不同生境黑果枸杞根際與非根際土壤微生物群落多樣性

李 巖,何學敏, 楊曉東,張雪妮,呂光輝, *

1 新疆大學干旱生態環境研究所,烏魯木齊 830046 2 新疆大學綠洲生態教育部重點實驗室,烏魯木齊 830046 3 新疆大學資源與環境科學學院,烏魯木齊 830046

根際土壤是直接受植物根系和分泌物影響的土壤區域,是土壤微生物與植物相互作用的重要場所。根際土壤微生物與根系之間存在適應性協同進化關系[1],并形成植物-微生物之間的互惠關系[2]。植物通過根系活動改變根際土壤的養分含量及其他土壤理化性質,改變根際微生物群落的組成,使得根際與非根際土微生物群落組成和多樣性上具有明顯的差異[3]。根際微生物對植物生長具有重要的作用,促植物生長細菌(PGPR)通過自身代謝活動將土壤營養物質分解、轉化為植物可吸收利用的形態,促進植物生長,部分細菌分泌的激素等物質可提高植物的適應性,如干旱、鹽堿等脅迫條件[4-5]。

根際土壤微生物的群落結構受植物影響,如植物種類[6]、生長階段[7]、健康狀況[8],另外,土壤理化性質對微生物群落也具有重要的影響,如土壤營養狀況[9]、水分和pH[10-11]、溫度[12]。土壤鹽漬化作為一種重要的環境脅迫因子,不僅影響植物的生長、植被群落結構,而且對土壤微生物群落多樣性和組成具有重要的影響[13-14]。我國西北干旱區,特別是新疆地區,擁有大面積的鹽漬化土壤,含鹽量高,不利于作物耕種,卻孕育了許多鹽生植物,如鹽角草(Salicorniaeuropaea)、鹽穗木 (Halostachyscaspica)、鹽節木 (Halocnemumstrobilaceum)、堿蓬 (Suaedaglauca)、鹽爪爪 (Kalidiumfoliatum)等。深入開展鹽生植物根際土壤微生物群落結構對于揭示植物對鹽堿環境的適應機理具有重要意義[15]。然而,目前對鹽生植物根際土壤微生物的群落結構的了解還比較少[16]。

黑果枸杞(Lyciumruthenicum)是一種分布于我國西北干旱區的耐鹽植物。國內學者主要從生理生態方面對它們的耐鹽堿機理開展過研究[17-18],但是根際土壤微生物對黑果枸杞耐鹽堿性的作用尚未揭示。研究表明,植物根際微生物群落的組成和豐富度在不同生境間具有差異[19-20],黑果枸杞作為一種耐鹽植物,可生長于多種生境中,如鹽化沙地、干河床、荒漠河岸林中、河湖沿岸,然而,黑果枸杞根際微生物群落多樣性和組成在鹽堿化生境與非鹽堿化生境之間的差異性還不清楚。本研究在前期對艾比湖地區黑果枸杞根際土壤細菌群落結構分析的基礎上,進一步分析不同地區(鹽化與非鹽化生境)中黑果枸杞根際土壤細菌和真菌的群落組成,揭示根際微生物群落與非根際微生物群落組成之間,以及不同生境間微生物群落結構的差異,為研究根際土壤微生物與黑果枸杞耐鹽性之間的關系提供基礎。

1 材料與方法

1.1 材料

土壤樣品于2016年5月11—13日取自精河縣艾比湖濕地國家級自然保護區、烏蘇市、五家渠市,生境分別為鹽堿地、路旁荒地、人工林帶旁。分別在每個黑果枸杞居群中選擇生長狀況相近的健康個體,每個地點采集3—4個重復,每個重復之間距離大約20—50 m。將植株根系挖出,抖去根部附著比較疏松的土壤,留下與根系結合比較緊密的土壤(厚度約1 mm),裝入50 mL無菌離心管中。采集距離根系30—40、0—30 cm深度土層的土壤,裝于無菌袋中,作為非根際土壤。土壤采集完后立即在冷藏條件下(冰上)帶回實驗室。向盛有根系的離心管中加入適量(30 mL左右)無菌PBS溶液(137 mmol/L NaCl, 2.7 mmol/L KCl, 8.5 mmol/L Na2HPO4, 1.5 mmol/L KH2PO4, pH 7.3), 漩渦震蕩10 min,棄去根系,土壤溶液即為根際土壤溶液,暫存于4℃,備土壤微生物基因組DNA提取。

