伊拉兔肌內磷脂n—3多不飽和脂肪酸體外抗腫瘤功效及作用機理

摘 要：根據之前的研究成果體外模擬伊拉兔肌內磷脂n-3 多不飽和脂肪酸（polyunsaturated fatty acids，PUFAs）的組成，并研究其功能特性。結果表明：采用噻唑藍法對復合n-3 PUFAs作用的敏感細胞進行篩選，證實伊拉兔肌內磷脂n-3 PUFAs在30～180 μmol/L劑量范圍對HepG2、MV3和A375腫瘤細胞的生長均有抑制作用，且HepG2細胞對復合肌內磷脂n-3 PUFAs的敏感度最高；HepG2的細胞形態及數量變化與復合n-3 PUFAs呈現明顯的時效和量效關系；采用膜聯蛋白V-異硫氰酸熒光素和碘化丙啶雙染法對腫瘤細胞進行凋亡檢測，證實伊拉兔肌內復合磷脂n-3 PUFAs的凋亡作用；進一步研究發現，復合n-3 PUFAs及其單體（α-亞麻酸、二十碳五烯酸、二十二碳五烯酸和二十二碳六烯酸）均能夠引起HepG2細胞內氧化應激的改變，它們通過顯著上調細胞內丙二醛的累積量以及活性氧的相對熒光強度水平，同時下調超氧化物歧化酶的活力實現對HepG2細胞的誘導凋亡作用，其中二十二碳六烯酸在非酶促氧化反應中發揮主要作用，這是肌內磷脂n-3 PUFAs誘導HepG2細胞凋亡的機制之一。

關鍵詞：伊拉兔；肌內磷脂；n-3多不飽和脂肪酸；抗腫瘤；脂質過氧化

Abstract： As an extension of our previous work， the composition of n-3 polyunsaturated fatty acids （PUFAs） in intramuscular phospholipids of Hyla rabbit was simulated in vitro to evaluate their functional characteristics. The sensitivity of various tumor cells to the formulation was tested by the methyl thiazolyl tetrazolium method. It turned out that the formulation at doses in the range of 30–180 μmol/L repressed the growth of HepG2， MV3 and A375 tumor cells， HepG2 cells being most sensitive to the formulation. The formulation affected the morphology and quantity of HepG cells in a time- and dose-dependent manner and it induced apoptosis in the tumor cells as determined by Annexin V-fluorescin isothiocyanate and propidium iodide double staining kit. Furthermore， the formulation and the individual PUFAs （α-linolenic acid， eicosapentaenoic acid， docosapentaenoic acid， and docosahexenoic acid （DHA）） could alter oxidative stress in HepG cells and their apoptosis-inducing activity was associated with a significant increase in cellular malondialdehyde accumulation and the relative fluorescence intensity of reactive oxygen species and with a decrease in superoxide dismutase activity. In addition， DHA played a major role in the non-enzymatic oxidation reaction.

Keywords： Hyla rabbit； intramuscular phospholipids； n-3 polyunsaturated fatty acids； anticancer effect； lipid peroxidation

DOI：10.7506/rlyj1001-8123-201804002

中圖分類號：TS201.4 文獻標志碼：A 文章編號：1001-8123（2018）04-0007-07

根據世界癌癥組織的報告，惡性腫瘤導致的死亡人數高達全球總死亡人數的12%，甚至在很多國家1/4的死亡原因都歸結于癌癥[1]。全球診斷出來的最常見的癌癥包括肺癌、胃癌、肝癌、乳腺癌以及結直腸癌等[1-2]。大量流行病學資料顯示，攝入脂肪的種類和數量與惡性腫瘤的發生與發展有密切關系[3-4]。很多研究表明，高水平飽和脂肪酸（saturated fatty acid，SFA）的攝入會增加罹患惡性腫瘤的風險，而n-3多不飽和脂肪酸（polyunsaturated fatty acids，PUFAs）的攝入能夠大大降低這種風險，同時也有利于腫瘤病人的治療和預防復發[5-7]。大量動物實驗及體外細胞實驗證實，n-3 PUFAs具有明顯抑制腫瘤細胞增殖、促進腫瘤細胞分化和誘導腫瘤凋亡的作用，如對胃癌[8-9]、乳腺癌[10]、結直腸癌、前列腺癌[11]和胰腺癌[12]等療效顯著。長鏈的n-3 PUFAs，尤其是二十碳五烯酸（eicosapentaenoic acid，EPA）和二十二碳六烯酸（docosahexenoic acid，DHA）對腫瘤細胞的作用更為突出，并且誘導腫瘤凋亡的途徑與機制是復雜多變的[13-14]。

