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利用DNA免疫技術制備GATA1蛋白多克隆抗體

2018-07-06 06:54:02曹靈慧陳宇霖歐柏青吳秀山
激光生物學報 2018年2期
關鍵詞:小鼠血清

郭 芬,曹靈慧,陳宇霖,歐柏青,吳秀山*

(1.湖南師范大學蛋白質化學及魚類發育生物學教育部重點實驗室, 心臟發育研究中心, 湖南 長沙 410081;2.湖南師范大學第一附屬醫院, 湖南 長沙410005)

GATA家族是一類能夠特異性識別受調控基因啟動子內GATA基序并與其結合的轉錄調控因子。其共同特點除了對一致性的序列(T/A)GATA(A/G)具有高度的親和性之外還均具有鋅指結構。GATA家族包括GATA1至GATA6六個成員[1],根據最初的研究及其參與的生命活動的不同,將此6種轉錄因子又細分為GATA1/2/3和GATA4/5/6。前者參與調控紅細胞、淋巴細胞和性腺的發育,而后者則調控機體心臟、消化系統及胚組織的分化[2];已知GATA1是造血系統特有的轉錄因子[3],表達嚴格限制于造血細胞系,包括紅系祖細胞、紅細胞、巨噬細胞、肥大細胞等。GATA1控制不同譜系分化的功能大多通過與不同的蛋白質作用來實現,在紅系發育過程中,GATA1會與造血轉錄因子或染色體重塑復合體形成多種復合體,發揮特定的功能[4]。

gata1基因定位于Xp21-11上,cDNA為1.8 kb,所編碼的GATA1轉錄因子為413個氨基酸[5]。人的gata1基因具有6個外顯子,分子量約為42 kD,研究表明,人體gata1基因突變至少與唐氏綜合征兒童患者發生急性巨核細胞白血病部分有關[6]。斑馬魚gata1基因位于11號染色體上,共有6個外顯子,cDNA全長1 257 bp,編碼413個氨基酸。

本文采用的是一種新型的免疫學技術-DNA免疫技術[7]。該技術所用的質粒pCAGGGS-p7含有雞的β-actin啟動子和CMV增強子[8],可以使下游插入基因在哺乳動物細胞中更加高效的表達,且質粒上具有KpnI、XhoI、EcoR I等多種酶切位點,方便目的基因的插入。本研究將具有gata1目的基因的高純度重組質粒pCAGGGS-p7/gata1注射進小鼠肌肉、皮下部位,使小鼠體內表達外源性的目的基因,發生抗原抗體免疫反應,從而誘導小鼠對外源DNA產生抗體。DNA免疫的詳細機理目前尚不十分清楚,其免疫機制可能為:肌細胞通過T小管和細胞膜穴樣內陷把外源基因納入并表達相應的抗原蛋白[9],抗原蛋白被抗原呈遞細胞攝取后被水解為多肽,一部分與MHC-Ⅰ類分子結合,被CD8+CTL細胞識別;另一部分多肽可以進入溶酶體/內體區與MHC-Ⅱ類分子結合,表達在細胞膜后被CD4+TH細胞識別,從而來激發機體有效的免疫應答[10]。分泌到細胞外的抗原則被帶有相應抗體的B細胞捕捉,在Th細胞的作用下轉化為漿細胞產生抗體。Vahlsing等[11]認為:肌細胞可能作為一種中心成分直接參與免疫應答,而小鼠肌細胞能夠有效的吸收和表達外源DNA的機理尚不清楚,可能與其自身的結構有關[12]。該免疫技術可用于已知DNA編碼而又不能得到目的蛋白或獲得的抗原蛋白為低免疫原性抗原的免疫。

由于斑馬魚血細胞的譜系及調節血細胞的基因與哺乳動物高度保守,且斑馬魚心血管系統早期發育與人類極為相似,而血液和心血管系統有缺陷的斑馬魚突變體仍然可以存活數天,為該領域研究提供了極為有利的條件,斑馬魚成為了造血系統研究的最佳模式生物[13]。為了進一步通過斑馬魚研究gata1基因在血液血管發育方面的功能,我們需要制備GATA1多克隆抗體。本文克隆了斑馬魚gata1基因全部編碼區,并構建真核表達質粒pCAGGGS-p7/gata1通過DNA免疫技術免疫小鼠,分離免疫后血清,制備多克隆抗體。結果表明制備的GATA1多克隆抗體特異性好,效價高,能用于GATA1功能的進一步研究。

