌肉嫩度的重要因素。CsA是一種從真菌中提取的含有11個氨基酸的環(huán)多肽,具有強烈的特異性作用[2]。大量研究表明CsA對細胞凋亡(apoptosis)的發(fā)生具有一定的調(diào)節(jié)作用,它能夠與線粒體通透性轉(zhuǎn)運孔(mitochondrial permeability transport pore,MPTP)的結(jié)構(gòu)蛋白親環(huán)素D相互作用,通過調(diào)節(jié)MPTP的開放,間接調(diào)節(jié)Cyt-c從線粒體釋放到胞漿中,進一步調(diào)節(jié)apoptosis級聯(lián)反應的發(fā)生[3-4]。

Apoptosis又稱細胞程序性死亡,其在生物體的進化、內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定以及多個系統(tǒng)的發(fā)育中起重要作用[5]。Apoptosis對肌肉的嫩化作用是近年來肉品科學研究的熱點,尤其在apoptosis對肌原纖維蛋白降解方面國內(nèi)外學者做了大量研究。陳琳[6]研究指出凋亡誘導劑喜樹堿、依托泊苷及Ca2+均能提高肌原纖維的水解;HUANG等[7]利用Caspase-3的選擇性抑制劑DEVE-CHO處理宰后肌肉時發(fā)現(xiàn),DEVE-CHO可以抑制肌肉骨架蛋白的降解,以上研究說明Caspases能夠降解肌細胞骨架蛋白進而改善肌肉嫩度。此外,賈青[8]、孫志昶等[9]、ZHANG等[10]研究發(fā)現(xiàn)apoptosis與其他肉品質(zhì)特征如保水性、色澤顯著相關。有關Caspases對宰后肌肉嫩度改善的相關研究報道較多,但有關MPTP抑制劑CsA對宰后肌肉apoptosis的發(fā)生及其對肌肉品質(zhì)影響機制的相關研究,國內(nèi)外鮮有報道。

本研究以不同濃度CsA溶液處理的牛背最長肌肉樣為研究對象,通過測定肌肉宰后成熟過程中品質(zhì)指標(pH值、色澤、保水性及嫩度)和apoptosis因子(胞漿Cyt-c含量、Caspase-9、Caspase-3活性)等指標的變化,研究CsA處理對apoptosis的影響作用,并探究apoptosis的發(fā)生對宰后肌肉品質(zhì)的影響,以期為apoptosis改善肌肉品質(zhì)提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 試驗材料與試劑

試驗材料:肉牛由張掖博峰肥牛開發(fā)有限公司提供,選擇在同一牧場,生長發(fā)育正常,健康無病,體重均勻,平均年齡2~4 歲的肉牛8頭,公母各半,宰前禁食16~18 h,禁水2 h,屠宰后立即取牛胴體中部背最長肌肉樣,置于0~4 ℃環(huán)境下成熟。

試驗試劑:Caspase-9、3活性測定試劑盒,北京普利萊基因技術有限公司;環(huán)孢菌素A、細胞色素C、二甲基亞砜、連二亞硫酸鈉、蔗糖、乙基苯基聚乙二醇、2-氨基-2(羥甲基)-l,3-丙二醇(Tris)、酒石酸鉀鈉、KCl、MgCl2、EDTA、K3PO4、NaN3、CuSO4、HCl、NaCl等,以上試劑均為分析純。

1.2 儀器與設備

TGL-16M型離心機,長沙湘儀離心機儀器有限公司;XHF-D-型高速分散器(內(nèi)切式勻漿機),寧波新芝生物科技股份有限公司;FA2004B型電子天平,上海佑科儀器有限公司;C-LM4 型數(shù)顯式肌肉嫩度儀,上海精密科學儀器有限公司;SPectramax M2型酶標儀,美國美谷分子儀器有限公司;DNP-9162型水浴鍋,上海精宏實驗設備有限公司;CR-10型色差計,柯尼美能達有限公司;HI99163型便攜式pH計,意大利哈納HANNA儀器公司。

