急性高溫脅迫對虹鱒二倍體和三倍體 幼魚hsps基因表達的影響?

辛苑茹， 溫海深， 李吉方， 侯志帥， 張美昭， 車德釗， 陳落落

(海水養殖教育部重點實驗室(中國海洋大學), 山東 青島 266003)

魚類屬于變溫動物，水溫是影響魚類生長發育最重要的環境因子之一。虹鱒(Oncorhynchusmykiss)隸屬于鮭形目(Salmoniformes)鮭科(Salmonidae)大馬哈魚屬(Oncorhynchus)，是全球性養殖的高經濟價值的冷水性優良養殖品種[1]。其最適宜水溫在12～18 ℃之間，當季節改變，尤其是夏季高溫天氣引起水溫升高時，會導致虹鱒在新陳代謝，生長發育等方面面臨挑戰。當水溫高于20 ℃時，魚體表現為食欲減退，生長減緩。當水溫高于24 ℃時，虹鱒停止攝食，長時間持續高溫則導致虹鱒患病、死亡，帶來巨大的經濟損失[2]。

處于不良環境時，有機體處于脅迫狀態，此時有機體會通過各個層次的生理活動回應不良環境的刺激，維持生理穩態。在神經內分泌水平上，嗜鉻細胞釋放兒茶酚胺類激素，下丘腦-垂體-腎間組織軸釋放糖皮質激素(如皮質醇)，上述兩類激素共同調控魚類的初級脅迫反應[3]。在細胞水平上，細胞內部的蛋白質發生合成和表達的變化從而使機體表現出一系列行為和生理上的改變，進而抵抗不良環境的刺激[4]。最顯著的特點之一便是熱休克蛋白(Heat shock proteins,HSPs)表達的增加[5]。熱休克蛋白也稱為應激蛋白(Stress protein)，廣泛存在于生物體中，幫助有機體應對熱脅迫、滲透壓脅迫、重金屬脅迫、饑餓脅迫、低氧脅迫等各種不良環境。按照蛋白質分子量不同，HSPS可分為分子量較大的HSP70家族、HSP90家族和HSP60家族，以及小分子HSP家族及泛素。許多研究表明，高溫脅迫能夠顯著影響魚類hsps基因mRNA轉錄水平。周彥靜提出[6]，虹鱒鰓、中腎、腦、心臟和肌肉中hsp90α表達量隨水溫的升高呈逐步上升的趨勢。李珍提出熱應激過程中[7]，心臟、腦和肝臟中hsp40、hsp90β的表達量較高。由于魚類存在基因組的加倍[8]，導致熱休克蛋白在魚類中出現了許多亞型，在魚類中尚不清楚何種熱休克蛋白的亞型為應激型[9]。此外，不同亞型的熱休克蛋白面對應激的應答幅度也不盡相同。由于hsp70s和hsp90s在虹鱒中具有諸多亞型，探究熱脅迫狀態下不同hsps亞型普遍的和特異的生理功能，對了解虹鱒適應熱脅迫的生理機制具有重要的生理意義。

多倍體誘導技術在魚類育種中得到了廣泛應用，人工誘導多倍體也獲得了成功。多倍體魚類具有生長快、體型大等經濟價值。同時由于三倍體雌性虹鱒性腺不發育，即使養殖個體逃逸到天然水體中，也不會污染本地基因庫，因此具有極大的推廣價值[10]。然而，當處于生長的次優條件時，或者與二倍體魚類混養時，與二倍體魚類相比，三倍體魚類具有較差的抗逆性，表現出較差的生長狀況，三倍體魚類對于環境的要求更加苛刻，三倍體鮭科魚類的抗高溫能力以及抗低氧能力低于同科的二倍體魚類。三倍體魚類的畸形發生率更高，游動能力更差。與二倍體魚類混養時，表現出較低的攻擊性。[11]。Biron and Benfey曾研究表明[12]，二倍體和三倍體鮭科魚類面對應激，在神經內分泌水平上無顯著差異。然而，三倍體鮭科魚在細胞層次上的應答水平尚無相關研究。由于三倍體魚類遺傳物質的增加，導致魚類細胞核和細胞的體積增加，表面積比與體積比減小，這可能會導致一些分子進出入細胞的能力降低，因此改變了細胞面對應激時的應對水平。

