樁蛋白基因克隆及其在肝癌細胞Hep G2中的作用

孫達權?石靜?石松?薛殿婷?徐瑩瑩

【摘要】目的 克隆樁蛋白基因（PXN）的蛋白編碼區并構建PXN基因真核表達載體，建立PXN穩轉肝癌細胞株，分析PXN基因對肝癌細胞的作用。方法 Trizol法提取肝癌細胞總RNA并逆轉錄成cDNA，PCR法擴增PXN基因蛋白編碼區并構建真核表達質粒pEBFP-PXN。脂質體法轉染肝癌細胞Hep G2，G418篩選培養獲得樁蛋白高表達穩轉肝癌細胞株。實時無標記細胞分析檢測細胞生長速率，細胞創傷-愈合實驗分析細胞遷移速率。蛋白免疫印跡法檢測細胞內蛋白表達變化。結果 成功克隆PXN基因并構建真核表達載體pEBFP-PXN。獲得樁蛋白高表達單克隆穩轉肝癌細胞株，胞內顯示藍色熒光，蛋白免疫印跡法顯示穩轉株內表達外源融合蛋白BFP-PXN。樁蛋白表達不影響Hep G2肝癌細胞的生長速率但可以抑制其細胞遷移，穩轉細胞上皮標志蛋白E-Cadherin表達升高、間質標志物N-Cadherin和Vimentin表達下降。結論 PXN基因不影響Hep G2肝癌細胞生長增殖速率但可以抑制其細胞遷移，這可能與其可以影響肝癌細胞上皮-間質轉化標志蛋白表達有關。

【關鍵詞】肝癌細胞;樁蛋白基因;真核表達;細胞遷移

樁蛋白基因（PXN）位于染色體12q24，有11個外顯子，可編碼559個氨基酸，其蛋白N端有5個亮氨酸-天冬氨酸酸性結合域（LD），可與黏著斑激酶（FAK）和紐蛋白結合，LD1到LD5結構相似但功能各異;樁蛋白N端還有幾個脯氨酸富集SH3結合域;C端有4個串聯的LIM結構域，每個LIM由2個鋅指結構以疏水作用力結合，其中第3個LIM是樁蛋白與黏著斑蛋白重要結合區[1-2]。LIM不僅可以介導樁蛋白定位于黏著斑和細胞骨架的肌動蛋白上，還與多種蛋白如微管蛋白、雄激素和糖皮質激素的結合有關。樁蛋白上有許多酪氨酸和絲氨酸/蘇氨酸磷酸化位點，參與細胞信號轉導如FAK/Src、ERK等信號通路。研究發現，樁蛋白異常表達和異常磷酸化均與細胞生長、細胞黏附和遷移、形態轉變等密切相關[2]。本研究欲通過克隆PXN基因并使其在肝癌細胞Hep G2中高表達，分析其對肝癌細胞Hep G2生長和遷移的影響。

材料與方法

一、主要材料和試劑

Trizol 和lipofectamine 2000試劑購自Invitrogen公司（美國），肝癌細胞株Hep G2購自中科院上海細胞庫，RPMI-1640細胞培養基購自Gibco公司（美國），限制性核酸內切酶、高保真反轉錄試劑盒購自Takara公司（中國大連），新生牛血清購自杭州四季青生物有限公司，去內毒素質粒小提中量試劑盒購自北京天根生物有限公司，抗體購自北京博邁德生物有限公司，實時無標記細胞分析（RTCA）板購自艾森生物公司（美國），pEBFP-C1保存于本實驗室。

二、方 法

1.細胞培養

用含10%新生牛血清的RPMI-1640細胞培養液在37℃、5% CO2的細胞培養箱中培養Hep G2細胞。細胞長至80% ～ 90%用0.25%胰酶進行消化傳代。

2. mRNA抽提及PCR反應

將Hep G2鋪板于6 cm培養皿中，等細胞融合至80%時用PBS清洗3次，加入1 ml Trizol，充分吹打裂解細胞，移入1.5 ml離心管中，加入0.2 ml氯仿，劇烈震蕩30 s，室溫靜置10 min，4℃