1.3 試驗方法

1.3.1 樣品采集與處理

宰后立即取牛胴體中部背最長肌肉樣,去除表面脂肪、筋腱及結(jié)締組織后,分割為每塊100 g左右的肉樣,按照肉液比10∶1的比例,將4種濃度0.10、0.20、0.25、0.30 mol/L 的CsA溶液均勻注射進肉塊中,不作任何處理的肉樣為對照組;采用托盤包裝,在0~4 ℃環(huán)境下成熟。在成熟時間點12、24、48、96及144 h分別測定pH值、肉色、蒸煮損失及剪切力等指標,測定之前用濾紙吸去肉樣滲出的汁液,對于肌原纖維小片化指數(shù)(MFI)、胞漿Cyt-c含量及Caspase-9、3活力等不便立即測定的指標,將肉樣在設計時間點采集并用液氮迅速冷卻后置于-80 ℃凍藏待測。

1.3.2 pH值測定

將便攜式pH計的探針插入肉樣中,使pH計的電極與肌肉組織充分接觸,讀數(shù)穩(wěn)定后記錄數(shù)據(jù),每個肉樣重復測定3次,取平均值。

1.3.3 肉色測定

測定肉樣表面的L*值、a*值和b*值,將肉樣切開形成新的橫斷面并在室溫下氧合40 min,色差計進行白板校正后,將色差儀探頭垂直放在樣品橫斷面上進行測量,每個肉樣重復測定3次,取平均值作為該肉樣的色差值。

1.3.4 蒸煮損失

將長×寬×高不少于6 cm×3 cm×3 cm的肉樣,修整去除肉塊表面的脂肪和結(jié)締組織,稱重記為Ma,80 ℃恒溫水浴加熱,用數(shù)顯溫度計記錄加熱過程中肉塊的中心溫度。當中心溫度達到75 ℃時,恒溫保持5 min后取出冷卻至室溫,再次稱重記為Mb,蒸煮損失計算公式為:

蒸煮損失/%=(Ma-Mb)/Mb×100

(1)

式中:Ma為蒸煮前肉樣質(zhì)量;Mb為蒸煮后肉樣質(zhì)量。

1.3.5 嫩度

1.3.5.1 剪切力

剪切力肉樣處理方法同蒸煮損失測定方法,用剪切力儀測定剪切力,每組重復3次,取平均值。

1.3.5.2 MFI

參考DELGADO等[11]的方法并稍作修改。測定取2 g肉樣,加20 mL的MFI緩沖液(100 mmol/L KCl、20 mmol/L K3PO4、1 mmol/L EDTA、1 mmol/L MgCl2、1 mmol/L NaN3,pH 7.1),然后勻漿(10 000 r/min,勻漿時間12 s/次,間隙30 s,連續(xù)5次,在冰水浴下進行)。勻漿液在4 ℃條件下1 000×g離心15 min,棄去上清液。沉淀用8 mL的MFI緩沖液懸濁、再離心,棄去上清液。沉淀用5 mL的MFI緩沖液,用200目尼龍篩網(wǎng)過濾該懸濁液,另用5 mL MFI緩沖液幫助肌原纖維蛋白通過濾網(wǎng)。過濾所得的肌原纖維蛋白懸濁液用雙縮脲法測定其蛋白含量,然后用MFI緩沖液將其質(zhì)量濃度稀釋至0.5 mg/mL,然后在540 nm下測定其吸光度,將結(jié)果乘以200,即為MFI。

1.3.6 胞漿Cyt-c含量

參考辛國榮等[12](2007)方法并稍作修改。取組織塊在冷水的生理鹽水中漂洗除去血液,濾紙拭干,稱重。加預冷勻漿介質(zhì)(pH 7.4,0.1 mol/L Tris-HCl,1 mmol/L KCl,1 mmol/L EDTA-2Na,0.25 mol/L蔗糖(均用去離子水配制)的體積總量是組織塊重量的9倍,進行組織勻漿(10 000 r/min,勻漿時間12 s/次,間隙30 s,連續(xù)5次,在冰水浴下進行)。勻漿液經(jīng)離心(2 000 r/min,10 min),棄沉淀。取上清液以18 000 r/min(低溫高速離心機)離心15 min,上清液即為胞漿。取4 mL待測胞漿樣品,加少許連二亞硫酸鈉(0.025 g),振搖后,在520 nm處測定吸光度,由標準曲線計算其濃度。

