山露菜中營(yíng)養(yǎng)成分及黃酮種類研究

董夢(mèng)堯，陳德經(jīng)，2，*，魚園園，董渭雪

（1.陜西理工大學(xué)生物科學(xué)與工程學(xué)院，陜西漢中723001；2.陜西理工大學(xué)陜西省資源生物重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，陜西漢中723001）

山露（Petasites tatewakianus Kitam），又名掌葉蜂斗菜，為菊科蜂斗菜屬多年生的草本植物[1]，主要分布于小興安嶺及長(zhǎng)白山地區(qū)，呈片狀生長(zhǎng)在小溪兩側(cè)的淺水灘、低洼地等處，對(duì)水分敏感，耐寒，喜肥沃且呈弱酸性類土壤[2]，近幾年在國內(nèi)開始人工大面積栽培。山露菜可食用部位為莖部，富含多種必需氨基酸和礦物質(zhì)，具有調(diào)節(jié)人體生理機(jī)能，增強(qiáng)腸胃蠕動(dòng)，極強(qiáng)的抗炎、抗過敏、提高人體免疫等功能，歐洲民間常用其解毒去痰，正骨與治療毒蛇咬傷[3-4]，為天然的綠色食品。

王鴻等[5]對(duì)山露菜的多糖與黃酮類物質(zhì)檢測(cè)發(fā)現(xiàn)，根中多糖與黃酮類物質(zhì)含量約占50.40%。黃酮類物質(zhì)有及其顯著的藥用價(jià)值，比如陳皮苷，能夠降低血脂和膽固醇，用于治療預(yù)防老年高血壓和腦溢血，向天果被譽(yù)為“植物之后”，富含黃酮類化合物，在所羅門群島用于治療過敏性疾病、內(nèi)分泌失調(diào)等，有顯著報(bào)道指出所羅門當(dāng)?shù)馗哐獕骸⑻悄虿“l(fā)病率遠(yuǎn)低于世界各地與長(zhǎng)期食用向天果密切相關(guān)。由此可知，黃酮類物質(zhì)的藥物開發(fā)與新食品研究有廣闊的市場(chǎng)前景，山露菜的黃酮組分確定與分析將對(duì)黃酮類物質(zhì)的研發(fā)提供新的方向。山露菜根莖提取物中也含有倍半萜類化合物可用于治療偏頭痛，哮喘，過敏性鼻炎等。Goto Y等[6-9]研究發(fā)現(xiàn)蜂斗菜屬中主要化學(xué)成分有倍半萜烯、三萜類、黃酮類、生物堿類等化合物。苗艷麗[10]探究發(fā)現(xiàn)山露菜中富含豆甾醇、谷甾醇及酚類。豆甾醇為一種天然活性物質(zhì)，可作為合成蕓苔素內(nèi)酯類植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑的起始原料，具有顯著的抗炎、抗腫瘤、抗心血管病等多種藥理活性。谷甾醇可合成調(diào)節(jié)水，蛋白質(zhì)，糖和鹽代謝的類固醇激素藥物，對(duì)某些癌癥如乳腺癌，胃癌等的發(fā)生和發(fā)展具有一定的抑制作用[11]。山露菜中富有的甾醇類物質(zhì)與黃酮類物質(zhì)表明山露菜的營(yíng)養(yǎng)成分極高。

我國屬山露菜種植大國，產(chǎn)品多年出口，備受消費(fèi)者青睞。王鴻等[5]對(duì)山露菜的營(yíng)養(yǎng)成分作了簡(jiǎn)單的分析，王少男等[12]研究了幾種蜂斗菜屬植物的黃酮類化合物，但未對(duì)山露菜中黃酮種類及含量做進(jìn)一步研究。本文對(duì)山露菜營(yíng)養(yǎng)成分及黃酮含量進(jìn)行研究，為評(píng)價(jià)山露菜營(yíng)養(yǎng)成分及功效作用奠定基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