本研究首先通過探究伊拉兔肌內磷脂n-3 PUFAs對HepG2（人肝癌細胞株）、MV3（野生型黑素瘤細胞株）和A375（人黑素瘤細胞株）的作用，篩選敏感細胞株；其次，通過n-3 PUFAs與敏感細胞株的時效及量效關系確定不同作用劑量與培養時間對敏感細胞株的影響，進而對不同n-3 PUFAs添加量和培養時間條件下敏感細胞株的細胞形態、抑制效果和細胞凋亡等指標進行深入研究，探討伊拉兔肌內磷脂n-3 PUFAs對敏感細胞株的作用效果；此外，通過試劑盒法檢測伊拉兔肌內磷脂中n-3 PUFAs對腫瘤細胞氧化應激的影響，即分別用α-亞麻酸（α-linolenic acid，ALA）、EPA、二十二碳五烯酸（docosapentaenoic acid，DPA）、DHA和復合n-3 PUFAs處理敏感細胞株，檢測腫瘤細胞內丙二醛（malondialdehyde，MDA）、超氧化物歧化酶（superoxide dismutase，SOD）以及活性氧（reactive oxygen species，ROS）的變化，以期揭示伊拉兔肌內磷脂n-3 PUFAs體外抑制腫瘤細胞增殖的作用機制，同時也為兔產業的推廣和推進提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

冷卻兔肉取自西南大學動物科學學院養殖場的伊拉配套系肉兔，同一批次飼養，飼養環境和飼料均相同。公兔，20 只，60 日齡，體質量（2.15±0.12） kg。肉兔經屠宰分割后，取背部最長肌作為實驗原料，用裝有碎冰的保溫箱將其立即運回實驗室（20 min之內），真空包裝后于-18 ℃保藏備用。使用前將原料在4 ℃條件下解凍24 h后，去掉表面可見脂肪和筋膜，分割切塊。

n-3 PUFAs：ALA標準品（純度99.8%）、EPA標準品（純度99.8%）、DPA標準品（純度99.8%）和DHA標準品（純度99.8%） 上海安譜儀器有限公司；HepG2、A375和MV3細胞株 西南大學潔凈能源與先進材料研究院細胞庫。

14%三氟化硼甲醇溶液（色譜純） 美國CNW公司；脂肪酸甲酯標準品（色譜純） 美國Sigma公司；PBS溶液、DMEM培養基和RPMI 1640培養基 美國Gibco公司；胎牛血清 天津TBD公司；雙抗（青霉素、鏈霉素）和胰酶 北京鼎國昌盛生物技術有限責任公司；噻唑藍（methyl thiazolyl tetrazolium，MTT）試劑和細胞裂解液RIPA Buffer 美國Sigma公司；膜聯蛋白V-異硫氰酸熒光素（Annexin V-fluorescin isothiocyanate，Annexin V-FITC）細胞凋亡檢測試劑盒、MDA測定試劑盒、SOD測定試劑盒、ROS測定試劑盒和蛋白質定量測定試劑盒 南京建成生物工程研究所有限公司；三氯甲烷、甲醇、氯化鈉、氯化鈣、無水硫酸（均為分析純） 成都市科龍化工試劑廠。

1.2 儀器與設備

QP-2010氣相色譜儀 日本Shimadzu公司；Rtx-Wax毛細管色譜柱 美國Restek公司；RE-52A旋轉蒸發器、SHB-Ⅲ循環水式多用真空泵 上海市亞榮生化儀器廠；SHA-CD恒溫振蕩器 金壇市富華儀器有限公司；DG3022酶標儀 美國Bio-Tek公司；DFM-20C熒光倒置顯微鏡 美國Olympus公司；NU-3500細胞培養箱 德國Nuaice公司；DY89-1玻璃勻漿器 寧波新芝儀器有限公司；H1650-W高速離心機 湖南湘儀集團；F-7000熒光分光光度儀 日立高新技術公司；SG-40干式試管加熱器 德國HLC生物技術公司；SX-700高壓滅菌鍋 日本Tomy公司。