1.2 方法

1.2.1 土壤理化性質分析

土壤pH值采用pH計測定; 土壤有機碳(TOC)采用重鉻酸鉀容重法進行測定;全氮(TON)采用重鉻酸鉀-硫酸消化法進行測定;電導率(EC)采用電導率儀測定, 由于EC與土壤含鹽量具有正相關關系,因此以EC近似表示含鹽量。

1.2.2 土壤微生物基因組DNA的提取

基因組DNA提取方法參考Edwards[2]。吸取1 mL根際土壤溶液至2 mL無菌離心管中,于4℃、10000 g離心30 s,棄上清,所得沉淀用于根際土壤微生物基因組DNA提取;對非根際土,用無菌藥匙取大約0.2 g土壤(濕重),加入2 mL無菌離心管中,用于提取基因組DNA。利用OMEGA試劑盒E.Z.N.ATM Mag-Bind Soil DNA Kit試劑盒(OMEGA)提取基因組DNA,利用1%瓊脂糖凝膠檢測DNA的長度和完整性,利用NanoDrop檢測DNA的濃度和純度。

1.2.3 DNA擴增及測序

采用兩輪法對細菌16S rDNA V3—V4區進行擴增, 第一輪擴增利用融合了barcode序列的通用引物進行,上游引物341F:ccctacacgacgctcttccgatctg (barcode) cctacgggnggcwgcag,下游引物805R: gactggagttccttggcaccc gagaattccagactachvgggtatctaatcc;真菌18S rDNA擴增,第一輪擴增利用融合了barcode序列的通用引物進行,上下游引物序列:NS1:cctacacgacgctcttccgatctn (barcode) gtagtcatatgcttgtctc,Fung:gactggagttccttggcacccgag aattccaattccccgttacccgtt g。反應體系30 μL,包含15 μL 2×Taq master Mix(Thermo),引物(10 μmol/L)各1 μL,模板DNA 20 ng。擴增條件:94℃ 3 min,94℃ 30 s,45℃ 20 s,65℃ 30 s,擴增5個循環;94℃ 20 s,55℃ 20 s,72℃ 30 s,擴增20循環,72℃延伸5 min。第二輪擴增使用Illumina橋式PCR兼容引物,以第一輪的PCR產物為模板。反應體系同上。擴增條件:95℃ 30 s,95℃ 15 s,55℃ 15 s,72℃ 30 s,擴增5個循環,72℃延伸5 min。PCR產物經磁珠法回收并定量。將每個重復個體的PCR產物等量混合,每份混合樣品包含相應的全部重復個體,將6份混合樣品送至生工(上海)生物工程有限公司,利用Illumina-MiSeq平臺進行高通量測序。