山露菜：漢中西鄉(xiāng)。

DEAE-52纖維素：北京慧德科技有限公司；蒽酮：上海科豐實(shí)業(yè)有限公司；單糖標(biāo)品（純度98%）：上海源葉生物科技有限公司；1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮（1-pheny-3-methyl-5-pyrazolone，PMP）：上海濤宇國際貿(mào)易有限公司；37種脂肪酸甲酯混合標(biāo)準(zhǔn)品：Sigma公司；三羥甲基氨基甲烷、蘆丁、紫云英苷、木樨草苷、牡荊素：天津比斯特化學(xué)科技有限公司。

1.2 儀器與設(shè)備

DZF-6050型真空干燥箱：上海一恒科學(xué)儀器有限公司；UV-1750型紫外可見分光光度儀：日本島津儀器公司；Agilent 1100型高效液相色譜儀：美國Agilent公司；KDY-9820凱氏定氮儀：廈門精藝科技有限公司；Optima8000電感耦合等離子體發(fā)射光譜儀：美國鉑金埃爾默公司。

1.3 試驗(yàn)方法

1.3.1 營(yíng)養(yǎng)成分分析

1.3.1.1 原料預(yù)處理

挑選洗凈晾干后的優(yōu)質(zhì)山露菜，分為莖、葉兩個(gè)部位，分別置于干燥箱中45℃烘干，粉碎。

1.3.1.2 膳食纖維含量的測(cè)定

1）水溶性膳食纖維含量測(cè)定（soluble dietary fiber，SDF）

參考楊芙蓮等[13]方法。稱取1 g山露菜樣品加入50mL濃度為2%的NaOH溶液超聲堿解2h，4000r/min離心20 min取上清液，用1 mol/L HCl溶液調(diào)pH值至4.50，離心棄沉淀，1 mol/L NaOH溶液調(diào)pH值至7，于旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀65℃下濃縮至10 mL，按體積比為1∶4添加95%的乙醇沉淀1 h，過濾干燥稱量，得到水溶性膳食纖維含量（SDF）。

2）不溶性膳食纖維含量測(cè)定（insoluble dietary fiber，IDF）

參考曹銀等[14]方法。稱取1 g山露菜樣品采用索氏抽提法[15]除去脂肪，于30℃下溫水浸泡2 h，4 000 r/min離心20 min取沉淀，加入50 mL濃度為2%的NaOH溶液超聲中堿解2 h，真空抽濾所得沉淀經(jīng)超純水多次水洗至中性，將沉淀于50℃烘干24 h，稱量得不溶性膳食纖維（IDF）。

1.3.1.3 蛋白質(zhì)含量的測(cè)定

粗蛋白含量按照GB 5009.5-2016《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)食品中蛋白質(zhì)的測(cè)定》中的第一法凱氏定氮法進(jìn)行測(cè)定[16]。

1.3.1.4 脂肪酸含量及組成分析

參照GB 5009.6-2016《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)食品中脂肪的測(cè)定》中的第一法索氏抽提法進(jìn)行測(cè)定[15，17]。

色譜條件：色譜柱為SPTM2560（100mm×0.25mm，0.2 μm）色譜柱；載氣為 N2；先升溫至 140 ℃保持10 min，再以5 min/℃的升溫速率升至210℃，保持15 min，再以3℃/min的升溫速率升至240℃，保持15 min；進(jìn)樣口溫度為240℃，檢測(cè)器溫度為260℃；分流比60∶1，分別進(jìn)10 μL樣品進(jìn)行檢測(cè)。

精確稱量2.50 mg脂肪酸標(biāo)準(zhǔn)品，用異辛烷定容至10 mL，避光保存于4℃冰箱中以備進(jìn)行氣相色譜儀檢測(cè)。分別稱取山露菜莖、葉5 mg，依次加入0.40 mL異辛烷、2 mol/L氫氧化鉀-甲醇溶液0.02 mL，劇烈振蕩3 min，加入1 g硫酸氫鈉試劑，振蕩取上清液過濾膜，避光保存于4℃冰箱冷藏以備進(jìn)行氣相色譜儀檢測(cè)。