在全球變暖的大背景下，黃海北部海域的水溫波動劇烈，對于魚類的養殖產生嚴重的影響。本研究的目的是對比二倍體和三倍體虹鱒幼魚在應對48h熱應激和48h恢復期過程中不同hsp70和hsp90基因亞型mRNA的表達變化。本研究期望探究二倍體和三倍體魚類之間潛在的抗逆性能差異，為三倍體虹鱒的人工養殖提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料

實驗于2018年6月，于山東省濰坊市臨朐縣寺頭鎮洛莊村臨朐鮭鱒漁業發展有限公司進行。實驗用三倍體虹鱒200尾(體長(4.764±0.099) cm，體重(1.74±0.055) g)，二倍體虹鱒200尾(體長(4.428±0.131) g，體重(1.582±0.035) g)，二倍體和三倍體所用魚在規格上無統計學差異(P>0.05)，所有實驗用魚健康、活潑，并且為同一批次孵化。實驗魚在循環水系統中暫養1周，暫養以及實驗期間全循環流水，連續充氣，pH為6.6～7.0，溶氧(DO)>6 mg/L。

實驗用試劑主要有，RNAiso Reagent 試劑、Taq 酶、DNaseⅠ (RNasefree)、RNasin、RNA 酶和 SYBR Premix Ex Taq 均購自 TaKaRa 公司，表達所需的引物均由華大基因合成。

1.2 方法

1.2.1 實驗設計和樣品采集 實驗設置2個對照組和2個處理組，對照組分別為二倍體對照組和三倍體對照組，處理組為二倍體處理組和三倍體處理組。2個對照組的幼魚在96 h的實驗全程中置于14 ℃水體中，2個處理組幼魚在22 ℃水體中熱應激48 h后，放入14 ℃水體中恢復48 h。每組水溫誤差在1 ℃以內。每個處理組設3個平行，每個平行放入20尾魚。在實驗開始的第0、6、24、48、72和96 h對4個組別的虹鱒幼魚進行采樣。每個組每次采樣3尾實驗魚。

采樣前將實驗魚放入MS-222麻醉劑(40～45 g/L)中麻醉，以減少采樣操作對實驗的影響，實驗魚無掙扎之后迅速解剖肝臟和肌肉組織，液氮中速凍然后轉移至-80 ℃超低溫冰箱中保存備用。

1.2.2 總RNA的提取和cDNA的合成 按照TRIzol試劑盒的操作手冊使用TRIzol試劑對樣品中的總RNA進行提取，所有試驗過程嚴格操作，謹防RNA 污染。對總RNA的濃度和純度進行檢測后視情況對RNA進行稀釋，并利用takara的反轉錄試劑盒合成cDNA，cDNA產物置于-20 ℃儲存備用。

1.2.3 實時定量PCR標準曲線的建立以及目的基因的定量測定 根據Ojima等[13]的研究成果合成hsp70a、hsp70b的引物序列。hsp90a1a、hsp90a1b、hsp90a2a、hsp90a2b、hsp90b1、hsp90b2引物序列由NCBI上所發表的根據Garcia de la serrana和Johnston[14]所研究的大西洋鮭hsp DNA序列所定位出的虹鱒cDNA序列和β-actin基因序列使用Primer 5.0軟件設計引物，引物序列如下。送交華大基因合成。引物序列及PCR產物長度如表1所示。

對樣品 cDNA 進行 4 倍梯度稀釋，以稀釋后的cDNA 為模板進行實時定量 PCR，每個模板設 3 個平行。PCR 反應體系 (共 20 μL): SYBR Premix Ex Taq 10 μL，上、下游引物各 0.8 μL，模板 2μL，ddH2O 6 μL，ROX reference dye (50×)0.4 μL。反應條件: 95 ℃下預變性30 s，95 ℃下變性5 s，相應基因退火溫度下退火30 s，75 ℃下延伸 30 s，共進行 40 個循環。實時連續測定擴增過程中產生的熒光，建立標準曲線。