1.3.7 Caspase活力

1.3.7.1 Caspase-9活力

按照Caspase-9活性檢測試劑盒說明書對Caspase-9的活性進行測定,并稍作修改。取90 mg組織肉樣,剪碎后加入150 μL Caspase-9裂解液,用玻璃勻漿機于4 °C勻漿30次。勻漿液于4 ℃,10 000g離心10 min,離心完畢后取上清液待測。取85 μL Caspase-3反應緩沖液,10 μL待測上清液,5 μL 2 mm Caspase-9反應底物Ac-LEHD-AMC,依次加入96孔酶標板中,對照孔加入95 μL反應緩沖液,5 μL Caspase-9反應底物DEVD-pNA,用封口膜封住,置于37 ℃恒溫箱中反應1~2 h,取下封口膜,用酶標儀在405 nm處測定吸光度值。

1.3.7.2 Caspase-3活力

按照Caspase-3活性檢測試劑盒說明書對Caspase-3的活性進行測定,并稍作修改。樣品處理及操作同Caspase-9活性檢測方法,用酶標儀在405 nm處測定吸光度值。

1.4 統(tǒng)計分析

試驗結(jié)果均采用平均值 ± 標準差表示,用SPSS 19.0統(tǒng)計分析軟件進行數(shù)據(jù)處理,多重比較分析采用Duncan法(p<0.05),用Origin 8.5作圖軟件進行圖形制作。

2 結(jié)果與分析

2.1 不同濃度CsA處理對肌肉pH值的影響

由圖1可知,隨著成熟時間的延長,對照組及處理組pH值均呈先下降后上升的變化趨勢。對照組pH值在宰后96 h下降到最小值為5.56,隨后緩慢上升(p<0.05);處理組pH值在96 h下降到最小值,隨后緩慢上升(p<0.05)。12~48 h,處理組pH值均高于對照組,且pH值隨CsA濃度的增加而升高,但0.25 mol/L處理組pH值均高于其他處理組,且0.10和0.20 mol/L處理組、0.25和0.30 mol/L處理組的pH值無顯著差異(p>0.05)。

圖1 不同濃度CsA處理對肌肉pH值的影響
Fig.1 Effect of different concentrations of CsA treatment on pH value of muscle
注:圖中不同字母表示同一時間點不同處理濃度的差異顯著(p<0.05),下同。

2.2 不同濃度CsA處理對肌肉色度的影響

肉色是消費者評定肌肉外觀的重要指標,其與肌紅蛋白含量、肌纖維類型和狀態(tài)及水分分布有很大關系[13]。由圖2可知,隨著宰后成熟時間的延長,對照組及處理組L*值、a*值、b*值均呈先上升后下降的變化趨勢。對照組L*值、b*值均在96 h達到最大值,隨后L*值顯著下降(p<0.05);對照組a*值在宰后24 h達到最大值19.77,隨后呈下降趨勢,但差異不顯著(p>0.05)。處理組L*值均在宰后48 h達到最大值,按濃度遞增順序L*值峰值分別為37.01、38.87、39.80、39.37,隨后顯著下降(p<0.05);12~48 h,處理組的L*值均高于對照組,且0.25 mol/L處理組L*值均高于其他處理組,但各處理組L*值差異不顯著(p>0.05)。處理組b*值變化情況與L*值變化情況類似,在宰后48 h達到最大值,隨后顯著下降(p<0.05);12~48 h內(nèi),處理組b*值均高于對照組,且b*值的上升呈溶液濃度依賴變化,但0.25 mol/L處理組b*值均高于其他處理組。處理組a*值在宰后24 h達到最大值,隨后顯著下降(p<0.05)。12~96 h,對照組a*值均高于各處理組,且隨處理濃度的增加a*值呈下降趨勢,0.10 mol/L處理組a*值在12~96 h內(nèi)均高于其他處理組,0.30 mol/L處理組a*值在12~48 h均低于其他處理組a*值,但差異不顯著。

