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桑枝多糖預(yù)防性給藥對(duì)腎缺血再灌注損傷模型小鼠炎癥反應(yīng)的影響及機(jī)制研究Δ

2019-07-27 02:45:16黃倩林佩璜鄭丹丹黃秋虹王梅愛陳慧勤施子祿泉州醫(yī)學(xué)高等專科學(xué)校基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)部生理教研室福建泉州36200福建醫(yī)科大學(xué)附屬泉州第一醫(yī)院腎內(nèi)科福建泉州362000
中國(guó)藥房 2019年13期
關(guān)鍵詞:小鼠劑量血清

黃倩,林佩璜,鄭丹丹,黃秋虹,王梅愛,陳慧勤,施子祿(.泉州醫(yī)學(xué)高等專科學(xué)校基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)部生理教研室,福建泉州 36200;2.福建醫(yī)科大學(xué)附屬泉州第一醫(yī)院腎內(nèi)科,福建泉州 362000)

腎缺血再灌注損傷(RIRI)是造成臨床急性腎衰竭的高危因素,其病理機(jī)制復(fù)雜,可能與再灌注后繼發(fā)的急性炎癥反應(yīng)密切相關(guān)[1]。Toll樣受體4(TLR4)是TLR家族中發(fā)現(xiàn)最早、研究最廣泛的模式識(shí)別受體之一,研究發(fā)現(xiàn),TLR4能夠特異性識(shí)別革蘭氏陰性細(xì)菌細(xì)胞壁上的脂多糖,并通過啟動(dòng)髓樣分化因子88和Toll白細(xì)胞介素受體兩條信號(hào)通路介導(dǎo)多種促炎因子的釋放[2]。此外,TLR4也可引起絲裂原活化蛋白激酶(MAPKs)等多條信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路[3]的活化,而作為MAPKs系統(tǒng)家族成員之一的p38絲裂原活化蛋白激酶(p38MAPK)可能在RIRI中發(fā)揮著重要的作用[4],如李榮山等[5]采用p38MAPK特異性抑制劑SB203580抑制RIRI引起的p38MAPK信號(hào)通路的激活后,腎損傷得到明顯緩解。另有研究發(fā)現(xiàn),在肝炎[6]或糖尿病腎病[7]時(shí),TLR4可誘導(dǎo)p38MAPK的活化,進(jìn)而確定了TLR4與p38MAPK間的上下游關(guān)系。

桑枝多糖(Ramulus moripolysaccharides,RMP)是從桑科植物桑樹(Morus albaL.)的干燥樹枝及嫩枝中提取得到的一種水溶性雜多糖,具有降糖、調(diào)脂、抗炎、抗氧化等多種藥理活性。有研究表明,桑枝及其提取物均可明顯減輕小鼠腦缺血組織損傷[8-9],而作為主要活性成分的RMP對(duì)腎臟有著很好的保護(hù)作用[10]。然而,目前對(duì)RMP的研究多集中于糖尿病或糖尿病腎病[10],而關(guān)于其對(duì)RIRI的研究迄今未見文獻(xiàn)報(bào)道。基于此,本研究擬通過建立小鼠RIRI模型,觀察RMP預(yù)防性給藥是否對(duì)RIRI小鼠有保護(hù)作用,并從TLR4/p38MAPK通路探討其可能的作用機(jī)制,為其臨床應(yīng)用提供一定的實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

1 材料

1.1 儀器

7100全自動(dòng)生化分析儀(日本日立公司);UVmini-1240紫外-可見分光光度計(jì)[日本島津國(guó)際貿(mào)易(上海)有限公司];ELX800光吸收酶標(biāo)儀(美國(guó)Bio-Tek公司);CX31-32C02光學(xué)顯微鏡(日本奧林巴斯公司);1600凝膠成像系統(tǒng)(上海天能科技有限公司);5810高速冷凍離心機(jī)(德國(guó)Eppendorf公司);MU4200DUVF超純水儀(上海淼康實(shí)業(yè)有限公司)。