對樣品中的 cDNA 進行目的基因擴增，反應體系以及反應條件與標準曲線的建立一致，每個樣品設 3 個重復。根據實時熒光定量 PCR 的結果，以β-actin 為內參基因，根據目的基因以及β-actin的 Ct值計算出ΔCt數值，再根據對照組目的基因以及β-actin的 Ct值計算出ΔΔCt數值，按照 2-ΔΔCt法計算目的基因的相對表達情況。

1.3 數據處理

試驗數據均用平均值±標準誤(Mean ± SEM)表達。采用SPSS 19. 0 軟件進行單因素方差分析(One-way ANOVA)和Duncan’s多重比較，顯著性水平設為0.05。使用GraphPad Prism 5對數據進行作圖。

表 1 虹鱒 hsps家族和 β-actin基因表達所用引物Table 1 Primers used in gene expression of hsps and β-actin genes in rainbow trout

2 結果

2.1 熱脅迫期間，肝臟與肌肉hsp70a、hsp70b基因的相對表達

熱脅迫期間，不同倍性虹鱒肝臟與肌肉hsp70a、hsp70b基因的相對表達如圖1所示。二倍體、三倍體虹鱒肝臟與肌肉hsp70a基因的相對表達在熱脅迫6h后均顯著升高(P<0.05)至峰值，在熱脅迫48 h后，二倍體虹鱒肝臟hsp70a基因的相對表達恢復到基底水平，與熱脅迫前無顯著差異(P>0.05，見圖1A)。二倍體虹鱒肌肉、三倍體虹鱒肝臟與肌肉的hsp70a基因相對表達在熱脅迫72 h后恢復，與熱脅迫前(0 h)無顯著差異(P>0.05，見圖1A)。

二倍體、三倍體虹鱒肝臟與肌肉hsp70b基因的相對表達在熱脅迫6 h后顯著升高(P<0.05)，在熱脅迫48 h后顯著下降，與熱脅迫前(0 h)無顯著差異(P>0.05，見圖1B)。二倍體虹鱒肝臟、三倍體虹鱒肝臟與肌肉hsp70b基因的相對表達在熱脅迫6 h后達到峰值，而二倍體虹鱒肌肉的hsp70b基因相對表達量在熱脅迫24 h后達到峰值(見圖1B)。

2.2 熱脅迫期間，肝臟與肌肉hsp90a1a、hsp90a1b、hsp90a2a、hsp90a2b和hsp90b2基因的相對表達

熱脅迫期間，不同倍性虹鱒肝臟與肌肉hsp90a1a、hsp90a1b、hsp90a2a、hsp90a2b、hsp90b1和hsp90b2基因的相對表達如圖2所示。二倍體、三倍體虹鱒肝臟與肌肉hsp90a1a基因的相對表達在熱脅迫6 h后均顯著升高(P<0.05)，在熱脅迫48 h后顯著下降，二倍體、三倍體虹鱒肝臟與肌肉hsp90a1a基因的相對表達在72 h恢復到基底水平，與熱脅迫前無顯著差異(P>0.05，見圖2A)。二倍體虹鱒肝臟與肌肉、三倍體虹鱒肌肉hsp90a1a基因的相對表達在熱脅迫6 h后達到峰值，而三倍體虹鱒肝臟的hsp90a1a基因相對表達量在熱脅迫24 h后達到峰值(見圖2A)。

(圖中不同字母表示同一組織不同時間點存在顯著性差異(P< 0.05，單因素方差分析與Duncan’s多重比較)。Different letters in one sample time indicate significant differences within same tissue (P<0.05, one-way ANOVA, followed by Duncan’s multiple range test).)