1.3 方法

1.3.1 伊拉兔肌內磷脂n-3 PUFAs的組成測定磷脂的提取：脂肪提取、肌內中性脂肪和磷脂的分離采用薛山等[15-16]的方法。

磷脂脂肪酸組成分析：樣品前處理及脂肪酸甲酯的氣相色譜（gas chromatography，GC）測定均參考文獻[15-16]的方法；脂肪酸的定性分析采用與37 種混合脂肪酸甲酯標準品的保留時間進行對比的方法進行，定量分析采用面積歸一化法，脂肪酸含量用單個脂肪酸占總脂肪酸的相對比例（%）表示。

1.3.2 伊拉兔肌內磷脂n-3 PUFAs的制備

1.3.2.1 母液配制

準確稱取各標準品，分別配制20 mmol/L的ALA、4 000 ?mol/L的EPA、4 000 ?mol/L的DPA和4 000 ?mol/L的DHA儲備液；儲備液經0.22 ?m濾膜過濾后分裝于1.5 mL離心管中，-20 ℃保存備用。使用時將儲備液用細胞培養液稀釋至所需濃度。

1.3.2.2 復合n-3 PUFAs儲備液的配制

按照文獻[17-18]測得的60 日齡伊拉公兔（體質量（2.15±0.12） kg）背部最長肌磷脂的n-3 PUFAs組成進行肌內磷脂n-3 PUFAs的復配，如表1所示。用無血清培養液將復配所得復合n-3 PUFAs配制成4 000 ?mol/L的儲備液，經0.22 ?m濾膜過濾后分裝于1.5 mL離心管中，-20 ℃避光保存備用。需要指出的是，當NaOH的終濃度低于0.001 mol/L或乙醇的終體積分數低于0.6%時，均對細胞無毒性作用。

1.3.3 腫瘤細胞系生長培養基的配制

HepG2（人肝癌細胞株）生長培養基：RPMI 1640培養基+10%胎牛血清+1%雙抗；A375（人黑素瘤細胞株）生長培養基：DMEM培養基+10%胎牛血清+1%雙抗；MV3（野生型黑素瘤細胞株）生長培養基：DMEM培養基+10%胎牛血清+1%雙抗。

1.3.4 n-3 PUFAs敏感細胞株的篩選

1.3.4.1 細胞接種

參考Dai Jinfeng等[9]的方法。輕輕吸出原有培養液及未貼壁的細胞，先用1 mL PBS溶液反復清洗2～3 次，再向培養瓶中加入0.25%胰酶消化液（含有乙二胺四乙酸（ethylene diamine tetraacetic acid，EDTA））進行消化，輕輕晃動培養瓶，使消化液均勻覆蓋細胞，將培養瓶放回37 ℃、5% CO2培養箱內消化約5 min；取出細胞培養瓶，用倒置顯微鏡進行光學觀察，待腫瘤細胞逐漸變圓時，輕輕晃動培養瓶，使貼壁細胞充分脫落，之后立即加入3 mL新鮮培養基以終止胰酶消化；輕輕搖勻后，慢慢吸出管內含有細胞的胰酶消化液，于1 000 r/min條件下低溫離心5 min；棄去管內的上清液，加入新鮮的細胞培養基，輕輕吹打，制成濃度均勻的細胞懸液，以103～105 個/孔的濃度分別鋪于6孔板，每個孔的細胞懸液體積均為3 mL。

1.3.4.2 細胞加藥

采用直接加藥法。向上述6孔板中分別加入0、22.5、45.0、67.5、90.0、112.5 μL的4 000 μmol/L復合n-3 PUFAs，使其終濃度分別為0、30、60、90、120、150 μmol/L；用排槍將每孔的溶液吹打均勻后，將6 個孔的細胞懸液以每孔100 μL分別接種于3 塊96孔板，繼續培養，用于后續測定。每個處理組均設置3 個平行孔，每孔均設置等體積的培養液作為對照，為避免培養過程中水分揮發而引起的邊緣效應，邊緣孔均設為培養液對照。

1.3.4.3 呈色

細胞分別培養24、48、72 h后，每孔加入MTT溶液10 μL；37 ℃繼續孵育4 h后，將細胞從培養箱中取出，輕輕將孔內細胞培養上清液去除；分別向細胞培養瓶中加入二甲基亞砜（dimethyl sulfoxide，DMSO）溶液，150 μL/孔；將96孔板于脫色搖床上振蕩10 min，使得結晶物能夠充分溶解。