1.2 藥品與試劑

桑枝采于浙江大學(xué)華家池校區(qū)桑園內(nèi),經(jīng)浙江大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院張素萍博士鑒定為桑科植物桑樹的干燥嫩枝;阿托伐他汀片(大連輝瑞制藥有限公司,批號(hào):111010K,規(guī)格:10 mg);小鼠白細(xì)胞介素1β(IL-1β)、IL-10酶聯(lián)免疫吸附(ELISA)檢測(cè)試劑盒(北京安迪華泰科技有限公司,批號(hào):E-EL-M0037、E-EL-M0046);IL-6、小鼠腫瘤壞死因子α(TNF-α)ELISA檢測(cè)試劑盒(上海中喬新舟生物科技有限公司,批號(hào):EK0411、YM-U6120);兔源性抗TLR4多克隆抗體(批號(hào):ab13556)、兔源性抗p38MAPK單克隆抗體(批號(hào):ab170099)、兔源性抗磷酸化p38MAPK(p-p38MAPK)多克隆抗體(批號(hào):ab4822)和內(nèi)參兔源性抗β-肌動(dòng)蛋白(β-actin)多克隆抗體(批號(hào):ab8227)均購(gòu)自英國(guó)Abcam公司;辣根過氧化物酶(HRP)標(biāo)記的二抗(批號(hào):A0208)、十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)蛋白上樣緩沖液(批號(hào):P0015)均購(gòu)自上海碧云天生物技術(shù)有限公司。

1.3 動(dòng)物

60只成年C57BL/6小鼠,♂,8~12周齡,SPF級(jí),體質(zhì)量21~25 g,由上海斯萊克實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限公司提供[使用許可證號(hào):SYXK(滬)2017-0005]。飼以標(biāo)準(zhǔn)顆粒飼料,自由飲水,5只/籠,飼養(yǎng)于人工黑暗和光照交替(12 h/12 h)、溫度在22℃左右、濕度在50%左右的環(huán)境中。

2 方法

2.1 RMP的提取與精制

桑枝切片后于45℃烘箱中烘干,粉碎備用。取桑枝粗粉50 g,按一定比例加入石油醚500 mL,90℃水浴中回流1 h,抽濾。濾渣揮發(fā)干后,加80%乙醇500 mL,100℃水浴中回流提取2次,每次1 h,抽濾。待濾渣揮干后,加入雙蒸水500 mL,超聲(頻率:80 kHz,功率:220 W)處理40 min,100℃水浴中回流提取2次,每次1.5 h,過濾,合并濾液,經(jīng)40 000 r/min離心10 min,收集上清液,真空干燥后得濃縮液200 mL,加入一定體積乙醇,使乙醇終體積分?jǐn)?shù)為80%,充分拌勻后,4℃靜置過夜,抽濾,收集沉淀物,即為桑枝粗多糖。將粗多糖置于蒸餾水中溶解,Sevage法多次萃取后除去蛋白質(zhì),流動(dòng)自來水連續(xù)透析48 h,再用雙蒸水連續(xù)透析24 h,在透析液中加入一定體積乙醇,使乙醇終體積分?jǐn)?shù)為80%,充分拌勻后,4℃靜置過夜,抽濾,45℃真空干燥,所得即為精制RMP,經(jīng)紫外光譜[11]測(cè)定樣品中的RMP純度達(dá)86.3%。

2.2 RIRI模型的制備

RIRI模型的具體制備過程如下[12-13]:腹腔注射2%戊巴比妥鈉(40 mg/kg)麻醉小鼠,于腹正中線行縱行切口(2.0~2.5 cm),暴露并游離雙側(cè)腎臟腎蒂。用無創(chuàng)動(dòng)脈夾夾閉雙側(cè)腎臟腎蒂,阻斷45 min后,去除動(dòng)脈夾恢復(fù)血流再灌24 h。模型制備成功的判定標(biāo)準(zhǔn)[13]:術(shù)中小鼠腎臟由鮮紅色變成紫黑色,去除動(dòng)脈夾后,腎臟又由紫黑色轉(zhuǎn)為鮮紅色,且術(shù)后3 h內(nèi)小鼠恢復(fù)清醒。假手術(shù)組小鼠僅打開腹腔并分離雙側(cè)腎臟腎蒂,不予夾閉。