圖1 急性高溫脅迫對二倍體、三倍體虹鱒幼魚肝臟和 肌肉hsp70smRNA表達水平的影響(n=3)
Fig.1 Effect of high temperature on hepatic and musclehsp70smRNA expressions of diploid and triploid juvenile rainbow trout (n=3)

二倍體、三倍體虹鱒肝臟和肌肉hsp90a1b基因的相對表達在熱脅迫6 h后顯著升高(P<0.05)，在熱脅迫48 h后，開始下降。二倍體虹鱒肝臟與肌肉、三倍體虹鱒肌肉hsp90a1b基因的相對表達量在熱脅迫24 h后達到峰值，而三倍體虹鱒肝臟hsp90a1b基因的相對表達量在6h后達到峰值。在熱脅迫48 h后，二倍體和三倍體虹鱒肝臟hsp90a1b基因的相對表達恢復至熱脅迫前水平(P>0.05，見圖2B)。而二倍體和三倍體虹鱒肌肉hsp90a1b基因的相對表達在熱脅迫72 h后才恢復至基底水平(見圖2B)。

二倍體、三倍體鱒肝臟與肌肉hsp90a2a基因的相對表達在熱脅迫6 h后均顯著升高(P<0.05)至峰值，在熱脅迫48 h后開始下降。二倍體虹鱒肝臟和三倍體虹鱒肌肉hsp90a2a基因的相對表達在熱脅迫48 h后恢復至實驗開始前水平(P>0.05，見圖2C)。而二倍體虹鱒肌肉和三倍體虹鱒肝臟hsp90a2a基因相對表達量在72 h后才回復至基底水平(見圖2C)。

(圖中不同字母表示同一組織不同時間點存在顯著性差異(P< 0.05，單因素方差分析與Duncan’s多重比較)。Different letters in one sample time indicate significant differences within same tissue (P<0.05, one-way ANOVA, followed by Duncan’s multiple Range test).)

圖2 急性高溫脅迫對二倍體、三倍體虹鱒幼魚肝臟和 肌肉hsp90a家族 mRNA表達水平的影響(n=3)
Fig.2 Effect of high temperature on hepatic and musclehsp90amRNA expressions of diploid and triploid juvenile rainbow trout(n=3)

二倍體、三倍體鱒肝臟與肌肉hsp90a2b基因的相對表達在熱脅迫6 h后均顯著升高(P<0.05)至峰值，在熱脅迫24 h后開始下降。三倍體虹鱒肌肉在熱脅迫24 h后hsp90a2b基因相對表達量恢復到實驗前水平，而三倍體虹鱒肝臟，二倍體虹鱒肌肉，二倍體虹鱒肝臟分別在在熱脅迫48、72和96 h后hsp90a2b基因相對表達量恢復到實驗前水平(P>0.05，見圖2D)。

(圖中不同字母表示同一組織不同時間點存在顯著性差異(P< 0.05，單因素方差分析與Duncan’s多重比較)。Different letters in one sample time indicate significant differences within same tissue (P<0.05, one-way ANOVA, followed by Duncan’s multiple Range test).)

圖3 急性高溫脅迫對二倍體、三倍體虹鱒幼魚肝臟和 肌肉hsp90b家族mRNA表達水平的影響(n=3)
Fig.3 Effect of high temperature on hepatic and musclehsp90bmRNA expressions of diploid and triploid juvenile rainbow trout (n=3)

二倍體虹鱒肝臟hsp90b1基因相對表達量在熱脅迫6 h后顯著上升并且達到峰值(P<0.05)，隨后開始下降，在熱脅迫72 h后表達量降低到實驗開始前的水平(P>0.05，見圖2E)。三倍體虹鱒肝臟hsp90b1基因相對表達量在24 h達到最高水平，隨后逐漸下降，在96 h降低回實驗開始前水平。二倍體、三倍體虹鱒肌肉組織中hsp90b1基因的表達量在第6 h升高，但二倍體幼魚增加量不顯著，隨后在第24 h降低至實驗前水平，二倍體、三倍性虹鱒肌肉中hsp90b1表達量分別又在72和48 h時再次升高，在實驗結束后沒有恢復到脅迫前水平(P>0.05，見圖3A)。

二倍體、三倍體虹鱒肝臟和肌肉hsp90b2基因相對表達量在熱脅迫6 h后顯著升高(P<0.05)，在熱脅迫48 h后顯著下降與熱脅迫前(0 h)無顯著差異(P>0.05，見圖2F)二倍體虹鱒肌肉、三倍體虹鱒肝臟與肌肉hsp90b2基因的相對表達在熱脅迫6 h后達到峰值，而二倍體虹鱒肝臟的hsp90b2基因相對表達量在熱脅迫24 h后達到峰值(見圖3B)。