圖2 不同濃度CsA處理對肌肉L*(A)、a*(B)、b*(C)值的影響
Fig.2 Effects of different concentrations of CsA treatment on L*(A), a*(B), b*(C) value of muscle

2.3 不同濃度CsA處理對肌肉蒸煮損失的影響

由圖3可以看出,對照組及處理組蒸煮損失呈先上升后下降的變化趨勢。12~96 h內(nèi),對照組蒸煮損失顯著上升,并達到最大值為34.21%,隨后顯著下降(p<0.05);0.10和0.30 mol/L 處理組蒸煮損失在96 h顯著上升并達到最大值分別為35.65%、38.31%,隨后顯著下降(p<0.05),0.25 mol/L和0.25 mol/L處理組蒸煮損失在48 h達到最大值分別為36.34%、38.87%,隨后顯著下降(p<0.05)。在12~144 h,處理組蒸煮損失均顯著高于對照組,除0.30 mol/L處理組外,12~48 h,0.25 mol/L處理組蒸煮損失均高于其他處理組,且各處理組之間蒸煮損失無顯著差異(p>0.05)。

圖3 不同濃度CsA處理對肌肉蒸煮損失的影響
Fig.3 Effects of different concentrations of CsA treatment on the cooking loss of muscle

2.4 不同濃度CsA處理對肌肉嫩度的影響

剪切力是肉嫩度最直接的反映,肌肉越嫩其剪切力越低。MFI代表肌原纖維蛋白被降解及肌原纖維結(jié)構(gòu)破壞的程度,能夠反映出肌肉成熟進行的程度[14]。由表1可以看出,隨著宰后成熟時間的延長,對照組及處理組剪切力均呈先上升后下降的變化。對照組剪切力在96 h達到最大值8.39 kgf,隨后顯著下降(p<0.05);各處理組剪切力在宰后96 h也均達到最大值,按濃度遞增順序,依次為8.66、9.19、9.90和10.00 kgf,隨后顯著下降(p<0.05)。12~144 h,0.3 mol/L處理組剪切力均高于其他處理組,0.10 mol/L處理組剪切力在各時間點均顯著低于其他處理組(p<0.05),且隨CsA處理濃度增加剪切力增大。

表1 不同濃度CsA處理對肌肉剪切力和MFI的影響Table 1 Effects of different concentrations of CsA treatment on the shear force and MFI of muscle

注:同列不同字母表示差異顯著(p<0.05),下同。

說明剪切力的變化呈CsA處理濃度依賴變化。由表1可知,在整個成熟過程中,對照組及處理組MFI均呈顯著上升趨勢(p<0.05)。宰后144 h,對照組MFI顯著上升到最大值72.30(p<0.05);處理組MFI均達到最大值,按濃度遞增的順序分別為65.07、63.00、62.13、60.32(p<0.05),說明MFI的變化呈濃度依賴變化。12~144 h,處理組MFI均低于對照組MFI,且隨CsA處理濃度增加MFI呈下降趨勢,12~96 h,0.30 mol/L處理組MFI均低于其他處理組,0.10 mol/L處理組MFI均高于其他處理組。

2.5 不同濃度CsA處理對肌肉胞漿Cyt-c含量的影響

Cyt-c是細胞凋亡途徑中的凋亡誘導因子,在細胞發(fā)生凋亡過程中起重要作用[15]。由表2可以看出,隨著成熟時間的延長,對照組胞漿Cyt-c含量呈先顯著下降后顯著上升的趨勢(p<0.05),CsA處理組胞漿Cyt-c含量呈逐漸增加的趨勢(p<0.05)。宰后12~24 h,對照組胞漿Cyt-c含量顯著下降并達到最小值0.48 mmol/L,隨后顯著上升(p<0.05);宰后12~144 h,處理組胞漿Cyt-c含量均達到最大值,按濃度遞增的順序胞漿Cyt-c含量分別為0.58、0.56、0.55、0.51 mmol/L。宰后12~144 h,除24 h外,處理組胞漿Cyt-c含量均低于對照組,且隨CsA處理濃度增加而降低;48~144 h,0.30 mol/L處理組胞漿Cyt-c含量均低于其他處理組,且0.10 mol/L處理組Cyt-c含量變化與之相反;除0.10 mol/L處理組外,各處理組胞漿Cyt-c含量在成熟期間無顯著差異(p>0.05)。