1 材料與方法

1.1 菌株、質粒、細胞和主要試劑

大腸桿菌感受態DH5α、真核表達質粒pCAGGS-p7以及HEK293T細胞為湖南師范大學心臟發育實驗室保存。BALB/c小鼠購自湖南斯萊克景達實驗動物有限公司。常規RpMII640培養液,含10%新生牛血清(FBS),10 mmol/L Hepes,28 ℃、5%CO2條件下培養。高保真酶試劑盒購自唯贊公司,限制性內切酶KpnI、XhoI以及T4DNA連接酶均購自Takara公司。DNA純化回收試劑盒、質粒提取試劑盒購自康為世紀生物公司。

1.2 引物設計與合成

在NCBI網站上搜索到斑馬魚gata1基因cDNA序列,經primer5.0軟件設計引物p1/p2如下所示。在p1/p2引物前均加入同源臂序列,同源臂序列中分別引入限制性內切酶KpnI、XhoI識別位點。于上海生工公司合成,設計合成出的一對引物如下(下劃線序列為內切酶識別位點):

p1:pCAG-gata1-F:

CTATAGGGCGAATTGGGTACC ATGGAGAACTCCTCTGAGCCTKpnI

p2:pCAG-gata1-R:ATCGATACCGTCGACCTCGAGTC ACACTAGTGTGGGCATCATXhoI

1.3 pCAGGS-p7/gata1表達質粒的構建

首先用Trizol從發育至24 h的野生型斑馬魚胚胎中提取總RNA,反轉錄合成cDNA。以cDNA為模板用上述p1/p2引物進行高保真pCR擴增,成功擴增出長1 257 bp的gata1基因序列。反應條件為:95 ℃預變性3 min,95 ℃變性15 s,56 ℃復性15 s,30個循環,72 ℃延伸30 s,4 ℃保存備用。將獲得pCR產物瓊脂糖電泳后經回收制備約1 200 bp的gata1片段,與用限制性內切酶KpnI和XhoI雙酶切pCAGGS-p7質粒回收約5 000 bp片段,用T4DNA連接酶16 ℃連接16 h。

1.4 大腸桿菌的轉化及重組質粒的鑒定

將上述gata1片段與pCAGGS-p7載體連接產物轉化DH5α感受態細胞,通過氨芐青霉素抗性篩選,挑取陽性單克隆菌落至液體培養基中,37 ℃培養。以培養菌液為模板并以p1/p2為引物進行pCR擴增,經瓊脂糖凝膠電泳后初步確定重組質粒pCAGGGS-p7/gata1陽性克隆,并將陽性的重組質粒進行進一步測序鑒定。

1.5 DNA免疫技術制備小鼠抗GATA1抗體

用pCAGGGS-p7/gata1重組質粒免疫6-8周齡小鼠:電擊處理5只小鼠然后對其后肢股四頭肌注射重組質粒DNA 50 μg,即每只小鼠注射100 μg。同時無目的基因片段的pCAGGGS-p7空載質粒DNA等量注射5只小鼠作為對照組。分別在小鼠注射后的0、30、60 d,按上述方法注射同種相同劑量質粒DNA。于67 d后取血分離血清,分裝后的血清于-80 ℃保存備用。

1.6 Western blot實驗檢測GATA1多克隆抗體效價

將發育至24 h的野生型斑馬魚胚胎收集于1.5 mL離心管中。胚胎收集后用注射器將水吸凈,加入裂解試劑并用研磨棒研磨,在4 ℃搖床靜置30 min后將胚胎裂解物制成上樣樣本,沸水煮5 min,12 000 r/min,5 min取上清。取25 μL經SDS-pAGE凝膠電泳2 h,凝膠經半干轉20 min轉膜。5%脫脂牛奶室溫封閉2 h,用DNA免疫產生的GATA1抗血清稀釋成不同濃度作一抗,用免疫前血清做陰性對照,4 ℃搖床過夜。次日,用pBST洗滌3次后加入1∶2 000抗小鼠的二抗,室溫孵育1.5 h,pBST洗滌3次后DAB顯色觀察。

1.7 免疫熒光檢測GATA1多克隆抗體效價

將培養48 h的HEK293T細胞,在pBS洗1次后用4%多聚甲醛固定30 min,用pBS洗3次,0.2%Triton-X-100處理10 min和5%山羊血清封閉30 min后實驗組用DNA免疫產生的GATA1抗血清1∶100稀釋,4 ℃孵育過夜,對照組用等體積的免疫前血清4度孵育過夜。次日,pBS洗3次后,二抗孵育1.5 h,pBS洗3次。DApI按1∶1 000稀釋,孵育10 min,pBS洗3次,封片熒光顯微鏡觀察拍照。