2.3 分組與給藥

將60只小鼠適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后隨機(jī)分成6組,即假手術(shù)組、模型組、阿托伐他汀組(陽性對(duì)照,15 mg/kg)[14]和RMP低、中、高劑量(300、600、1 200 mg/kg)[10],每組10只。4個(gè)給藥組小鼠于術(shù)前1周每天同一時(shí)間點(diǎn)分別灌胃相應(yīng)藥物,假手術(shù)組和模型組小鼠灌胃等量生理鹽水。末次給藥1 h后,按“2.2”項(xiàng)下方法進(jìn)行手術(shù)。

2.4 指標(biāo)檢測(cè)

2.4.1 血清中Scr和BUN水平的檢測(cè) 缺血45 min再灌注24 h后,各組選取7只小鼠(因造模過程中造模組均有2~3只小鼠造模失敗,故最終每組選7只小鼠進(jìn)行實(shí)驗(yàn)),麻醉后下腔靜脈取血,室溫靜置1 h,待血液自然凝固后以3 000 r/min離心10 min,收集血清。取部分血清,采用全自動(dòng)生化分析儀檢測(cè)血清中Scr和BUN水平。

2.4.2 腎臟病理組織學(xué)變化觀察 取血后,將小鼠迅速處死并取相同部位腎組織,4%多聚甲醛固定,常規(guī)石蠟包埋、切片(3 μm),行蘇木精-伊紅(HE)染色,光鏡下觀察其腎臟組織形態(tài)結(jié)構(gòu)的變化。

2.4.3 血清中IL-1β、IL-6、IL-10和TNF-α水平檢測(cè) 取“2.4.1”項(xiàng)下剩余部分血清,按照ELISA試劑盒上的步驟檢測(cè)血清中IL-1β、IL-6、IL-10和TNF-α水平。

2.4.4 腎皮質(zhì)中TLR4、p38MAPK、p-p38MAPK蛋白表達(dá)水平檢測(cè) 各組選取6只小鼠[因人為因素,造成RMP高劑量組小鼠皮質(zhì)(1份)損壞,為保證每組數(shù)量統(tǒng)一,最終每組選擇6只小鼠進(jìn)行實(shí)驗(yàn)]取相同部位腎皮質(zhì),冰上玻璃勻漿器研磨組織后加相應(yīng)比例(20 mg/200 μL)預(yù)冷的蛋白裂解液,繼續(xù)研磨至勻漿,然后在4℃下以14 000 r/min離心5 min,留上清。取30 μL上清液采用二喹啉甲酸(BCA)法進(jìn)行蛋白定量。取蛋白樣品(30 μg)進(jìn)行SDS-PAGE電泳分離,然后以260 mA恒流電轉(zhuǎn)移至硝酸纖維膜(PVDF膜)上。轉(zhuǎn)膜結(jié)束后,置于含5%脫脂奶粉的洗滌液中室溫封閉1 h,分別加入TLR4抗體(1∶1 000)、p38MAPK抗體(1∶3 000)、p-p38MAPK抗體(1∶1 000)和內(nèi)參β-actin抗體(1∶3 000),4 ℃搖床過夜,次日洗膜后加入HRP標(biāo)記的二抗,室溫?fù)u床孵育1.5 h,增強(qiáng)化學(xué)發(fā)光(ECL)發(fā)光、顯影,采用凝膠成像分析系統(tǒng)進(jìn)行圖像分析,獲取各組蛋白條帶的光密度值,以目的蛋白光密度值與β-actin光密度值的比值表示目的蛋白的相對(duì)表達(dá)水平。

2.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

采用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。數(shù)據(jù)以±s表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用t檢驗(yàn)。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