1.3.2 多糖含量及組分測(cè)定

1.3.2.1 多糖的提取

參考張媛媛等[18]方法準(zhǔn)確稱取20 g莖與20 g葉混合，加入500 mL超純水，超聲提取1 h，過濾取上清液。取濾液800 mL在63℃下旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮，濃縮量約原體積的1/3后，加入3倍體積的Sevage溶液（氯仿∶正丁醇體積比=3∶1）除去游離蛋白質(zhì)，劇烈振蕩，離心（4 000 r/min，15 min）取上清液，重復(fù)3次，直至中間無蛋白層，再調(diào)乙醇濃度達(dá)75%，靜置離心（4 000 r/min，15 min），沉淀置于50℃真空干燥48 h，待完全干燥后稱量即得山露菜莖葉粗多糖，粗多糖的提取率計(jì)算如下為：

式中：A為干燥后多糖的質(zhì)量，g；M為原料質(zhì)量，g。

1.3.2.2 硫酸-蒽酮法繪制葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線

精確稱量純葡萄糖10 mg于105℃下干燥至恒重，用超純水溶解配制 10、30、50、70、90 μg/mL 的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液。再取不同濃度梯度的標(biāo)準(zhǔn)溶液2 mL放入試管中，以蒸餾水為空白組，分別加入濃度2 mg/mL硫酸蒽酮溶液8 mL，迅速冰水浴，再在100℃沸水水浴10 min取出，流水冷卻，于紫外分光光度計(jì)下625 nm處測(cè)定吸光度值[19]。根據(jù)吸光度值繪制葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線。

將1.3.2.1中提取出來的粗多糖2 mL，加入濃度2 mg/mL硫酸蒽酮溶液8 mL，迅速冰水浴，再在100℃沸水水浴10 min取出，流水冷卻，于紫外分光光度計(jì)下625 nm處測(cè)定吸光度值，代入葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線當(dāng)中，計(jì)算葡萄糖的含量。

1.3.2.3 多糖組分分析

1）單糖標(biāo)準(zhǔn)品的衍生化

將9種單糖標(biāo)準(zhǔn)品配成濃度為5 mmol/L的混合標(biāo)準(zhǔn)液，取100μL標(biāo)品溶液于試管中，依次加入100μL 0.3 mol/L 的氫氧化鈉、100 μL 0.5 mol/L PMP-甲醇溶液，混勻后在70℃烘箱中衍生100 min，反應(yīng)完成后冷卻至室溫20℃，加入100 μL 0.3 mol/L HCl中和，再加入1 mL氯仿振蕩靜置，棄去有機(jī)溶劑，重復(fù)萃取3次，除去未反應(yīng)完全的PMP試劑，最后將上層水溶液過0.45 μm濾膜，進(jìn)行高效液相色譜檢測(cè)[20]。

2）高效液相色譜法（high performance liquid chromatography，HPLC）測(cè)定多糖中單糖組分

確定色譜檢測(cè)條件：通過不斷改變流動(dòng)相的比例流動(dòng)相比例、緩沖液濃度進(jìn)行數(shù)次測(cè)試確定最合適的檢測(cè)條件確定色譜檢測(cè)條件為：流動(dòng)相0.05 mol/L磷酸鹽緩沖液（pH 6.9）與乙腈（體積比81∶19）。色譜柱為Diamonsil C18（250 mm×4.6 mm，5 μm）；進(jìn)樣體積為10 μL；檢測(cè)波長(zhǎng)為 250 nm；流速為 1 mL/min。

單糖組分檢測(cè)：將山露菜莖葉多糖提取物配制成濃度為2 mg/mL的多糖溶液，分別取1 mL置于試管中，加入1 mL 4 mol/L的三氟乙酸溶液，充入N2 1 min后封管，110℃下反應(yīng)2 h取出冷卻至室溫20℃，蒸干再加入1 mL甲醇，再次蒸干，重復(fù)3次去除殘留的三氟乙酸，用500 μL超純水復(fù)溶，過0.45 μm濾膜。取100 μL過濾膜的多糖溶液按照上述1.3.2.3（1）多糖衍生化步驟進(jìn)行山露菜莖葉的衍生，并進(jìn)行液相色譜檢測(cè)。