2 結果與分析

2.1 真核表達質粒pCAGGS-p7/gata1的構建及鑒定

用p1/p2引物pCR擴增得到約1 257 bp的gata1條帶(如圖1),1、2、3號泳道對應pCR產物純化回收后,在連接到pCAGGGS-p7質粒的KpnI和XhoI酶切位點之間,構建重組質粒pCAGGGS-p7/gata1(如圖2)。以重組質粒轉化后的單克隆菌液為模板進行pCR擴增,鑒定的結果如下圖3所示,其中13,15,16號條帶與預期目的DNA片段大小相同。為進一步確定重組質粒序列的準確性,選取13號泳道對應的菌液提取質粒測序,進行核苷酸序列比對,結果表明:pCAGGGS-p7/gata1重組質粒的目的基因序列與GenBank數據庫中人類gata1序列一致。以上結果表明:pCAGGS-p7/gata1重組質粒構建成功。

M:DNA marker,1, 2,3:gata1基因pCR擴增電泳圖。M: DNA marker, 1, 2, 3: gtat1 gene pCR amplified electrophoresis.圖1 pCR擴增電泳圖Fig.1 pCR amplification electrophoresis

圖2 pCAGGGS-p7/gata1重組質粒示意圖Fig.2 Construction of pCAGGGS-p7/gata1 Recombinant plasmid

M:DNA標準;1-16:以重組質粒的菌液為模板的pCR產物;13,15,16號泳帶為與預期目的條帶大小相近的條帶。M: DNA marker; 1-16: pCR products based on bacterial solution of Recombinant plasmid; The bands 13, 15 and 16 are similar to the size of the intended destination band.圖3 pCAGGGS-p7/gata1重組質粒的pCR驗證Fig.3 pCR Verification of pCAGGGS-p7/gata1 recombinant plasmid

2.2 GATA1多克隆抗體Western Blotting鑒定

提取發育至24 h的野生型斑馬魚胚胎總蛋白進行Western blot檢測:用自制的GATA1多克隆抗體分別以1∶150、1∶500稀釋作為一抗進行檢測,結果顯示陰性對照未見特異性條帶,免疫后血清在42 kD處有一條特異的雜交帶出現,且稀釋濃度為1∶500時的雜交信號仍然非常明顯(如圖4)。說明免疫后的小鼠血清中產生了GATA1蛋白的特異性抗體,該抗體的特異性和敏感性良好。

2.3 GATA1多克隆抗體免疫熒光鑒定

免疫熒光實驗檢測結果表明:陰性對照未見特異性熒光,DNA免疫制備的GATA1抗血清檢測HEK293T細胞中有較強特異性熒光,主要集中在細胞質區域(如圖5);該結果進一步證明, DNA免疫產生的GATA1多克隆抗體能夠識別細胞生理狀態下的GATA1蛋白。

抗體稀釋倍數為:1.免疫前血清;2.1∶150;3.1∶500The detection of the antibody titers: 1.control; 2.1∶150; 3. 1∶500圖4 GATA1多克隆抗體Western-blotting鑒定Fig.4 Western-blotting of GATA1 polyclonal antibody

A:免疫前血清免疫的細胞核染色;B:用GATA1多克隆抗體免疫的細胞核染色;C:免疫前血清免疫的GATA1蛋白的表達;D:用GATA1多克隆抗體免疫的GATA1蛋白的表達;E:免疫前血清免疫的merge圖;F:用GATA1多克隆抗體免疫的merge圖A: Nuclear staining of serum immunization before immunization; B: Nuclear staining immunized with GATA1 polyclonal antibodies; C: Expression of GATA1 protein in serum before immunization; D: Expression of GATA1 protein immunized with GATA1 polyclonal antibody; E: Merge diagram of serum immunization before immunization; F: Merge diagram immunized with GATA1 polyclonal antibody圖5 免疫熒光檢測抗血清的特異性Fig.5 Immunofluorescence to detect antiserum specificity

3 討論

GATA1是造血祖細胞或前體細胞發育為特定類型血細胞的關鍵調節因子[15,16],而斑馬魚又是生物研究的一個重要模式生物,斑馬魚心血管系統早期發育與人類極為相似,所以利用GATA1的抗體來進一步研究斑馬魚的血液血管尤為重要。本研究的目的是制備高效價和特異性好的GATA1多克隆抗體。在研究中,我們采用的是新型免疫技術-DNA免疫技術;通過基因重組技術將編碼GATA1抗原蛋白的外源DNA直接導入動物細胞內,在pCAGGGS-p7載體上的強啟動子的作用下,在宿主細胞中合成免疫原性蛋白;通過宿主細胞產生對該抗原蛋白的一系列免疫應答,獲得免疫后血清。

Western Blot及免疫熒光實驗鑒定血清的效價,制備的GATA1多克隆抗體能與真核生物體內表達的GATA1蛋白結合,同時檢測顯示該多克隆抗體與GATA1蛋白結合的特異性較好,雜帶少,為今后進一步通過染色質免疫共沉淀,免疫共沉淀實驗研究gata1基因生物學功能提供了重要的研究材料[17,18]。

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