表2 不同濃度CsA處理對肌肉胞漿Cyt-c含量的影響Table 2 Effects of different concentrations of CsA treatment on cytoplasm Cyt-c content in muscle

2.6 不同濃度CsA處理對肌肉Caspase活力的影響

在細胞凋亡的線粒體途徑中,Caspase-9作為凋亡的啟動因子,它可召集并激活凋亡效應酶Caspase-3[5]。由圖4-A可以看出,隨著成熟時間的延長,對照組Caspase-9活性呈顯著下降的趨勢,CsA處理組Caspase-9活性均呈先顯著上升后顯著下降的趨勢(p<0.05)。0.10和0.20 mol/L處理組Caspase-9活性在24 h顯著上升并達到最大值分別為1.414、1.302,0.25和0.30 mol/L處理組Caspase-9活性在48 h達到最大值分別為1.239、1.220,隨后顯著下降(p<0.05)。12~24 h,處理組Caspase-9活性均低于對照組,且隨CsA處理濃度增加而降低,在48 h,處理組Caspase-9活性顯著高于對照組(p<0.05);48~144 h,0.20 mol/L處理組Caspase-9活性降低速率均高于其他處理組,處理組Caspase-9活性降低速率隨CsA處理濃度增加而降低。在整個成熟過程中,對照組及處理組Caspase-3活性均呈先顯著上升后顯著下降的趨勢(p<0.05)(圖4-B)。宰后12~24 h,對照組Caspase-3活性顯著上升并達到最大值3.051,隨后顯著下降(p<0.05);宰后12~48 h,處理組Caspase-3活性均達到最大值,按濃度遞增的順序Caspase-3活性分別為2.815、2.637、2.530、2.628,隨后顯著下降(p<0.05)。12~24 h,處理組Caspase-3活性均低于對照組,且隨CsA處理濃度增加而降低,在48 h,處理組Caspase-3活性顯著高于對照組;48~96 h,0.10 mol/L處理組Caspase-3活性降低速率均高于其他處理組,處理組Caspase-3活性降低速率隨CsA處理濃度增加而降低,12~48 h,0.30 mol/L處理組Caspase-3活性均低于其他處理組,且0.10 mol/L處理組Caspase-3活性變化與之相反;12~144 h,0.25及0.30 mol/L處理組Caspase-3活性無顯著差異。

圖4 不同濃度CsA處理對肌肉Caspase-9(A)和 Caspase-3(B)活力的影響
Fig.4 Effects of different concentrations of CsA treatment on Caspase-9 (A) and Caspase-3 (B) activity in muscle

3 討論

在成熟過程中,肌肉pH值呈先下降后緩慢上升的變化,原因可能是宰后缺血、缺氧環(huán)境,導致肌糖原無氧酵解產(chǎn)生乳酸及ATP分解產(chǎn)生磷酸根離子而使肌肉內(nèi)酸性環(huán)境變化[16]。肌肉成熟過程中,因pH值、活性氧等變化導致線粒體Ca2+超載等的作用可引起線粒體外膜通透性增大,進一步使線粒體Cyt-c釋放至胞漿[17-18];注射不同濃度的CsA溶液使宰后肌肉MPTP關閉,維持了滲透壓及H+濃度的變化,限制了Cyt-c的釋放,并在一定程度上維持了有氧呼吸鏈完整,使得pH值下降緩慢,且濃度越高pH值下降越緩慢,但是當處理濃度達到0.30 mol/L時,pH值下降加快,這可能與CsA濃度增高促進非依賴性apoptosis途徑有關。