1.3.3 礦物質(zhì)的種類分析及含量測(cè)定

準(zhǔn)確吸取5.00 mL鐵、銅、鋅、鈉、鈣、鎂、鉀單元素標(biāo)準(zhǔn)溶液（1 000 μg/mL），置于 50 mL容量瓶中，用 2%硝酸溶液稀釋至刻度搖勻，配置成混標(biāo)溶液，4℃保存?zhèn)溆谩Ｔ賹⒃摶旌蠘?biāo)準(zhǔn)溶液使用逐級(jí)稀釋配置成不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液，待測(cè)。

分別準(zhǔn)確稱量0.35 g山露菜莖、葉至硝解罐中，設(shè)兩個(gè)平行樣，加入6 mL硝酸，靜置30 min，再加入2 mL過氧化氫，靜置2 min，將消解罐蓋上內(nèi)塞，依次放入消解盤中，消解罐位置應(yīng)對(duì)稱分布，消解完成后待自然冷卻，將試樣消化液轉(zhuǎn)移到25 mL聚氯乙烯容量瓶中，用超純水多次洗滌并定容至刻度線，混勻待測(cè)，以不加式樣為試劑空白，對(duì)山露莖、葉中礦物質(zhì)種類元素進(jìn)行電耦感合等離子體原子發(fā)射光譜法（inductively coupled plasma atomic emission spectrometry，ICP） 分析測(cè)定[21]。

1.3.4 黃酮種類及含量分析

1.3.4.1 黃酮提取

用70%乙醇按料液比1∶15（g/mL），分別提取山露菜葉、莖原料，于60℃下水浴4 h，超聲提取15 min，重復(fù)操作3次后合并濾液，旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀濃縮至10 mL，于50℃下烘干[17]，得到山露菜葉和莖的總黃酮。

1.3.4.2 黃酮含量的測(cè)定

準(zhǔn)確稱取蘆丁5 mg，70%乙醇溶液溶解并定量至25 mL，配成濃度為0.20 mg/mL的蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液。分別取蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液 0.00、1.00、2.00、3.00、4.00、5.00、6.00mL，置于25 mL棕色容量瓶中。加入10 mL濃度為70%的乙醇、1.00 mL濃度為5%的亞硝酸鈉溶液，充分搖勻靜置6 min；加入1.00 mL濃度為10%的硝酸鋁溶液，充分搖勻，靜置6 min；加入10 mL濃度為4%的氫氧化鈉溶液。，以上幾個(gè)梯度的標(biāo)品分別加入超純水定容至刻度，搖勻，放置15 min。以不加蘆丁對(duì)照品溶液為空白，于510 nm處測(cè)定吸光度[22-23]。根據(jù)各濃度下吸光度值繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

將山露菜葉的醇提物與莖的醇提物分別稱取5mg，置于25 mL棕色容量瓶中，參照上述標(biāo)品配制方法制備樣品溶液，于510 nm處測(cè)定吸光度值，將吸光度值代入標(biāo)準(zhǔn)曲線中計(jì)算含量。

1.3.4.3 黃酮種類的測(cè)定

1）色譜檢測(cè)條件確定

通過改變流動(dòng)相體積比，以及甲酸含量進(jìn)行多次試驗(yàn)，確定了最合適的檢測(cè)條件：流動(dòng)相為甲醇-水體系（含1%甲酸），流動(dòng)相體積比49∶51；進(jìn)樣體積：20 μL；檢測(cè)波長(zhǎng) 275 nm；流速 1 mL/min。

2）液相法測(cè)定黃酮標(biāo)品、山露菜中黃酮種類測(cè)定

分別稱取30 mg的蘆丁、牡荊素、矢車菊素3-0葡萄糖苷、紫云英苷、金絲桃苷、木樨草苷標(biāo)品用甲醇定容至10 mL，混勻后超聲20 min，取上層溶液過0.22 μm有機(jī)濾膜，4℃冰箱內(nèi)避光保存。

分別稱取山露菜葉的醇提樣品、莖的醇提樣品30 mg，80%甲醇溶液定容至10 mL，混勻超聲處理10 min，取上清液過0.22 μm有機(jī)濾膜，作液相分析。