12 000 轉/分離心10 min，取上清液移入新的1.5 ml離心管中，加入0.5 ml異丙醇，顛倒混勻后4℃ 7 500 轉/分離心10 min，棄去上清，加入1 ml預先配置好的75%的乙醇清洗，4℃ 7 500 轉/分離心10 min，棄去上清，室溫控干，加入RNase-free的雙蒸水100 μl，RNA完整性檢測并定量為1 μg/μl，

-80℃凍存備用。

取4 μg總RNA，然后用逆轉錄試劑盒按20 μl反應體系在42℃逆轉錄合成cDNA。以cDNA為模板，用PXN基因（NM_002859）引物（5-TGCTCGAGCCATGGACGACCTCGACGCCCTGCT-3，5-CAGAATTCCTAGCAGAAGAGCTTGAGGAAGCAG-3）擴增獲得樁蛋白編碼區。

3. 真核表達載體構建

用Xho Ⅰ和EcoR Ⅰ對PXN PCR產物和真核表達載體pEBFP-C1進行雙酶切，電泳回收并純化后用T4 DNA ligase 4℃連接過夜，經細菌轉化、卡那霉素篩選培養、單克隆挑取與擴大培養、質粒抽提、Xho Ⅰ和EcoR Ⅰ雙酶切鑒定后進行DNA測序鑒定，獲得連接正確且未發生突變的重組質粒pEBFP-PXN。

4.細胞轉染與藥物篩選

轉染前1 d將SMMC-7721細胞按50%量鋪于6孔板中，用lipofectamine 2000將無內毒素的重組質粒pEBFP-PXN穩定性轉染導入肝癌細胞中，轉染3 d后在熒光顯微鏡下觀察細胞熒光，并用0.5%的胰酶消化后轉入10 cm細胞培養皿中，培養3 d后加入600 μg/ml的G418進行篩選培養，培養7 d后將G418濃度降低為維持濃度200 μg/ml，繼續培養直至單克隆細胞集落形成。熒光顯微鏡下挑取藍色熒光的細胞集落進行擴大培養。

5. 蛋白免疫印跡法

取1.2×106個細胞進行裂解，蛋白定量后加入SDS-PAGE上樣緩沖液，震蕩混勻后放入金屬浴中100℃煮沸5 min，瞬時離心后震蕩混勻，樣品進行變性電泳、蛋白轉膜和膜封閉后，加入一抗4℃孵育過夜，磷酸鹽吐溫緩沖液清洗3次，加入二抗室溫孵育2 h，磷酸鹽吐溫緩沖液清洗3次，在Bio-Rad凝膠成像系統中進行顯色反應。每個實驗重復3次。

6. 細胞劃痕實驗

將細胞按最大數量接種于12孔板中，24 h后用10 μl槍頭按使用力度相同和劃線粗細相同的原則對細胞以“|”方式進行劃痕，磷酸鹽緩沖液洗去懸浮細胞和細胞碎片，并在0、24、48、72 h拍照記錄，實驗重復3次。

7. RTCA

細胞用0.25%的胰酶消化后重懸，細胞計數后取一部分細胞稀釋至1×104/ml，充分混勻后取200 μl細胞懸液加入到RTCA儀配套的細胞培養板中，按程序設置實驗名稱、細胞類型、初始數量、掃描方式和頻率，啟動實驗程序直至實驗結束，實驗重復3次，并對實驗結果進行比對和分析。

三、統計學處理

用SPSS 21.0對實驗數據進行統計學分析。組間比較采用獨立樣本t檢驗，P < 0.05為差異有統計學意義。

結果

一、重組真核表達載體pEBFP-PXN構建成功

以Hep G2細胞mRNA為模板經逆轉錄獲得cDNA，經PCR反應獲得PXN基因蛋白編碼區，經Xho Ⅰ和 EcoR Ⅰ雙酶切后插入真核表達載體pEBFP-C1中，構建PXN基因真核表達載體pEBFP-PXN（圖1A）。對pEBFP-PXN用Xho Ⅰ和 EcoR Ⅰ雙酶切進行鑒定（圖1B），并對其進行DNA正反測序，結果證明PXN基因無點突變，正是所需重組質粒。

二、建立PXN基因高表達穩轉細胞株

去內毒素的重組真核表達質粒pEBFP-PXN用脂質體法穩定性轉染肝癌細胞Hep G2，并用G418藥物篩選殺死未轉染的肝癌細胞，當細胞形成單克隆集落時，在熒光顯微鏡下挑取細胞集落并擴大培養，對細胞進行熒光觀察（圖2）。蛋白免疫印跡法檢測分析發現，單克隆穩轉肝癌細胞內外源融合蛋白BFP-PXN高表達（圖3A）。