1.2.4 數據分析

測序原始數據去除引物接頭序列、去除各低質量堿基(Phred Quality Score=20)后進行拼接,舍棄長度短于200 bp的序列,去除非特異性擴增序列及嵌合體后,得到每個樣本的有效序列數據。以97%為劃定閾值,對16S和18S序列劃分操作分類單元(operational taxonomic unit,OTU)。采用RDP classifier 2.12對97%相似度水平的OTU代表序列進行分類學分析,得到每個OTU對應的物種分類信息,并在界、門、綱、目、科、屬水平上統計各個樣品的細菌群落組成?；谖锓N分類分析,繪制物種分類條形圖和物種豐度熱圖。16S和18S序列經重取樣(resampling)統一測序深度(16S為60000條,18S為27000條)后,計算alpha多樣性指數(Chao1、Shannon、Simpson指數以及覆蓋度)。以OTUs豐富度對序列數作圖,進行稀釋分析并制作稀釋曲線圖(Rarefaction curve)。根據樣本OTUs組成之間的weighted unifrac距離矩陣進行主坐標分析(PCoA)分析微生物群落之間的相似性;用配對t檢驗比較根際和非根際、細菌和真菌群落多樣性的差異性;利用CCA分析檢測細菌、真菌群落組成與土壤理化因子的關系。OTU劃分、alpha多樣性指數計算以及稀釋分析用Mothur軟件完成;配對t檢驗及作圖用Graphpad 6完成;PCoA和CCA分析采用R的vegan軟件包進行。

2 結果與分析

2.1 土壤理化性質

根際土壤有機碳(TOC)、總氮(TON)含量高于非根際土,電導率(EC)和pH低于非根際土;非根際土壤的TOC、TON含量和pH在3個地區間無顯著差異(P>0.05), EC顯著高于烏蘇地區(WS)和五家渠地區(WQ)(P<0.01)(表1), 表明艾比湖地區(EB)土壤為鹽漬化土壤,其含鹽量顯著高于非鹽漬化的WQ和WS地區。

表1 根際土壤與非根際土壤的理化性質

不同小寫字母表示不同地區間差異顯著性(P<0.01);*:每個重復個體的根際土樣質量很低,無法滿足測試需求,因此我們將每個地區的所有重復個體的根際土混合后測定,故每個參數只有1個數值,沒有誤差,也無法檢驗根際土壤之間理化性質的差異顯著性

2.2 微生物多樣性及群落結構

2.2.1 測序數據預處理結果

土壤樣品序列的稀釋曲線逐漸趨于平緩(圖1),同時測序覆蓋度0.91—0.99之間(表2),說明測序數據量合理,基本能真實反應土壤微生物的群落組成。

2.2.2 微生物群落多樣性

配對t檢驗表明,根際土壤細菌群落的多樣性和豐富度高于非根際土壤(P>0.05), 然而WQ非根際細菌的多樣性和豐富度高于根際土(表2);根際真菌多樣性低于非根際土壤(P<0.05)(圖2),而豐富度無顯著差異(圖2)。細菌群落的豐富度和多樣性指數顯著高于真菌(P<0.05, 圖2)。不同地區間,細菌和真菌群落的多樣性和豐富度具有差異,WQ非根際土壤細菌和真菌多樣性均高于EB和WS;根際細菌多樣性排序為EB>WS>WQ,根際真菌多樣性排序為WS>EB>WQ(表2)。

圖1 基于OTU豐度的土壤樣品微生物群落的稀釋曲線Fig.1 Rarefaction curves of soil microbial communities based on OTU richnessEB_R:艾比湖地區黑果枸杞根際土壤,Rhizosphere soils of Lycium ruthenicum in Ebinur Lake wetland;EB_B:艾比湖地區非根際土壤,Bulk soils in Ebinur Lake wetland;WS_R:烏蘇地區黑果枸杞根際土壤,Rhizosphere soils of Lycium ruthenicum in Wusu;WS_B:艾比湖地區非根際土壤,Bulk soils in Wusu;WQ_R:五家渠地區黑果枸杞根際土壤,Rhizosphere soils of Lycium ruthenicum in Wujiaqu;WQ_B:五家渠地區非根際土壤,Bulk soils in Wujiaqu