在宰后成熟過程中,對照組L*值、a*值和b*值均呈先上升后下降的變化趨勢。L*值增大可能是由于肌肉內(nèi)部水分滲出,堆積于肌肉的表面,增加了肌肉對光的反射能力[19];脫氧肌紅蛋白暴露在空氣中迅速氧合,進而氧合肌紅蛋白的比例逐漸升高,肉色變得亮紅而導致a*值、b*值上升[20];隨著貯藏時間延長,氧合肌紅蛋白自動氧化,產(chǎn)生灰褐色的高鐵肌紅蛋白使肉色變暗導致L*值、a*值及b*值均呈下降趨勢,這與田甲春等[21]研究的宰后牛肉成熟過程中色澤變化情況類似。注射不同濃度的CsA溶液使宰后牛肉表面水分滲出嚴重、色素流失增加,導致牛肉變暗變黃,且濃度越高此現(xiàn)象越明顯。注射CsA溶液使肌肉的L*值高于對照組,a*值較對照組低、b*值較對照組高,這是注射CsA溶液后,肉樣中氧氣含量變化以及蛋白變性使得a*值降低、b*值增加。這與賈青[8]研究的向宰后牦牛肉中注射Caspase-3專一抑制劑DEVE后L*值和b*值升高、a*值降低結(jié)果一致。

宰后牛肉的蒸煮損失呈先上升后下降的趨勢。注射不同濃度CsA溶液使pH值下降減緩,極限值升高,同時部分蛋白質(zhì)變性,外源溶液注入而使蒸煮損失增加,且濃度越高蒸煮損失越嚴重。OFFER等[22]研究發(fā)現(xiàn)在宰后成熟過程中,乳酸積累導致肉中的pH值下降并達到等電點時,能被蛋白質(zhì)吸附和保持的水分減少,肌原纖維內(nèi)部結(jié)構(gòu)的排斥力減少,肌原纖維內(nèi)部空間減小,導致水分流失嚴重,這與本研究對照組的研究結(jié)果相一致。

宰后牛肉成熟過程中剪切力呈先上升后下降的趨勢,這是宰后成熟過程中會發(fā)生尸僵導致肌肉收縮和內(nèi)源酶作用解僵共同作用的結(jié)果[23]。MFI是肌原纖維降解情況的直接反映,隨著成熟時間的延長,蛋白質(zhì)不斷降解產(chǎn)生小片段使得MFI不斷增加[24]。本研究中對照組剪切力和MFI變化情況與王莉[25]、TAN等[14]研究結(jié)果相類似。注射不同濃度CsA溶液后,剪切力高于對照組,MFI低于對照組,可能是由于CsA使蛋白降解速度變慢、解僵時間增加以及部分蛋白發(fā)生變性,故剪切力較高、MFI較低;隨著成熟時間增加,在內(nèi)源酶的作用下,使成熟后期剪切力下降、MFI繼續(xù)上升。

宰后牛肉成熟過程中,胞漿中Cyt-c含量呈先下降后上升變化趨勢、Caspase-9活性呈逐漸下降的趨勢、Caspase-3活性呈先上升后下降變化趨勢。這是由于宰后早期肌肉缺氧使得線粒體通透性增加,Cyt-c釋放到胞漿使得胞漿Cyt-c含量增加,然后胞漿中Cyt-c與Apaf-1、Caspase-9前體、ATP/dATP結(jié)合成凋亡小體復合物,活化Caspase-9,進而活化Caspase-3[26-28];由于本實驗測定時間起始點是牛肉宰后12 h,肌纖維缺氧,胞漿Cyt-c含量較高,Caspase-9被活化而活性較高,而Caspase-3被Caspase-9激活時間短活性較低,隨著成熟時間延長,線粒體結(jié)構(gòu)遭到破壞、膜通透性進一步增加,CsA抑制作用也減弱,ATP大量消耗,胞漿中Cyt-c含量大量增加,Caspase-9,Caspase-3活性均降低[29];對照組與曹錦軒[30]、王琳琳等[31]研究結(jié)果類似,同時也能反映出Caspase-9,Caspase-3被激活的先后順序。本研究中注射不同濃度CsA溶液后,胞漿中Cyt-c含量逐漸增加,但含量低于對照組,Caspase-9、Caspase-3活性先上升后下降,這是由于CsA致使肌肉線粒體MPTP開放程度不同,限制了Cyt-c釋放入胞漿,同時胞漿中Cyt-c與Apaf-1結(jié)合成復合物的時間和數(shù)量不同,Caspase-9、3活化程度不同,使得Caspase-9、3活性升高緩慢并低于對照組,apoptosis發(fā)生進程不同,進而對肌肉品質(zhì)的影響存在一定差異。