1.4 數(shù)據(jù)處理

采用SPSS 18、Origin 85軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析，所有指標(biāo)均平行測(cè)定3次，數(shù)據(jù)采用平均值表示。

2 結(jié)果與分析

2.1 山露菜的主要營(yíng)養(yǎng)成分

2.1.1 山露菜中脂肪、蛋白質(zhì)、膳食纖維含量

山露菜中脂肪、蛋白質(zhì)以及膳食纖維含量如表1所示。

表1 山露菜主要營(yíng)養(yǎng)成分及含量Table 1 Three nutrients and content of Petasites tatewakianus Kitam

由表1知山露菜膳食纖維的含量較高，葉中為53.5%（水溶與不溶相加），莖中膳食纖維含量為芹菜的3倍，達(dá)49.70%。不溶性膳食纖維約為水溶性膳食纖維的2倍，葉、莖中分別占39.90%和31.90%；葉中的脂肪和蛋白質(zhì)含量也均高于莖。山露菜葉中的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)明顯高于莖。

2.1.2 山露菜脂肪中脂肪酸種類

通過氣相色譜儀對(duì)脂肪酸標(biāo)準(zhǔn)品、山露菜中莖及葉的脂肪酸含量進(jìn)行分析得到結(jié)果如表2所示。

表2 脂肪酸標(biāo)準(zhǔn)曲線線性方程及相關(guān)系數(shù)Table 2 Linear equation of fatty acid standard curve and correlation coefficient

參照表2中標(biāo)準(zhǔn)曲線，分別計(jì)算山露菜中莖和葉的脂肪酸含量，繪制結(jié)果如表3所示。

表3 山露菜脂肪酸組分含量Table 3 Petasites tatewakianus Kitam fatty acid content

根據(jù)表3可知，山露菜莖中主要含有14種脂肪酸，山露菜葉中含有12種脂肪酸，并且含有相同的12種脂肪酸如辛酸、棕櫚酸等。山露菜莖中順-10-碳烯酸甲酯、十五烷酸和辛酸及棕櫚酸含量較高；葉中的順-10-碳烯酸甲酯、花生三烯酸與辛酸含量較高，不同的部位主要脂肪酸成分與各自的成分比例存在顯著差異。綜合來說山露菜中C17含量最高，其次為辛酸和花生三烯酸。

2.2 山露菜多糖含量及組分

2.2.1 山露菜中多糖含量

采用超聲法輔助提取山露菜莖葉中為多糖提取率為6.60%。根據(jù)不同濃度下葡萄糖吸光度值的檢測(cè)結(jié)果，以吸光度值（y）為縱坐標(biāo)，葡萄糖濃度（x，μg/mL）為橫坐標(biāo)，繪制出標(biāo)準(zhǔn)曲線圖，得到標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為：y=0.008x+0.077 6，R2=0.999 1，山露菜莖葉中含多糖1.60%。

2.2.2 多糖組分分析

2.2.2.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線及線性范圍

將9種單糖混合制成不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)品，分別進(jìn)行衍生化后并在相同的色譜條件下檢測(cè)。色譜圖如圖1所示。

圖1 9種混合單糖對(duì)照品HPLC色譜圖Fig.1 HPLC of 9 mixed monosaccharide reference materials

將9種單糖混合并配制成不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液，衍生化后在相同色譜條件下檢測(cè)，記錄色譜圖。以峰面積（Y）為縱坐標(biāo)，單糖濃度（X）為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線，可得單糖標(biāo)準(zhǔn)曲線方程，如表4。

表4 單糖標(biāo)準(zhǔn)曲線線性方程及相關(guān)系數(shù)Table 4 Linear equation and correlation coefficient of monosaccharide standard curve

續(xù)表4 單糖標(biāo)準(zhǔn)曲線線性方程及相關(guān)系數(shù)Continue table 4 Linear equation and correlation coefficient of monosaccharide standard curve

結(jié)果表明9種單糖具有良好的線性關(guān)系，其R2在0.993 5～0.999 2。

2.2.2.2 山露菜單糖組分分析

將山露菜的葉莖多糖經(jīng)柱前衍生制備的樣品進(jìn)行色譜分析，測(cè)定含量如表5。

表5 山露菜多糖中單糖組分及摩爾比Table 5 Petasites tatewakianus Kitam component and molar ratio of polysaccharides