三、PXN基因抑制肝癌細胞遷移并影響EMT標志蛋白表達

為研究PXN基因對肝癌細胞的作用，首先利用RTCA法對穩轉肝癌細胞株的生長增殖速率進行測定，如圖4所示，與對照細胞相比，穩轉肝癌細胞株的生長增殖速率無顯著變化（72 h：t = 0.438，P = 0.684），證明PXN基因基本不影響Hep G2肝癌細胞的生長增殖速率。然后，利用細胞劃痕-愈合實驗檢測穩轉肝癌細胞的遷移能力，結果發現高表達外源蛋白BFP-PXN的穩轉株的細胞遷移能力降低（24 h：t = 5.177，P = 0.007;48 h：t = 8.307，P = 0.001;72 h：t = 5.498，P = 0.005），證明樁蛋白高表達可以抑制Hep G2肝癌細胞的遷移能力（圖5）。同時，蛋白免疫印跡法分析發現，指示細胞間質化的標志蛋白N-Cadherin（t = 4.374，P = 0.049）和Vimentin（t = 10.672，P = 0.009）表達降低，而指示細胞上皮化的標志蛋白E-Cadherin表達升高（t = -10.223，P = 0.009）（圖3B）。

討論

樁蛋白是一種具有多結構域和多功能的黏著斑手腳架蛋白，可通過募集多種結構蛋白和信號分子參與細胞黏附、運動和信號轉導。樁蛋白上有多個酪氨酸和絲氨酸殘基參與磷酸化，與蛋白定位和生物學功能密切相關。研究發現，當整合素結合到細胞外基質（ECM）上可以促進樁蛋白的磷酸化水平，從而募集胞內多種蛋白包括FAK和Src結合到樁蛋白的N端，結合的FAK可磷酸化樁蛋白的Tyr31和Tyr118，Src可磷酸化Tyr88和Tyr118，使磷酸化的樁蛋白與下游靶蛋白p130cas作用，介導由ERK從胞外傳導來的信號，最終影響細胞的黏附和遷移[3-4]。

在腫瘤細胞中，雖然樁蛋白磷酸化水平與癌細胞的轉移能力呈正相關，但樁蛋白表達量與癌細胞的關系較為復雜[5-8]。Liu等[9]發現在宮頸癌中，樁蛋白表達上調與腫瘤病理分級高、淋巴管侵襲和淋巴轉移密切相關，并認為這可能與樁蛋白調節抗凋亡蛋白BCL-2表達有關。這一結果與趙珊珊等在卵巢腫瘤中發現的結果極為類似[10]。另外，Shekhar等[11]也發現在口腔癌中，樁蛋白表達量與腫瘤發展和進程呈正相關。同樣的，Zheng等[12]發現，在前列腺癌組織中，樁蛋白表達顯著高于正常組織和良性前列腺增生組織，并與前列腺癌更容易發生淋巴結轉移、耐化療藥物和術后浸潤相關。但是，在前列腺癌細胞PC-3中，Sobkowicz等[13]發現用小干擾RNA（siRNA）敲低細胞內源性樁蛋白后，前列腺癌細胞的生長速度和轉移侵襲能力未發生明顯變化;在前列腺癌細胞LNCap中，siRNA敲低細胞內源性樁蛋白后，前列腺癌細胞的生長增殖速度和轉移浸潤能力增強，但其黏附能力并未發生顯著變化。在乳腺癌細胞MDA-MB-231中，敲低內源性樁蛋白不影響細胞的增殖能力，但可以增強黏附力和降低細胞浸潤能力[12]。綜上所述，樁蛋白表達高低與腫瘤細胞的增殖、遷移侵襲之間關系較為復雜，它在不同的腫瘤發生發展中具有不同的作用和功能，因此，要全面了解樁蛋白在腫瘤中的作用就需要在不同的腫瘤中用實驗驗證。