微生物類群Microbial group樣品編號Sample IDOTU數目OTU numberChao1指數Chao1 index香農指數Shannon index覆蓋度Coverage細菌BacteriaEB_B4633139235.23 0.95WS_B4390131045.190.95WQ_B6518238476.170.91EB_R5462207526.25 0.94WS_R4580196195.80 0.96WQ_R4351182975.38 0.95真菌FungiEB_B30915313.71 0.99WS_B31919593.98 0.99WQ_B47814414.410.99EB_R39014522.85 0.99WS_R43315813.480.99WQ_R38018142.45 0.99

圖2 根際和非根際土壤細菌和真菌群落的多樣性和豐富度比較Fig.2 Comparison of the diversity and richness of bacterial and fungal communities in rhizosphere and bulk soils差異顯著性:ns:P>0.05;*:P<0.05;**:P<0.01;***:P<0.001

2.2.3 土壤微生物群落組成

非根際細菌群落中,優勢類群依次是變形菌門(Proteobacteria)(42.34%—45.58%)、厚壁菌門(Firmicutes)(23.12%—33.06%)、放線菌門(Actinobacteria)(9.67%—17.15%)、酸桿菌門(Acidobacteria)(2.41%—5.95%);根際土壤細菌群落中,優勢類群依次是變形菌門(55.9%—65.13%)、擬桿菌門(Bacteroidetes)(12.04%—15.37%)、放線菌門(6.38%—8.64%)、酸桿菌門(6.22%—7.89%)(圖3)。真菌群落中,子囊菌門(Ascomycota)、擔子菌門(Basidiomycota)豐度最高,其中子囊菌門在非根際土中的豐度為50.86%—67.37%, 根際土中的豐度為17.92%—75.12%;擔子菌門在非根際土中的豐度為21.27%—24.98%, 根際土中的豐度為3.89%—60.48%(圖3)。

屬水平上,微小桿菌屬(Exiguobacterium)、檸檬酸桿菌屬(Citrobacter)、不動桿菌屬(Acinetobacter)、假單胞菌屬(Pseudomonas)、芽孢桿菌屬(Bacillus)是非根際細菌群落的優勢屬(豐度>1%) (圖4),微小桿菌屬豐度最高(19.8%—28.86%)。曲霉屬(Aspergillus)、Penidiella、Craterocolla、Phaeosphaeria、青霉屬(Penicillium)、Meyerozyma、裂殖酵母屬(Schizosaccharomyces)、犁頭霉屬(Absidia)、Hygrocybe、毛殼菌屬(Chaetomium)是非根際真菌群落的優勢屬(豐度>1%)(圖4)。Haliea、Gp10、Pelagibius、Microbulbifer、假單胞菌屬、Thioprofundum、Deferrisoma是3個地區黑果枸杞根際土壤細菌群落的優勢屬 (圖4),其中Haliea的豐度最高(3.86%—11.93%)。多孢子菌屬(Pleospora)、支頂孢屬(Acremonium)、Corollospora、Cochlonema是3個地區根際土壤的真菌優勢屬 (圖4)。

圖3 黑果枸杞根際和非根際土壤微生物門水平群落組成Fig.3 Microbial community composition at phylum rank in rhizosphere and bulk soils of Lycium ruthenicum

圖4 黑果枸杞根際和非根際土壤微生物屬水平群落組成Fig.4 Microbial community composition at genus rank in rhizosphere and bulk soils of Lycium ruthenicum

2.3 土壤微生物群落差異性分析

2.3.1 根際與非根際土壤微生物群落的差異性

相似性分析(ANOSIM)表明根際土壤與非根際土壤微生物群落之間具有很大的差異(細菌R=1,P=0.1;真菌R=0.667,P=0.1)?；贠TU的微生物群落主坐標分析(PCoA)表明,非根際群落之間具有較高的相似性,根際群落之間具有較高的相似性,非根際樣本與根際樣本在第一軸上能明顯的區分開(圖5)。

圖5 基于weighted unifrac距離的土壤微生物群落的主坐標分析Fig.5 Principal co-ordinates analysis (PCoA) of microbial communities based on weighted unifrac distance Bulk: 非根際土壤, bulk soils;Rhi: 根際土壤,rhizosphere soils