3 結(jié)果

3.1 RMP預(yù)防性給藥對(duì)RIRI模型小鼠血清中Scr和BUN水平的影響

與假手術(shù)組比較,模型組小鼠血清中Scr和BUN水平明顯升高(P<0.01),提示RIRI造模成功;與模型組比較,阿托伐他汀組和RMP各劑量組小鼠血清中Scr和BUN水平均明顯降低(P<0.05或P<0.01),表明RMP預(yù)防性給藥能夠減輕小鼠RIRI癥狀。各組小鼠血清中Scr和BUN水平測(cè)定結(jié)果見表1。

表1 各組小鼠血清中Scr、BUN水平測(cè)定結(jié)果(±s,n=7)Tab 1 Serum levels of Scr and BUN of mice in each group(±s,n=7)

表1 各組小鼠血清中Scr、BUN水平測(cè)定結(jié)果(±s,n=7)Tab 1 Serum levels of Scr and BUN of mice in each group(±s,n=7)

注:與假手術(shù)組比較,**P<0.01;與模型組比較,#P<0.05,##P<0.01Note:vs.sham operation group,**P<0.01;vs.model group,#P<0.05,##P<0.01

BUN,mmol/L 6.59±0.64 35.27±3.69**19.54±2.41##29.55±3.02#24.48±2.87##19.87±2.42##組別假手術(shù)組模型組阿托伐他汀組RMP低劑量組RMP中劑量組RMP高劑量組劑量,mg/kg 15 300 600 1 200 Scr,μmol/L 21.35±2.54 175.61±20.38**80.42±9.28##124.57±14.26#106.48±11.59##83.76±9.44##

3.2 RMP預(yù)防性給藥對(duì)RIRI模型小鼠腎臟病理組織學(xué)變化的影響

假手術(shù)組小鼠腎組織結(jié)構(gòu)完整,腎小管上皮細(xì)胞排列整齊。模型組小鼠腎組織中腎小管上皮細(xì)胞大量變性壞死、脫落,腎小管管腔明顯擴(kuò)張,管腔中可見管型,間質(zhì)充血與炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)。與模型組比較,阿托伐他汀組和RMP各劑量組小鼠腎臟病理損傷均得到不同程度改善,表現(xiàn)為腎小管上皮細(xì)胞腫脹、壞死、脫落程度、炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)程度減輕,其中RMP中、高劑量組較為效果顯著,但RMP低劑量組效果不明顯,這說明中、高劑量RMP預(yù)防性給藥能夠減輕RIRI模型小鼠腎組織病理損傷,結(jié)果見圖1。

圖1 各組小鼠腎臟病理組織學(xué)觀察結(jié)果(×200)Fig 1 Observation of renal histopathological of mice in each group(×200)

3.3 RMP預(yù)防性給藥對(duì)RIRI模型小鼠血清中IL-1β、IL-6、IL-10和TNF-α水平的影響

與假手術(shù)組比較,模型組小鼠血清中IL-1β、IL-6、IL-10和TNF-α水平均明顯升高(P<0.01)。與模型組比較,阿托伐他汀組和RMP各劑量組小鼠血清中IL-1β和IL-6水平明顯降低(P<0.05或P<0.01),阿托伐他汀組和RMP高劑量組小鼠血清中IL-10水平進(jìn)一步升高(P<0.05),阿托伐他汀組和RMP中、高劑量組小鼠血清中TNF-α水平明顯降低(P<0.05或P<0.01),這表明RMP預(yù)防性給藥能夠減輕RIRI后的炎癥損傷,且以RMP中、高劑量效果最為明顯,結(jié)果見表2。

表2 各組小鼠血清中IL-1β、IL-6、IL-10和TNF-α水平測(cè)定結(jié)果(±s,n=7,ng/L)Tab 2 Serum levels of IL-1β,IL-6,IL-10 and TNF-α of mice in each group(±s,n=7,ng/L)

表2 各組小鼠血清中IL-1β、IL-6、IL-10和TNF-α水平測(cè)定結(jié)果(±s,n=7,ng/L)Tab 2 Serum levels of IL-1β,IL-6,IL-10 and TNF-α of mice in each group(±s,n=7,ng/L)