用酶標儀測定每孔在490 nm波長處的吸光度（A），并按照下式計算細胞活力。

1.3.5 MTT法檢測敏感細胞株的增殖

采用直接加藥法對腫瘤細胞加藥，具體操作同1.3.4.2和1.3.4.3節。

1.3.6 敏感細胞的形態觀察

將敏感細胞的密度調整為1×105 個/mL，分別接種到6孔板，3 mL/孔；分別向上述6孔板的各孔中加入0、22.5、45.0、67.5、90.0、112.5 μL的4 000 μmol/L復合n-3 PUFAs，使其終濃度分別為0、30、60、90、120、150 μmol/L。同時設置不含脂肪酸的培養液作為對照組，培養24、48、72 h后分別用低、中、高倍倒置相差顯微鏡觀察細胞形態。

1.3.7 敏感細胞凋亡的測定

根據Annexin V-FITC細胞凋亡測定試劑盒法進行操作。取約1×105～5×105 個重懸的敏感細胞，1 000×g條件下離心5 min；去除上清液，加入500 μL Annexin V-FITC結合液，再次輕輕重懸敏感細胞；加入5 μL Annexin V-FITC溶液，混合均勻后再向反應體系中加入5 μL碘化丙啶（propidium iodide，PI）溶液，輕輕混勻；在室溫（20～25 ℃）條件下，采用鋁箔避光孵育10 min；將上述染色后的細胞懸液滴于載玻片上，并用蓋玻片輕輕蓋上細胞，即可用倒置熒光顯微鏡進行檢測。

1.3.8 n-3 PUFAs及其單體處理對敏感細胞氧化損傷的影響

敏感細胞中MDA的積累量測定：釆用商業化的MDA試劑盒進行測定。待測樣品的蛋白質含量按照考馬斯亮藍法進行測定；敏感細胞中SOD的活性測定：釆用商業化的SOD試劑盒進行測定；敏感細胞中ROS的變化量測定：釆用商業化的ROS試劑盒進行測定。

1.4 數據處理

采用SPSS 13.0軟件進行數據的統計分析，釆用Origin 8.0軟件繪圖。數據均以平均值±標準差表示，多組均值比較釆用單因素方差分析，2 組均值比較釆用非配對t檢驗，當P<0.05時認為差異具有統計學意義。

2 結果與分析

2.1 不同腫瘤細胞對n-3 PUFAs敏感度的比較

由圖1可知，伊拉兔背部最長肌肌內磷脂n-3 PUFAs對HepG2、MV3和A375 3 種腫瘤細胞的生長均有一定的抑制作用，且作用濃度不同，細胞的相對活力也存在差異。HepG2細胞受伊拉兔肌內磷脂n-3 PUFAs的抑制較之MV3和A375更為敏感。王占有[19]的研究表明，n-3 PUFAs（EPA和DHA）對HepG2細胞的生長有明顯的抑制作用（P<0.05），并且抑制作用隨著培養時間的延長而顯著增加；當用EPA培養24、48、72 h后，其對腫瘤細胞抑制的半數抑制質量濃度（half maximal inhibitory concentration，IC50）分別為（89.09±1.56）、（72.68±2.05）、（56.4±1.38） ?g/mL；當用DHA培養24、48、72 h后，其對腫瘤細胞抑制的IC50分別為（160.87±2.13）、（82.39±1.76）、（70.71±1.52） ?g/mL。然而，目前有關n-3 PUFAs對MV3和A375的誘導作用鮮有報道。

鑒于HepG2細胞對n-3 PUFAs的較強敏感性，本研究選擇HepG2細胞作為研究對象進行后續實驗，進一步探討n-3 PUFAs對HepG2細胞增殖和凋亡的影響及作用機制。

2.2 n-3 PUFAs對HepG2細胞的時效與量效作用

由圖2可知，HepG2細胞與n-3 PUFAs之間有顯著的時效與量效關系。在0～200 μmol/L濃度范圍內，隨著n-3 PUFAs濃度的增加，HepG2細胞活力顯著下降