根際細菌的變形菌門、擬桿菌門、酸桿菌門的相對豐度高于非根際土壤,而厚壁菌門、放線菌門的相對豐度則降低,尤其是厚壁菌門的豐度顯著降低(P<0.05)(圖3)。Gamma變形菌的豐度在根際土和非根際土中無顯著差異,而alpha變形菌在根際土中的豐度顯著高于非根際土(P<0.05)(表3)。真菌優勢門豐度在根際土和非根際土中的差異因地區而異;子囊菌門在WQ和WS根際土中的豐富度低于非根際土,擔子菌門在WQ和WS根際土中的豐度升高,然而在EB則相反。屬水平上,根際細菌的優勢屬數量多于非根際土壤,非根際群落優勢屬,如微小桿菌屬、檸檬酸桿菌屬、不動桿菌屬在根際土壤中的豐度顯著降低,而低豐度的屬,如Haliea、Pelagibius、Microbulbifer、Thioprofundum、Deferrisoma在根際土壤中富集成為優勢屬,此外,Gp10、鹽單胞菌屬(Halomonas)等屬在根際土壤的豐度也顯著升高(圖6)。真菌根際真菌群落的優勢屬數量低于非根際土,非根際土壤的優勢屬,如曲霉屬、犁頭霉屬、被孢霉屬、青霉屬、絲膜菌屬、Penidiella、Phaeosphaeria等在根際土壤中的豐度顯著降低甚至消失,而一些豐度較低的屬,如被孢霉屬、多孢子菌屬、Cochlonema、Corollospora在根際土壤中富集成為優勢屬(圖6)。

表3 變形菌門中各綱的豐度/%

圖6 以不同地區間具有豐度差異屬構建的熱度圖和聚類關系圖Fig.6 Heatmap and cluster relationship of genera with abundance differed among different regions

2.3.2 鹽化生境與非鹽化生境間群落結構差異

PCoA表明無論根際還是非根際土壤,非鹽化生境WS和WQ微生物群落間的相似性高于與鹽化生境EB之間的相似性(圖5)。門水平上,細菌delta變形菌和真菌子囊菌門在EB非根際土中的豐度顯著高于WS和WQ(表3)。根際土壤細菌alpha變形菌以及真菌在EB中的豐度低于WQ和WS,細菌delta變形菌、擬桿菌門、厚壁菌門,以及真菌子囊菌門和接合菌門擔子菌門在EB的豐度高于WQ和WS, 然而它們的相對豐度在WQ和WS之間無明顯差異。

屬水平上,根際土壤細菌中的假單胞菌屬、Haliea、鹽單胞菌屬、Geminicoccus、Salinimicrobium、動性球菌屬、Albidovulum等屬,以及非根際土壤細菌中的Deferrisoma、Gp10、Gillisia、Salinimicrobium、Salisaeta、鹽單胞菌屬在3個地區之間具有差異。另外,鹽化生境(EB)中根際土壤嗜鹽細菌的豐度明顯高于非鹽化生境(WQ、WS),如鹽單胞菌屬、動性球菌屬(Planococcus)、Geminicoccu、Pelagibius、Gracilimonas、Salinimicrobium、Rubrivirga、Methylohalomonas、Thiohalobacter等(圖6)。對于真菌,EB非根際土壤中多孢子菌屬的豐度很低,而在WQ和WS為優勢屬,且在WQ和WS的豐度基本相同;而青霉屬、曲霉屬、Meyerozyma等屬則相反。根際土壤中,小囊菌屬是EB的最優勢屬, 而WQ和WS的最優勢屬為Melanoleuca;此外,地孔菌屬(Geopora)、Xenobotrytis、Brachyconidiellopsis、多孢子菌屬等屬在EB的豐度顯著高于WQ和WS,這5個屬的總豐度占EB真菌總豐度的61.33%,而在WQ和WS的豐度為3.09%和3.26%,與之相反,Chaetomium、Phaeosphaeria在EB豐度顯著低于WS和WQ,而且在后兩者中的豐度相近(圖6)。