由表5可知山露菜莖葉多糖中主要為甘露糖和葡萄糖2種單糖，依據(jù)單糖的峰面積及標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算可知單糖摩爾比為1.00∶15.30。莖葉中均含有甘露糖與葡萄糖；山露菜莖葉中兩種單糖含量比例大小為葡萄糖>甘露糖，且葡萄糖含量遠(yuǎn)高于甘露糖。

2.3 微量元素種類及含量

山露菜莖和葉中的7種常見微量元素種類及含量測(cè)定，結(jié)果如下表6。

表6 山露菜7種微量元素測(cè)定結(jié)果Table 6 Determination of 7 trace elements in Petasites tatewakianus Kitam

由表6可知，山露菜中K元素含量豐富，Ca元素含量次之，能夠極好的補(bǔ)充人體所需礦物質(zhì)，Zn、Cu含量較少。

2.4 山露菜中黃酮含量、黃酮化合物種類

2.4.1 黃酮含量

將提取的山露菜樣品中的黃酮類化合物，通過紫外分光光度法測(cè)定提取物中總黃酮的含量，制備標(biāo)準(zhǔn)曲線如圖2所示。

圖2 蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.2 Rutin standard curve

Y軸-吸光度，X軸-蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液的濃度（mg/mL），蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為：Y=12.986X-0.002 4，R2=0.999 9。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線測(cè)定黃酮含量如表7所示。

表7 黃酮提取率及含量Table 7 Flavonoid extraction rate and content

由表2.7可知，由70%乙醇提取山露莖、葉的黃酮純度較高，總粗提取率能達(dá)43.62%（莖、葉相加）。綜合比較山露菜葉中的黃酮含量遠(yuǎn)高于莖中黃酮含量，且是莖中黃酮含量的3倍。

2.4.2 黃酮組分檢測(cè)及分析

2.4.2.1 標(biāo)準(zhǔn)品標(biāo)準(zhǔn)曲線方程及保留時(shí)間

將5種黃酮標(biāo)品配制成不同濃度梯度的標(biāo)品溶液，在相同色譜條件下進(jìn)行檢測(cè)，記錄色譜圖，并進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制，結(jié)果如表8所示。

表8 黃酮標(biāo)準(zhǔn)曲線線性方程及相關(guān)系數(shù)Table 8 Linear equation and correlation coefficient of flavonoid standard curve

2.4.2.2 山露菜黃酮組分分析

用高效液相色譜儀的對(duì)照品圖與山露菜樣品溶液進(jìn)行對(duì)比，山露菜莖中主要含有3種黃酮，分別為芍藥苷、牡荊素和木樨草苷；山露菜葉中主要含有5種黃酮，分別為芍藥苷、牡荊素、木樨草苷、蘆丁以及紫云英苷。參照峰面積及標(biāo)準(zhǔn)曲線進(jìn)行計(jì)算，結(jié)果如表9所示。

表9 山露菜黃酮組分及含量Table 9 Flavonoids and content of Petasites tatewakianus Kitam

由表9可知，山露菜莖和葉中都含有芍藥苷、牡荊素和木樨草苷3種物質(zhì)，山露菜葉中也含有蘆丁、紫云英苷；山露菜莖、葉中5種黃酮按含量依次為芍藥苷＞牡荊素>木樨草苷>紫云英苷>蘆丁。

3 結(jié)論

山露菜含有多糖、蛋白質(zhì)、膳食纖維、油脂以及微量元素多種營(yíng)養(yǎng)成分。葉中膳食纖維占53.50%，莖中占49.70%，能增加人體飽腹感，促進(jìn)腸道蠕動(dòng)，潤(rùn)腸通便，改善腸道菌群。山露菜葉中的黃酮含量高于莖中黃酮含量及種類，山露菜中黃酮具有一定的生理活性。山露菜的這些營(yíng)養(yǎng)及功能成分特征也是日本人喜歡吃山露菜及大量進(jìn)口山露菜的原因。