由此可見，盡管hsp70s和hsp90s的各個成員均能對高溫脅迫做出反應，但各個基因亞型具有組織特異性和時間特異性，且各個基因的應答幅度也不盡相同。

2.3 熱脅迫期間，二倍體、三倍體虹鱒hsp70s、 hsp90s基因的相對表達

在熱脅迫開始48 h時間內，二倍體、三倍體虹鱒幼魚均有游動失去平衡的情況出現。在熱脅迫實驗過程中，二倍體、三倍體處理組均無死亡現象。

由圖4可知，在熱脅迫開始之前(0 h)，二倍體、三倍體虹鱒幼魚hsps的基礎表達量無顯著差異(P<0.05)，表達量很低或基本不表達。熱脅迫后，二倍體、三倍體虹鱒的肝臟和肌肉組織hsp70s、hsp90s基因的相對表達量具有相同的變化趨勢。在hsps相對表達量的峰值的時間點，即熱脅迫開始后6和24 h，三倍體虹鱒hsps基因相對表達量顯著高于二倍體虹鱒hsps基因相對表達量(P<0.05)。

3 討論

魚類屬于變溫動物，因此水溫是影響魚類生長發育最重要的因素之一。虹鱒屬于冷水性魚類，最適水溫為12～18 ℃，在較大水體，溶氧豐富的情況下可忍受24 ℃的溫度[1]。基于此進行了預實驗，實驗設置14(對照組)、18、22和26 ℃ 4個水平進行預實驗，每個處理組放魚30尾，記錄每一組魚類的生理情況。結果發現26 ℃處理下的虹鱒幼魚在48 h之內有50%以上個體出現平衡或鰓蓋停止運動情況出現。因此在正式試驗中選擇22 ℃作為高溫處理的溫度，以便于在48 h之后將水溫恢復到14 ℃魚體能夠恢復正常游動。

本文首次在高溫脅迫下，對hsp70s和hsp90s基因各個亞型在二倍體、三倍體虹鱒肝臟和肌肉中的表達量進行了定量測定。本研究中，hsp70s和hsp90s家族的8個基因亞型在熱脅迫后表達量均顯著增加。其他硬骨魚的研究也發現，熱脅迫導致hsp70a和hsp70bmRNA轉錄水平和其蛋白表達水平的增高。本文對hsp70a和hsp70bmRNA轉錄水平進行直接比較，在虹鱒幼魚的肝臟組織中，hsp70a基因的相對表達量最高升高了198.22倍，hsp70b基因的相對表達量升高了297.88倍，暗示hsp70b基因對熱脅迫更為敏感，與Ojima等[13]使用虹鱒RTG-2(虹鱒性腺細胞系)細胞的結果一致。相比于hsp70s2個亞型，hsp90s具有更多亞型，在本研究中觀察到了全部6個亞型的表達水平的改變。其中二倍體幼魚肝臟表達量增加倍數由多到少分別為：hsp90a2a(2036.58倍)、hsp90a2b(396.67倍)、hsp90b2(24.17倍)、hsp90a1b(16.97倍)、hsp90a1a(11.89倍)；而在二倍體虹鱒幼魚肝臟組織中hsp90b1 mRNA水平沒有顯著升高。三倍體幼魚肝臟表達量倍數由多到少分別為：hsp90a2a(3 188.07倍)、hsp90a2b(1 823.26倍)、hsp90a1b(753.52倍)、hsp90b2(357.07倍)、hsp90a1a(34.12倍)、hsp90b1(3.59倍)。前人研究證實虹鱒成魚hspsmRNA的表達水平與日齡相關，Basu等[15]認為隨虹鱒生長發育，應激反應有所降低。基于以上結論，我們推測虹鱒對急性高溫脅迫作出反應的主要hsps家族是hsp70(hsp70a、hsp70b)和hsp90家族的兩個成員(hsp90a2a、hsp90a2b)。同樣的結果也在高溫處理后的斑馬魚(Daniorerio)[16]、鯉魚(Cyprinuscarpio)[17]、大鱗大麻哈魚(Oncorhynchustshawytscha)[18]中被觀察到。并且在我們的實驗中，hsp90s(hsp90a2a、hsp90a2b)家族mRNA應答水平高于hsp70s和hsp90s的其他亞型。