注:與假手術(shù)組比較,**P<0.01;與模型組比較,#P<0.05,##P<0.01Note:vs.sham operation group,**P<0.01;vs.model group,#P<0.05,##P<0.01

TNF-α 38.65±1.97 81.24±5.35**55.47±4.07##78.57±5.26 69.46±4.78#57.12±4.16##組別假手術(shù)組模型組阿托伐他汀組RMP低劑量組RMP中劑量組RMP高劑量組劑量,mg/kg 15 300 600 1 200 IL-1β 3.14±0.12 9.55±0.54**5.21±0.24##7.43±0.46#6.01±0.39##5.63±0.36##IL-6 52.67±2.16 85.83±4.15**58.65±3.43##71.47±4.06#70.68±3.98#64.31±3.55##IL-10 18.57±0.56 22.62±0.85**32.75±1.33##22.75±0.85 23.16±0.91 30.42±1.27##

3.4 RMP預(yù)防性給藥對(duì)RIRI模型小鼠腎皮質(zhì)中TLR4、p38MAPK、p-p38MAPK蛋白表達(dá)的影響

與假手術(shù)組比較,模型組小鼠腎皮質(zhì)中TLR4、p38MAPK和p-p38MAPK蛋白表達(dá)水平明顯升高(P<0.01);與模型組比較,阿托伐他汀組和RMP各劑量組小鼠腎皮質(zhì)中TLR4和p-p38MAPK蛋白表達(dá)水平明顯降低(P<0.05或P<0.01),表明RMP對(duì)RIRI小鼠的抗炎作用可能與抑制TLR4/p38MAPK信號(hào)通路激活有關(guān)。各組小鼠腎皮質(zhì)中TLR4、p38MAPK、p-p38MAPK蛋白表達(dá)的電泳圖見圖2,測(cè)定結(jié)果見表3。

圖2 各組小鼠腎皮質(zhì)中TLR4、p38MAPK、p-p38MAPK蛋白表達(dá)的電泳圖Fig 2 Electrophoregram of protein expressions of TLR4,p38MAPK and p-p38MAPK in renal cortex of mice in each group

表 3 各組小鼠腎皮質(zhì)中 TLR4、p38MAPK、pp38MAPK蛋白表達(dá)水平測(cè)定結(jié)果(x±s,n=6)Tab 3 Protein expressions of TLR4,p38MAPK and p-p38MAPK in renal cortex of mice in each group(x±s,n=6)

4 討論

組織或器官缺血后再恢復(fù)缺血區(qū)的血流供應(yīng),往往會(huì)引起更為嚴(yán)重的結(jié)構(gòu)損傷和功能障礙[15]。腎臟作為高灌注器官,對(duì)缺血及再灌注均比較敏感[16],缺血會(huì)導(dǎo)致腎血流量下降,腎小管阻塞,嚴(yán)重者腎小管壞死,導(dǎo)致再灌注后腎損傷,甚至引起急性腎衰竭[17]。因此,抑制再灌注損傷是預(yù)防缺血性急性腎衰竭的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。血清Scr和BUN水平在一定程度上可反映腎功能的損害程度,是常用的觀察腎功能狀況的指標(biāo)。本研究通過構(gòu)建RIRI小鼠模型,觀察RMP預(yù)防性給藥對(duì)小鼠RIRI的保護(hù)作用,結(jié)果顯示RMP預(yù)防性給藥能夠減輕RIRI小鼠的腎功能,明顯降低其血清中Scr及BUN水平,同時(shí),病理切片也證實(shí)了RMP對(duì)小鼠腎臟結(jié)構(gòu)損傷的改善作用。阿托伐他汀對(duì)預(yù)防RIRI具有積極的作用,研究顯示阿托伐他汀可能通過TLR4信號(hào)途徑發(fā)揮其非依賴降血脂的腎臟保護(hù)作用[14],按照公認(rèn)有效、同類可比的原則,故選用阿托伐他汀作為本研究的陽性對(duì)照藥。