4 結(jié)論

宰后成熟過程中,肌肉pH值隨CsA溶液濃度增加而升高;隨CsA溶液處理濃度增加,L*值、a*值及b*值均呈先升高后降低的趨勢,L*值和b*值的升高及a*值的降低均呈濃度依賴變化;處理組蒸煮損失均高于對照組,各組肉樣蒸煮損失均在96 h達到最大值。

宰后成熟過程中,處理組剪切力高于對照組,MFI及低于對照組,且上述指標的變化均隨CsA處理濃度的增加呈遞增或遞減的趨勢變化。

在成熟初期,處理組在12~48 h胞漿Cyt-c含量均低于對照組,且隨CsA處理濃度增加胞漿Cyt-c含量下降,處理組在12~24 h Caspase-9、3活性均低于對照組,且隨CsA處理濃度增加Caspase-9、3活性呈下降趨勢;CsA處理能夠影響宰后肌肉的品質(zhì)變化,且各品質(zhì)指標的變化均呈濃度依賴趨勢變化,同時CsA能夠抑制宰后肌肉apoptosis的發(fā)生進程。

主站蜘蛛池模板: 3D动漫精品啪啪一区二区下载| 欧美日韩中文国产va另类| 成人国产小视频| 国产网友愉拍精品视频| 乱人伦中文视频在线观看免费| 国产成人精品一区二区免费看京| 四虎影视库国产精品一区| 麻豆国产原创视频在线播放| 日韩毛片基地| 中国国产高清免费AV片| 狠狠做深爱婷婷久久一区| 国产浮力第一页永久地址| 先锋资源久久| 国产91无码福利在线| 色综合久久久久8天国| 色老头综合网| 狠狠五月天中文字幕| 性网站在线观看| 欧美亚洲日韩不卡在线在线观看| 亚洲69视频| 成年人福利视频| 国产本道久久一区二区三区| 精品久久777| 欧美成人在线免费| 国产成人一区在线播放| 国产网友愉拍精品| 精品人妻系列无码专区久久| 国产SUV精品一区二区6| 免费观看国产小粉嫩喷水| 久久久久亚洲AV成人网站软件| 特级aaaaaaaaa毛片免费视频| 2020亚洲精品无码| 高清欧美性猛交XXXX黑人猛交| 欧美日韩中文国产| 国产精品林美惠子在线播放| 国产日韩久久久久无码精品| 亚洲乱码精品久久久久..| 国产剧情无码视频在线观看| 欧美日韩精品一区二区在线线 | 欧美一级99在线观看国产| 亚洲V日韩V无码一区二区| 成·人免费午夜无码视频在线观看| 国产va免费精品| 91成人精品视频| 国产真实乱子伦精品视手机观看 | www.日韩三级| 九九热视频精品在线| 日本少妇又色又爽又高潮| 欧美高清日韩| 日韩a级毛片| 欧美爱爱网| 免费观看国产小粉嫩喷水| 亚洲日韩久久综合中文字幕| 欧美中文字幕第一页线路一| 中文字幕资源站| 午夜老司机永久免费看片| 91麻豆精品国产91久久久久| 国产精品无码影视久久久久久久 | 中文字幕久久亚洲一区| 99国产在线视频| 久操中文在线| 中文纯内无码H| 曰韩免费无码AV一区二区| 日本亚洲最大的色成网站www| 91精品免费高清在线| 国产办公室秘书无码精品| 天天综合色天天综合网| 日韩天堂在线观看| 中文字幕伦视频| 欧美日本激情| 欧美伊人色综合久久天天| 一级全黄毛片| 亚洲一欧洲中文字幕在线| 91精品专区国产盗摄| 国产素人在线| 内射人妻无套中出无码| 亚洲国产亚洲综合在线尤物| 日韩一区精品视频一区二区| 九九热精品视频在线| 无码丝袜人妻| 又黄又湿又爽的视频| 丰满人妻被猛烈进入无码|