2.4 微生物群落與土壤理化因子的關系

相關性分析表明土壤TOC與TON顯著正相關(P<0.01),pH與EC正相關(P>0.05);細菌群落多樣性與土壤TOC、TON正相關,與pH、EC負相關;真菌群落多樣性與TOC、TON顯著負相關(P<0.05),與EC和pH分別呈負相關和正相關(表4)。CCA結果表明TOC、TON是根際微生物群落的主要影響因子,EC、pH是非根際微生物群落的主要影響因子;EC對EB根際群落也具有重要的影響(圖7)。

表4 細菌、真菌群落多樣性與土壤理化性質的相關性

*:顯著性水平significance level:*P<0.05;***P<0.01

圖7 微生物群落組成與土壤理化性質的典范對應分析Fig.7 Canonical correspondence analysis (CCA) between microbial community composition and soil chemical properties TOC:總碳,total organic carbon;TON:總氮,total nitrogen;pH:pH值;EC:電導率,electrical conductivity

3 討論

非根際和根際土壤中細菌豐富度高,而真菌數量相對較少,這與土壤中微生物以細菌為主一致[21]。根際細菌多樣性高于非根際細菌,而根際真菌多樣性卻低于非根際土壤。根際土壤中營養物質高于非根際土壤,有利于細菌的繁殖從而豐富度和多樣性升高,相關性分析也表明細菌多樣性和組成與TOC、TON正相關,與以往研究相一致[22-23];而土壤真菌多為病原菌[24],不利于植物生長,可能被植物根系主動過濾,導致根際真菌多樣性低于非根際。

根際細菌、真菌群落組成與非根際土壤存在明顯的差異,PCoA結果也表明非根際土壤與根際微生物群落分離明顯,非根際土壤群落之間,以及根際土壤群落之間各具有較高的相似性。門水平上,根際土壤中細菌的變形菌門(alpha變形菌)、擬桿菌門、酸桿菌門的相對豐度高于非根際土壤,而厚壁菌門、放線菌門的相對豐度則降低,尤其是厚壁菌門的豐度顯著降低。真菌子囊菌門在WQ和WS根際土中的豐富度低于非根際土,擔子菌門在WQ和WS根際土中的豐度升高,然而在EB則呈相反的趨勢。屬水平上,根際細菌的優勢屬的組成比非根際土壤的均勻度高,根際細菌的優勢屬數量多于非根際土壤,且單個優勢屬的豐度比非根際土的低;非根際土壤的優勢屬,如微小桿菌屬、檸檬酸桿菌屬、不動桿菌屬在根際土壤中的豐度顯著降低,而Haliea、Pelagibius、Microbulbifer、Thioprofundum、Deferrisoma在根際土壤中顯著富集成為優勢屬。

根際與非根際菌群的差異,一方面是因為根際土壤TOC、TON的含量高于非根際土,EC低于非根際土,利于某些特定類群的增殖和豐度的提高。CCA結果表明根際細菌和真菌群落結構與土壤TOC和TON呈正相關關系,而非根際細菌和真菌群落結構與土壤EC和pH呈正相關關系。總體上,根際土壤細菌群落多樣性高于非根際,例外的是WQ非根際細菌多樣性和豐富度均高于根際,可能與該采樣點位于人工林帶內,非根際土壤的水分和養分含量高,利于微生物繁殖。另一方面,是植物從自身代謝和健康出發,由根系主動選擇形成的[25],gamma變形菌包含許多促植物生長細菌(PGPR),如具有固氮作用的芽孢桿菌屬、固氮菌屬(Azotobacter),在生產和釋放植物激素[26-27]和土壤源植物病原菌(如真菌)的生物防治[28]中有重要作用。alpha變形菌包含許多植物共生固氮菌,如Rhizobium、Rickettsia;delta變形菌的一些物種,如Desulfovibrio、Geobacter、Bdellovibrio等,對土壤硫循環具有重要作用,對植物生長有重要作用,因此在根際土壤中的豐富度明顯高于非根際土壤;alpha和delta變形菌的豐度升高是在根際土壤中變形菌門的豐度顯著高于非根際土的主要原因。另外,一些嗜鹽或嗜鹽堿細菌也對植物生長有促進作用,如鹽單胞菌屬、芽孢桿菌屬[5]、Microbulbifer[29]、動性球菌屬[30],因此在根際土中的豐度高于非根際土。

