龔旭昊,楊星,張璐,趙富華,范強(qiáng)
(中國(guó)獸醫(yī)藥品監(jiān)察所,北京 100081)
清瘟解毒口服液質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)現(xiàn)收載于《獸藥質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)(2017年版中藥卷)》中,其由地黃、梔子、黃芩、連翹、玄參、板藍(lán)根6味中藥經(jīng)現(xiàn)代提取工藝加工而成[1]。方中用黃芩清瀉肺熱,連翹清心經(jīng)客火,板藍(lán)根利咽解毒,三者共為君藥,清解中上焦氣分實(shí)熱;梔子清三焦火熱為臣藥,輔助君藥瀉火敗毒;地黃、玄參涼血滋陰降火皆入腎經(jīng),為佐使藥;諸藥合用,共奏清熱瀉火、益陰敗毒之功[2]。臨床上主治外感發(fā)熱,在家禽病毒病的防控中應(yīng)用十分廣泛,系國(guó)家藥品標(biāo)準(zhǔn)中清熱解毒類代表性方劑之一[3]。
該方劑現(xiàn)行質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)中只采用薄層色譜法對(duì)黃芩、梔子、連翹進(jìn)行定性檢測(cè),不能完全反映處方情況,質(zhì)控水平較低,缺乏主要藥效成分的定量測(cè)定,不利于產(chǎn)品質(zhì)量的穩(wěn)定性控制和質(zhì)量評(píng)價(jià),可能導(dǎo)致較為嚴(yán)重的產(chǎn)品臨床療效差異。基于以上分析,本研究參考《中國(guó)獸藥典》2015年版二部龍膽瀉肝散及相關(guān)文獻(xiàn)[4-5],選擇方中君藥黃芩、臣藥梔子中指標(biāo)活性成分黃芩苷、梔子苷為研究對(duì)象,建立同時(shí)測(cè)定二者含量的高效液相色譜方法,為清瘟解毒口服液質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)的完善及產(chǎn)品質(zhì)量控制提供科學(xué)依據(jù)。
1.1 儀器與試劑 儀器:Waters e2695高效液相色譜儀,配置Waters 2998 PDA檢測(cè)器,Empower3色譜工作站軟件。分析天平(Mettler XS205,十萬分之一),昆山KQ-300型超聲波清洗器。試劑:乙腈,色譜純,購自默克公司;甲醇,分析純,購自國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;磷酸,分析純,購自國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;水由實(shí)驗(yàn)室MILLIPORE超純水儀自制。
1.2 試藥 梔子苷對(duì)照品(批號(hào):110749-201718),97.6%,中國(guó)食品藥品檢定研究院;黃芩苷對(duì)照品(批號(hào):Z0271705),96.8%,中國(guó)獸醫(yī)藥品監(jiān)察所。供試品:某企業(yè)生產(chǎn)的清瘟解毒口服液,批號(hào):18010201;陰性對(duì)照供試品:根據(jù)清瘟解毒口服液處方組成,取處方中除梔子、黃芩以外的其他藥味,照其制備工藝[1],由實(shí)驗(yàn)室自制而成。
1.3 試驗(yàn)方法
1.3.1 色譜條件 色譜柱:Shiseido MGⅡC18(4.6 mm×250 mm,5 μm),編號(hào):A4AD06200;流動(dòng)相:以0.2%磷酸溶液為流動(dòng)相A,以乙腈為流動(dòng)相B,梯度洗脫,見表1。柱溫:25 ℃,流速:1.0 mL/min;二極管陣列檢測(cè)器,采集波長(zhǎng)范圍為210~400 nm,分辨率為1.2 nm,記錄238 nm波長(zhǎng)處的色譜圖。

表1 梯度洗脫表Tab 1 Gradient elution form
1.3.2 對(duì)照品溶液的制備 取梔子苷對(duì)照品25.0 mg,置50 mL量瓶中,加甲醇使溶解并稀釋至刻度,搖勻,作為梔子苷對(duì)照品儲(chǔ)備液;取黃芩苷對(duì)照品25.0 mg,置50 mL量瓶中,加甲醇使溶解并稀釋至刻度,搖勻,作為黃芩苷對(duì)照品儲(chǔ)備液;精密量取梔子苷對(duì)照品儲(chǔ)備液5 mL、黃芩苷對(duì)照品儲(chǔ)備液10 mL,至同一50 mL量瓶中,加甲醇稀釋至刻度,搖勻,得濃度為梔子苷50 μg/mL和黃芩苷100 μg/mL的混合對(duì)照品溶液。
1.3.3 供試品溶液的制備 精密量取清瘟解毒口服液供試品1 mL,置50 mL量瓶中,加50%甲醇40 mL,超聲處理10 min,放置至室溫,加50%甲醇稀釋至刻度,搖勻,即得。
1.3.4 陰性對(duì)照溶液的制備 精密量取陰性對(duì)照供試品1 mL,同1.3.3項(xiàng)下方法,制備得陰性對(duì)照溶液。
1.3.5 測(cè)定法 分別精密吸取對(duì)照品混合溶液、供試品溶液及陰性對(duì)照溶液各10 μL,注入液相色譜儀,測(cè)定,即得。
2.1 系統(tǒng)適用性試驗(yàn)結(jié)果 為考察方法的專屬性,即判斷空白溶劑、制劑中各化學(xué)成分及輔料對(duì)梔子苷、黃芩苷的測(cè)定是否存在干擾,分別精密吸取空白溶劑(50%甲醇)、對(duì)照品溶液、供試品溶液及陰性對(duì)照溶液各10 μL,注入液相色譜儀,照1.3.1項(xiàng)下色譜條件進(jìn)行測(cè)定,記錄色譜圖與光譜圖。結(jié)果顯示,對(duì)照品溶液中梔子苷和黃芩苷的保留時(shí)間分別為8.008 min、33.601 min;供試品中梔子苷、黃芩苷與相應(yīng)的對(duì)照品色譜峰的保留時(shí)間及光譜圖均一致,且均達(dá)到基線分離;空白溶劑和陰性對(duì)照溶液色譜圖中,在梔子苷和黃芩苷出峰處均沒有干擾,表明其他成分對(duì)二者的測(cè)定均不會(huì)造成影響。結(jié)果見圖1~圖4。