(圖中相同字母不同大小寫表示不同組織同一個時間點存在顯著性差異(P<0.05，獨立樣本t檢驗)。Diffenent capital letters indicate significant differnces at same time point of the same tissue of diploid and triploid juvenile fish ( followed by indenpent t-test).)

圖4 急性高溫脅迫對二倍體、三倍體虹鱒幼魚肝臟和肌肉hspsmRNA表達水平的影響(n=3)
Fig.4 Effect of high temperatur on hepatic and musclehspsmRNA expressions of diploid and triploid juvenile rainbow trout (n=3)

在虹鱒二倍體幼魚肌肉組織中，高溫脅迫后hsp70b表達顯著升高548.80倍，hsp70a基因表達顯著升高895.72倍；并且hsp90s6個亞型在肌肉組織中應答幅度也不盡相同，分別為：hsp90a2a(550.75倍)、hsp90a2b(236.40倍)、hp90a1b(150.56倍)、hsp90a1a(60.97倍)、hsp90b1(5.64倍)，而在二倍體幼魚肌肉組織中hsp90b2 mRNA水平沒有顯著升高。在虹鱒三倍體幼魚肌肉組織中，高溫脅迫后hsp70b表達顯著升高383.97倍，hsp70a基因表達顯著增高8524.33倍；并且hsp90s6個亞型應答幅度也各有差異，分別為：hsp90a2a(2 655.96倍)、hsp90a1b(1 263.69倍)、hsp90a2b(674.22倍)、hsp90a1a(218.79倍)、hsp90b2(61.88倍)、hsp90b1(21.74倍)。因此我們推測對熱脅迫作出反應的主要hsps家族是hsp70(hsp70a、hsp70b)和hsp90家族的4個成員(hsp90a1a、hsp90a1b、hsp90a2a、hsp90a2b)，并且hsp70smRNA應答水平高于hsp90s。

HSPs是有機體在應激狀態下重要的應激蛋白之一，hsps基因在生物體穩態時表達量較低或不表達。當有機體遭遇外界不良環境刺激時，機體增強hsps的轉錄與翻譯。HSPs的生物學功能十分廣泛，不僅能夠維持蛋白質的空間構象，拯救或降解環境刺激導致的蛋白質錯誤折疊，在未折疊多肽鏈的折疊，蛋白質組裝及運輸，蛋白質的加工和降解等各方面都起到了至關重要的作用，由于本身不參與大分子蛋白質的組成而只起到調節活性的作用，因此被稱為“分子伴侶(Molecular Chaperone)”[19]。HSP70家族分為HSP70, HSC70, GRP78和GRP75[20]。其中hsp70為誘導型，即在正常細胞中不表達或表達量很少，但在應激源刺激下則大量表達。由于hsp70基因沒有內含子，轉錄過程初始便可以快速合成hsp70蛋白。近年研究發現hsp70b也無內含子[21]，為熱誘導表達，基礎表達量很低。在正常情況下hsp呈現負反饋調節，hsp70smRNA的半衰期僅有20 min左右，而在應激狀態下，hsp70smRNA穩定性增強，半衰期可延長至4h。因此我們推測在熱應激環境中，有機體通過增強hsp70s的轉錄和延長hsp70s的半衰期，維持hsp70s的高表達水平。