子囊菌門和擔子菌門黑果枸杞根際土壤豐度最高的兩個門,也是土壤中最豐富的真菌類群。李越鯤等[20]對青海、新疆、寧夏地區栽培的寧夏枸杞(L.barbarum)根際真菌群落的研究發現,總體上,子囊菌門和接合菌門是豐度最高的門,然而,青海格爾木地區的根際真菌豐度最高的仍為子囊菌門和擔子菌門。球囊菌門能夠侵染大多數陸生植物根系形成菌根,增強植物吸收水分、養分、以及抵御環境脅迫的能力,本研究發現球囊菌門在真菌群落中的相對豐度較低,與寧夏枸杞中的結果相似。我們還發現,真菌根際真菌群落的優勢屬數量低于非根際土,非根際土壤的優勢屬,如曲霉屬、犁頭霉屬、被孢霉屬、青霉屬、絲膜菌屬、Penidiella、Phaeosphaeria等在根際土壤中的豐度顯著降低甚至消失,而被孢霉屬、多孢子菌屬、Cochlonema、Corollospora等屬在根際土壤中顯著富集成為優勢屬。

微生物群落多樣性和組成在不同生境之間的差異與土壤理化性質密切相關,生境不同,根際微生物群落不同[19]。我們也發現微生物群落的優勢類群(門、屬)的組成以及豐富度存在地區間差異,特別是鹽堿生境(EB)與非鹽堿生境(WQ、WS)。厚壁菌門在EB根際土中的豐度高于WQ和WS;在屬水平上,一些嗜鹽和嗜堿細菌,如鹽單胞菌屬[31]、Geminicoccu[32]、Pelagibius[33]、Gracilimonas[34]、Salinimicrobium[35]、動性球菌屬[30]、Rubrivirga[36]、Methylohalomonas、Nitriliruptor[37]、Thiohalobacter[38]、Aliifodinibius[39]等,在鹽堿生境中根際土壤嗜鹽細菌的豐度高于非鹽堿生境;另外,這些嗜鹽細菌在根際土壤的豐度高于非根際土壤,表明EB地區根際土壤的相對高的含鹽量與營養成分促進了它們的繁殖和豐度的提高,CCA分析也表明它們與TOC、TON正相關。

PCoA結果表明含鹽量低的WQ和WS的根際土壤微生物群落的相似度高于與EB之間的相似度,CCA結果也表明EB根際細菌群落與EC也具有正相關關系,說明含鹽量對土壤微生物群落結構具有重要的影響。但是也有研究表明鹽脅迫能顯著降低根際土壤細菌群落的豐富度,例如,鹽敏感黃瓜品種根際細菌的豐富度在低鹽處理下較高,而耐鹽黃瓜品種根際細菌的豐富度在高鹽脅迫下較高[40],說明鹽分是植物根際微生物群落的重要影響因子,然其作用效果也受植物根際效應的制約[13]。另外,氣候條件,特別是水分和溫度,對植物生理、光合作用,根系活動具有重要的調控作用,進而影響根際微生物群落的組成[12, 41],可是,本研究未對水分、溫度因子進行測量,它們對群落結構的影響有待于進一步的研究。