雷 蕾 葉 斌
(成都市第六人民醫院腫瘤科,四川 成都 610051)
結直腸癌(colorectal cancer,CRC)是常見的消化道惡性腫瘤,我國的發病率和病死率呈逐年升高的趨勢,有20%~45%的患者在術后3年內復發或發生遠處轉移[1]。循環腫瘤細胞(circulating tumor cells,CTCs)是指實體瘤患者外周血存在的腫瘤細胞,是惡性腫瘤轉移的必要條件。檢測CTC有助于判斷患者發生遠處轉移的風險及預后,指導治療手段的選擇[2]。本研究檢測2015年6月至2017年2月晚期結直腸癌患者45例,同期入組體檢健康人45例作為對照組,具體分析如下。
1.1 一般資料:選取2015年6月至2017年2月晚期結直腸癌患者45例,同期體檢健康人45例,分為觀察組;男26例,女19例,年齡54~79歲,平均(66.2±11.5)歲,對照組:男22例,女23例,年齡52~78歲,平均(67.1±10.8)歲。
1.2 方法
1.2.1 血樣采集:采集7.5 mL的腫瘤患者外周靜脈血,肝素抗凝。
1.2.2 腫瘤細胞的富集:用PBS按1∶1的比例等倍稀釋全血,轉移至離心管定容至50 mL,室溫800 g離心15 min,棄上清,輕吸出單核層細胞轉移至新的50 mL離心管,加入20 mLPBS混勻,4 ℃ 300 g離心15 min后去上清ā加入200 μL PBS溶液重懸細胞,轉移至1.5 mL離心管,將捕獲抗體(Ep CAM)混入,在18~20 ℃下孵育1 h后,加入800 μL PBS混勻,300 g離心5 min,洗滌2次,棄上清液,加入200 μL PBS重懸細胞ā取濾液,泵入修飾過的芯片以流速200 μL/h進行細胞分離,1 h后拆下芯片置于平皿進行檢測。
1.2.3 CTC的免疫染色鑒定:芯片室溫干燥,加入2%多聚甲醛固定15 min后去除固定劑,加入透膜劑,處理15 min后加入一抗混合液(CK,CD45),于4 ℃避光過夜孵育。次日用7~8 mL PBS分三次泡洗,混入二抗混合液(Alexa488 和Alexa 555),室溫避光孵育40 min后加入,染核試劑(DAPI)20 min。再次用PBS泡洗3次,室溫晾干后鏡下觀察。
1.2.4 CTC陽性判斷標準:CK+(Alexa488)/CD45-(Alexa555)/nuclear+(hochest33342)的細胞判斷為循環腫瘤細胞。
1.3 統計學處理:采用SPSS17.0軟件對數據進行處理,計量資料用(-x±s)表示,計數資料比較進行χ2檢驗,兩組間均數比較采用t檢驗,以P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 結直腸癌及對照組循環腫瘤細胞的檢測結果:對照組均未查到CTC(-),檢出率為0%(0/45),觀察組檢測出CTC21例,占46.7%(21/45),兩組患者的CTC檢測陽性率相差顯著(P<0.05),見表1。

表1 CTC的表達情況與患者臨床特征的關系
2.2 化后對CTC陽性率的影響:化療前后CTC陽性率具有顯著統計學差異(P<0.05),見表2。

表2 化療前后患者CTC陽性率比較
循環腫瘤細胞(circulating tumor cells,CTCs)指從原發灶或轉移灶脫落下來的細胞[3],通過血管或淋巴系統進入血液,形成微小癌栓,最后發展為轉移灶[4]。CTC操作簡便,標本易得,具有腫瘤的特征。多項研究表明 CTCs 的數量與 CRC 患者的預后關系密切[5]。Rahhari等[6]的Meta分析結果顯示CTC不受年齡ā性別ā腫瘤病灶的分化程度等因素的影響,但與患者病理分期相關,可以作為患者預后和臨床評價的標志物。
腫瘤患者的治療一般由腫瘤的分期、病理分化及預后等因素來決定,但目前評估療效評價的手段有限,不能及時發現腫瘤的早期轉移。Ⅱ期臨床研究表明,術后或化療前CTC的檢出是乳腺癌患者早期復發的獨立預測指標[7]。治療前后CTC數目的變化可以提示治療效果的反應。ARBAZAN等用組合生物標記鑒定mCRC的CTC,發現患者治療過程中CTC較CT更早出現變化,預后也較差。研究表明,CTC分子標記可以檢測耐藥基因的表達,有助于判斷腫瘤患者疾病發展,評估和監測治療效果,指導調整用藥。本研究中,化療觀察組CTC陽性率顯著降低(P<0.05),與療效存在負相關性,與之前報道結果一致。在治療階段,動態評估 CTCs 可以指導臨床治療方案的改進,減少不必要的藥物毒性,給低風險的患者合理安排治療間歇。
綜上,檢測CTC的數目變化可提示患者體內腫瘤細胞的變化趨勢,是患者預后的獨立預測因素,也可以作為檢測治療方案是否有效的重要指標。建立標準化的檢測方案和評價標準仍有待于后續大規模臨床研究。因此動態檢測患者治療前后CTCs的變化,可以作為一種新型診斷工具,具有重要的臨床意義。