RIRI發(fā)病機(jī)制非常復(fù)雜,主要涉及氧化應(yīng)激、炎癥損傷、細(xì)胞凋亡、鈣超載等,而炎癥損傷在其發(fā)病過程中具有重要作用[18]。TLR4/p38MAPK是介導(dǎo)細(xì)胞增殖、凋亡、分化以及細(xì)胞炎癥等作用的關(guān)鍵性信號(hào)通路,近年來,細(xì)胞內(nèi)TLR4/p38MAPK信號(hào)通路的活化在器官缺血再灌注損傷中的作用備受關(guān)注。有研究顯示,發(fā)生肝缺血再灌注誘導(dǎo)的急性肺衰竭[19]或缺血再灌注心肌損傷時(shí)[20],TLR4/p38MAPK信號(hào)通路均被激活,通過促進(jìn)炎性細(xì)胞因子和凋亡誘導(dǎo)因子生成等許多途徑誘導(dǎo)細(xì)胞死亡,從而在缺血再灌注損傷病理過程中發(fā)揮著重要作用。本研究發(fā)現(xiàn),RIRI后,小鼠腎皮質(zhì)中TLR4、p38MAPK以及p-p38MAPK蛋白表達(dá)水平均明顯升高,說明TLR4/p38MAPK信號(hào)通路被激活,而RMP預(yù)防性給藥后能不同程度地抑制RIRI誘導(dǎo)的TLR4和p-p38MAPK蛋白高表達(dá),從而使TLR4/p38MAPK信號(hào)通路失活,這可能是其發(fā)揮腎保護(hù)作用的分子機(jī)制之一。

另有研究表明,臟器缺血后TLR4/p38MAPK信號(hào)通路的激活使組織中的單核細(xì)胞、巨噬細(xì)胞、血管內(nèi)皮細(xì)胞等炎癥細(xì)胞大量活化,產(chǎn)生和分泌大量炎性細(xì)胞因子,這些炎性細(xì)胞因子多具有免疫調(diào)節(jié)作用,廣泛參與細(xì)胞生長(zhǎng)、分化、修復(fù)和免疫過程,此外,炎性細(xì)胞因子密切關(guān)聯(lián)機(jī)體的炎癥反應(yīng),引發(fā)細(xì)胞因子反應(yīng)逐級(jí)放大的瀑布效應(yīng),進(jìn)而引起全身炎癥反應(yīng)綜合征。炎性細(xì)胞因子包括促炎細(xì)胞因子(IL-1β、IL-6和TNF-α等)和抗炎細(xì)胞因子(IL-10等),促炎細(xì)胞因子在炎癥反應(yīng)的誘導(dǎo)和延續(xù)中起主要作用,而抗炎細(xì)胞因子可反過來抑制炎癥細(xì)胞釋放促炎細(xì)胞因子、趨化因子等細(xì)胞因子,促炎細(xì)胞因子和抗炎細(xì)胞因子的失衡被認(rèn)為是RIRI發(fā)生的基礎(chǔ)[21]。本研究發(fā)現(xiàn),RIRI后,小鼠血清IL-1β、IL-6、IL-10和TNF-α水平明顯升高,RMP預(yù)防性給藥后能不同程度地抑制RIRI引起的血清IL-1β、IL-6和TNF-α水平的升高,并且高劑量RMP還能進(jìn)一步升高血清IL-10水平,說明RMP具有減輕缺血損傷后炎性細(xì)胞因子瀑布樣級(jí)聯(lián)反應(yīng),增強(qiáng)抗炎效應(yīng),從而發(fā)揮其對(duì)RIRI小鼠的保護(hù)作用。

綜上所述,RMP預(yù)防性給藥對(duì)RIRI小鼠的保護(hù)作用可能與抑制TLR4/p38MAPK信號(hào)通路激活,進(jìn)而改善腎功能,減輕腎臟病理損傷,減輕炎癥損傷,增強(qiáng)抗炎等作用有關(guān)。

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