（P<0.05）。當培養時間為48 h、n-3 PUFAs添加濃度為200 μmol/L時，HepG2的細胞活力降至（25.70±1.12）%。可見，n-3 PUFAs對HepG2的細胞活力影響明顯；當培養時間為72 h時，高劑量的n-3 PUFAs使得腫瘤細胞的活力顯著下降，其中180、200 μmol/L處理組HepG2的細胞活力分別降至（5.61±0.16）%和（2.57±0.11）%，此時可以認為細胞的活力幾乎為零。因此，后續實驗選用30～150 μmol/L的n-3 PUFAs對HepG2細胞進行培養、觀察及測定。

王占有[19]的研究表明：當分別用60 ?g/mL的EPA和DHA作用于HepG2細胞48 h后，細胞的凋亡率分別為12.31%和6.52%；當分別用80 ?g/mL的EPA和DHA作用于HepG2細胞48 h后，細胞的凋亡率分別為32.12%和14.67%，且不同濃度作用下的凋亡率具有顯著性差異（P<0.05）。

2.3 n-3 PUFAs對HepG2細胞凋亡的影響

由圖3可知，不同n-3 PUFAs劑量和作用時間對HepG2細胞的數量和形態均有顯著影響。對照組HepG2細胞輪廓清晰，呈梭形，細胞之間結構緊密，生長旺盛；而處理組HepG2細胞的形狀發生改變，呈無規則狀態，細胞的輪廓感降低，細胞浮起，細胞間距離增加、結構松散，細胞數量有所減少，死細胞增多。推測此時細胞的細胞質開始減少，細胞器發生一定程度的萎縮。凋亡細胞的核膜會發生破裂，導致胞質溶出，進而逐漸形成凋亡小體[20]。處理72 h后，HepG2細胞形態的變化更為明顯，這也與MTT測定結果相吻合。

圖3中不僅可以觀察到細胞凋亡早期產生的綠色熒光、壞死細胞或凋亡晚期喪失細胞膜完整性的凋亡體發出的紅色熒光以及壞死細胞膜內發出的綠色熒光，還可以明顯觀察到相應凋亡細胞形態與數量的差異性變化。由倒置熒光顯微鏡觀察結果可知，隨著n-3 PUFAs處理劑量的增大，HepG2細胞的凋亡現象更為劇烈。同時，倒置熒光顯微鏡清晰且直接地檢測到了磷酯酰絲氨酸外翻這一細胞凋亡的重要形態特征。細胞凋亡的發生通常有多個明顯的形態與生化改變，包括細胞質減少、細胞萎縮、薄膜起泡、染色質縮合、吸附力下降、細胞膜內磷脂酰絲氨酸外翻、DNA碎裂、特定位置蛋白質分解以及線粒體膜通透性增加等，而腫瘤細胞的程序性死亡減慢或者喪失能夠使其逃避細胞正常生長增值的調控機制[21-23]。

細胞增殖是多階段、多因子參與的、受到精確而有序細胞周期調節的過程，包括細胞生長、DNA復制以及細胞分裂[24-25]。因此，抑制腫瘤細胞的增長或促進腫瘤細胞的凋亡均有利于腫瘤的治療[20]。

薛山[26]的研究認為，n-3 PUFAs對多種惡性疾病均有良好的預防和治療功效，其生物學作用機制包括促脂質過氧化學說、抑制環氧合酶2和脂氧合酶的表達、抑制腫瘤血管增生、調控蛋白酶及抑制相關癌癥基因編碼蛋白的表達等多種理論。其中，從脂質過氧化角度來講，n-3 PUFAs能夠誘導腫瘤細胞內脂質過氧化產物（活性氧）的增加，進而直接損傷DNA、滅活功能蛋白、阻斷細胞信號傳導以及基因轉錄，從而致使細胞凋亡。Yu等[27]

的研究表明，n-3 PUFAs能夠誘導腫瘤細胞內脂質過氧化產物的積累，這可能是由于其改變了細胞中Na-K-ATP酶和5-核苷酸酶的活性以及多種抗氧化劑的水平，也可能是由于其提高了抗氧化酶類（如SOD、過氧化氫酶（catalase，CAT）等）的活力和蛋白激酶c的濃度，促進了p53的表達。通常來講，n-3 PUFAs對脂質過氧化反應的促進作用與其所含不飽和雙鍵的數目呈正相關，并且具有劑量依賴性。腫瘤細胞對于脂肪酸的吸收或代謝與正常細胞不同，常規劑量的n-3 PUFAs能夠有選擇性地抑制或殺傷腫瘤細胞，同時不損害正常細胞，這是由于腫瘤細胞中的抗氧化屏障存在缺陷，脂質過氧化產物和自由基會大量積聚，使其極易遭受過氧化損傷[28]。