原發性肝癌是一種轉移可能性大的惡性腫瘤，為正確認識樁蛋白在肝癌發生發展中的作用，本研究首先克隆了PXN基因蛋白編碼區，并構建了真核表達質粒pEBFP-PXN及其穩轉單克隆肝癌細胞株[14]。蛋白免疫印跡法分析發現，高表達外源PXN融合蛋白的肝癌細胞，其細胞增殖速率未發生顯著改變，但細胞遷移能力明顯受到抑制;同時，細胞內上皮化標志蛋白E-Cadherin表達顯著升高，間質化標志蛋白N-Cadherin和Vimentin表達降低，這些結果說明樁蛋白高表達可以抑制肝癌細胞Hep G2的遷移能力，可以作為臨床肝癌診斷和治療的潛在靶標。

參 考 文 獻

[1] López-Colomé AM， Lee-Rivera I， Benavides-Hidalgo R， López E. Paxillin： a crossroad in pathological cell migration. J Hematol Oncol， 2017， 10（1）：50.

[2] Yang WJ， Zhong J， Yu JG， Zhao F， Xiang Y. The structure and functions of paxillin and its roles in neovascularization. Eur Rev Med Pharmacol Sci， 2017， 21（8）：1768-1773.

[3] Deakin NO， Turner CE. Paxillin comes of age. J Cell Sci， 2008，121（Pt 15）：2435-2444.

[4] Zaidel-Bar R， Milo R， Kam Z， Geiger B. A paxillin tyrosine phosphorylation switch regulates the assembly and form of cell-matrix adhesions. J Cell Sci，2007， 120（Pt 1）：137-148.

[5] Mantonakis E， Giaginis C， Pikoulis E， Felekouras E， Patsouris E， Liakakos T， Papalampros E， Theocharis S. FAK， Src and p-Paxillin expression is decreased in liver metastasis of colorectal carcinoma patients. J BUON， 2017， 22（5）：1097-1106.

[6] Zhang D， Wu H， Zhang X， Ding X， Huang M， Geng M， Li H， Xie Z. Phosphoglycerate mutase 1 predicts the poor prognosis of oral squamous cell carcinoma and is associated with cell migration. J Cancer， 2017， 8（11）：1943-1951.

[7] Mekhdjian AH， Kai F， Rubashkin MG， Prahl LS， Przybyla LM， McGregor AL， Bell ES， Barnes JM， DuFort CC， Ou G， Chang AC， Cassereau L， Tan SJ， Pickup MW， Lakins JN2， Ye X， Davidson MW， Lammerding J， Odde DJ， Dunn AR， Weaver VM. Integrin-mediated traction force enhances paxillin molecular associations and adhesion dynamics that increase the invasiveness of tumor cells into a three-dimensional extracellular matrix. Mol Biol Cell， 2017， 28（11）：1467-1488.

[8] Cui S， Wang J， Wu Q， Qian J， Yang C， Bo P. Genistein inhibits the growth and regulates the migration and invasion abilities of melanoma cells via the FAK/paxillin and MAPK pathways. Oncotarget， 2017， 8（13）：21674-21691.

[9] Liu Q， Wang J， Tang M， Chen L， Qi X， Li J， Yu J， Qiu H， Wang Y. The overexpression of PXN promotes tumor progression and leads to radioresistance in cervical cancer. Future Oncol， 2018， 14（3）：241-253.

[10] 趙姍姍，李夢熊，徐娟，沈慧敏. 卵巢腫瘤中樁蛋白 paxillin 的表達及其臨床意義. 新醫學， 2014，45（11）： 714-717.

[11] Shekhar S， Angadi PV. Evaluation of paxillin expression in patients with oral squamous cell carcinoma： an immunohi-stochemical study. J Oral Maxillofac Pathol， 2017， 21（2）：318-319.

[12] Zheng QS， Chen SH， Wu YP， Chen HJ， Chen H， Wei Y， Li XD， Huang JB， Xue XY， Xu N. Increased Paxillin expression in prostate cancer is associated with advanced pathological features， lymph node metastases and biochemical recurrence. J Cancer， 2018， 9（6）：959-967.

[13] Sobkowicz AD， Sanders AJ， Mason MD， Jiang WG. Potential imp-lication of paxillin in cancer establishment within the bone environment. Anticancer Res， 2017， 37（8）：4255-4268.

[14] 周鵬志，譚慧珍，黃越前，彭文明. 原發性肝癌淋巴結轉移的臨床分析——附57例報告. 新醫學，2009，40（5）： 298-300.

（收稿日期：2019-05-12）

（本文編輯：楊江瑜）