不同內、外環境因素對有機體的hsp90a和hsp90b表達水平的影響不同。hsp90a更容易受到溫度誘導，而hsp90b主要受有絲分裂影響，與細胞分化和細胞結構有關[22]。虹鱒hsp90b1基因在熱脅迫后48 h表達水平顯著上升，與其他基因變化趨勢不同。我們推測虹鱒幼魚在前48 h處于一個高于最適水溫的環境中，處于脅迫狀態，機體迅速產生hsps保護機體免受損傷，提高細胞對熱環境的耐受力。然而在48 h后，將水溫降至14 ℃，雖然此時水溫是虹鱒的最適生長水溫，但是溫度的突然變化仍可視作對有機體的脅迫，因此hsp水平在水溫發生降低之后仍有一個小的上漲。在對幾種抗氧化酶即超氧化物歧化酶(SOD)，過氧化氫酶(CAT)的酶活性測定過程中，也發現了在48 h時酶活性的上升此種類似的現象，表明hsps的mRNA表達增高與幾類抗氧化酶水平的增高是相一致的。激素和酶活性的變化往往發生在瞬間，不能作為可靠的應激指標，將hsp的mRNA表達水平作為動物應激水平和體質健康的評判標準更為準確。

本研究的目的之一是對比二倍體、三倍體虹鱒幼魚對溫度脅迫是否有分子響應水平的差異，未受脅迫的正常生理狀態下，二倍體、三倍體幼魚的紅細胞比容(Hct)在許多物種中無顯著差異，皮質醇，抗氧化酶，葡萄糖等水平也無顯著差異[23]。本研究中，二倍體、三倍體幼魚hsps各個基因的基礎表達量無顯著差異，與生理生化指標所顯示的結果相類似。在應激過程中，三倍體虹鱒hsps的mRNA表達的峰值顯著性高于二倍體虹鱒。我們推測熱應激后，虹鱒肝臟和肌肉細胞的蛋白質合成受到影響，大量的蛋白質因熱脅迫而錯誤折疊，無法行駛正常的生理功能。此外，大量錯誤折疊的蛋白質會在細胞(特別是內質網中)中累積，進一步引起細胞的氧化損傷，并大量積累活性氧類物質(Reactive oxygen species)，進而導致細胞的死亡。已知HSPs作為分子伴侶，可以拯救錯誤折疊的蛋白質，或是通過內質網降解構象異常的蛋白質(ER-associated degradation)[24]。本實驗發現熱脅迫后三倍體虹鱒hsps的mRNA表達水平更高，暗示三倍體虹鱒可以通過HSPs拯救錯誤的蛋白質折疊，降低細胞的氧化損傷。與我們的結果一致，Su[25]認為HSP70能提高抗氧化酶類的活性，進而消除游離的氧自由基，保護細胞免受氧化損傷。

在整個熱脅迫的過程中，二倍體、三倍體實驗組魚類都沒有出現死亡問題，這一結果表明本實驗所選取的高溫沒有超過虹鱒的耐受限度，仍在其可以調節的范圍之內。Kazumi等[26]認為，機體hsp70表達較高時，機體具有更強的應激能力，可以適應較大范圍的溫差變化。在醫學研究中，Li等提出HSP與蛋白質的折疊，激活，轉運與降解有關[27]。有研究認為HSP的功能不僅局限于改正錯誤折疊的蛋白質，還參與激活某些提供保護機制的關鍵蛋白，并幫助這些蛋白質轉運到靶位點，例如HSP可以穩定重要的免疫識別蛋白NLRs (Nucleotide-binding leucine-rich repeat receptors)，提高有機體的非獲得性免疫系統功能[28]。本實驗中三倍體虹鱒HSP的升高可以拯救錯誤折疊的蛋白質和消除游離的氧化自由基，為機體提供保護。

4 結語

本研究發現，虹鱒幼魚hsp70s和hsp90s的各成員均能對高溫脅迫做出反應，但各基因亞型具有組織特異性和時間特異性，且各個基因的應答幅度也不盡相同。熱應激6～24 h，三倍體幼魚肝臟和肌肉組織hsps的表達水平均顯著高于二倍體幼魚組織。表明三倍體虹鱒受到熱脅迫后，肌肉和肝臟細胞可以大量合成HSPs，拯救或清除錯誤折疊的蛋白質，維持細胞內蛋白質的穩態(Homeostasis)，維持蛋白質正常的生理功能，保護細胞免受蛋白質錯誤折疊而產生的氧化損傷、死亡。三倍體能夠通過更高的hsp表達，抵抗環境脅迫。