2.4 n-3 PUFAs及其單體對HepG2細胞氧化損傷的影響

作為一種重要的營養物質，PUFAs具有廣泛的生理功能和生物學活性，其在預防和治療癌癥方面扮演著越來越重要的角色，能夠誘導細胞的凋亡，并在一定程度上降低癌細胞的侵襲力，但是其作用機制仍尚不明確[29]，Walther等[30]推測，腫瘤細胞的脂肪酸氧化作用可能存在缺陷。

由圖4～6可知，伊拉兔n-3 PUFAs及其單體（ALA、EPA、DPA、DHA）均能夠顯著上調HepG2細胞的MDA累積量和ROS的相對熒光強度水平，同時下調SOD的活力。相比之下，5 種n-3 PUFAs對HepG2細胞氧化應激影響的大小順序為DHA>DPA>n-3 PUFAs>EPA>ALA。其中，DHA作用后HepG2細胞表現出的高水平ROS熒光強度和MDA積累量可能是由于DHA自身含有多個不飽和雙鍵引起的，而SOD活力的下調使得ROS積累，進而對細胞造成脂質過氧化損傷。120 μmol/L的n-3 PUFAs能夠通過調節細胞內的氧化應激水平以及脂質過氧化影響HepG2細胞的生長，氧化應激和脂質過氧化作用越劇烈，細胞損傷越大，對腫瘤細胞的殺傷力也就越大。曾思敏[31]的研究表明，ALA、EPA、DHA、亞油酸（linoleic acid，LA）、γ-亞麻酸（γ-linolenic acid，GLA）和花生四烯酸（arachidonic acid，AA）6 種PUFAs的添加均能促使胃癌細胞MGC、SGC中MDA積累量顯著上升，SOD活性顯著下降，ROS生成量大大提高，并進一步誘導MGC和SGC細胞的凋亡，而正常細胞未受到損害。王占有[19]的研究表明，n-3 PUFAs（EPA和DHA）能夠通過影響細胞脂質過氧化反應來抑制HepG2細胞的增殖，并誘導其凋亡；EPA和DHA作用于細胞后，HepG2細胞中SOD的活力均有顯著下降（P<0.05），且用質量濃度分別為80、100 ?g/mL的EPA或DHA處理后，細胞的SOD活力較之60 ?g/mL處理組顯著降低（P<0.05），細胞的MDA沉積量均顯著升高（P<0.05）。這與本研究的結果相似。結合本研究結果可知，伊拉兔肌內磷脂n-3 PUFAs誘導HepG2細胞凋亡的功效可能主要依托于DHA、DPA和EPA這3 種長鏈PUFAs發揮的誘導作用，n-3 PUFAs的不飽和雙鍵越多，作用的主導性越大。因此，在伊拉兔的飼喂養殖、烹飪加工以及貯運包裝中，如何提高其原料或產品中長鏈PUFAs的相對含量將成為兔肉營養與健康課題中值得探討的問題。

3 結 論

伊拉兔肌內磷脂n-3 PUFAs在30～180 μmol/L劑量范圍均能夠抑制HepG2、MV3和A375腫瘤細胞系的生長，其中HepG2細胞對伊拉兔肌內磷脂n-3 PUFAs的敏感性最顯著，并表現出明顯的時效與量效關系。通過Annexin V-FITC和PI雙染法對HepG2細胞進行凋亡檢測，證實了伊拉兔肌內復合磷脂n-3 PUFAs誘導凋亡的作用。此外，ALA、EPA、DPA、DHA以及n-3 PUFAs均可以引起HepG2細胞內氧化應激的改變，通過顯著上調細胞內MDA的累積量以及ROS的相對熒光強度水平，同時下調SOD的酶活力實現對HepG2細胞的誘導凋亡作用，其中DHA在非酶促氧化反應中發揮主要作用。因此，在伊拉兔肉的膳食營養課題中研究如何提高肌內磷脂中長鏈PUFAs，尤其是DHA的相對含量將有重要意義。

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