圖1 空白溶劑色譜圖Fig 1 Chromatogram of blank solvent

圖2 對(duì)照品溶液色譜圖Fig 2 Chromatogram of control solution

圖3 陰性對(duì)照溶液色譜圖Fig 3 Chromatogram of negative control solution

圖4 供試品溶液色譜圖Fig 4 Chromatogram of test solution
2.2 方法學(xué)考察
2.2.1 線性關(guān)系考察 精密稱取梔子苷、黃芩苷對(duì)照品適量,置量瓶中,加甲醇使溶解并稀釋至刻度,搖勻,分別制成梔子苷濃度依次為5、15、25、50、100、200、250 μg/mL,黃芩苷濃度依次為10、30、50、100、200、400、500 μg/mL的混合對(duì)照品溶液,濾過,分別進(jìn)樣10 μL,照1.3.1項(xiàng)下色譜條件進(jìn)行測(cè)定。以對(duì)照品溶液濃度為橫坐標(biāo)(X),峰面積積分值為縱坐標(biāo)(Y),分別繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得梔子苷、黃芩苷回歸方程分別為(n=7):Y=14614X+35809,R2=0.9999;Y=13270x+23503,R2=1.00。結(jié)果表明,梔子苷濃度在5 μg/mL~250 μg/mL、黃芩苷濃度在10 μg/mL~500 μg/mL范圍內(nèi),峰面積與溶液濃度線性關(guān)系良好。見表2。

表2 線性關(guān)系考察Tab 2 Investigation of linear relations
2.2.2 重復(fù)性試驗(yàn) 取清瘟解毒口服液供試品,根據(jù)1.3.3項(xiàng)下方法平行配制6份供試品溶液,照1.3.1項(xiàng)下色譜條件分別進(jìn)行測(cè)定,記錄峰面積,計(jì)算含量。結(jié)果梔子苷、黃芩苷平均含量分別為5.49、4.36 mg/mL,RSD分別為0.42%、0.60%,表明方法重復(fù)性良好,見表3。
2.2.3 精密度試驗(yàn) 取同一對(duì)照品溶液,照1.3.1項(xiàng)下色譜條件,連續(xù)進(jìn)樣6次,每次進(jìn)樣10 μL,測(cè)定峰面積,結(jié)果連續(xù)進(jìn)樣6次梔子苷、黃芩苷峰面積的RSD分別為0.22%、0.36%,表明方法精密度良好,見表4。

表3 重復(fù)性試驗(yàn)Tab 3 Repeatability test

表4 精密度試驗(yàn)Tab 4 Precision test
2.2.4 穩(wěn)定性試驗(yàn) 取同一供試品溶液,照1.3.1項(xiàng)下色譜條件,分別在0、2、6、12、24、48 h各進(jìn)樣10 μL進(jìn)行測(cè)定,記錄梔子苷、黃芩苷的峰面積,其RSD分別為0.30%、0.56%,表明供試品溶液在48 h內(nèi)穩(wěn)定性良好,見表5。

表5 穩(wěn)定性試驗(yàn)Tab 5 Stability test
2.2.5 回收率試驗(yàn) 根據(jù)清瘟解毒口服液供試品中梔子苷和黃芩苷含量,按照供試品、對(duì)照品量各半的方法,精密添加梔子苷和黃芩苷對(duì)照品儲(chǔ)備液,平行制備6份樣品,照1.3.1項(xiàng)下色譜條件測(cè)定,計(jì)算加樣回收率。結(jié)果顯示,梔子苷的回收率在98.99%~100.96%之間,平均回收率為100.14%,RSD值為0.87%;黃芩苷的回收率在98.01%~100.40%之間,平均回收率為99.42%,RSD值為0.94%,表明方法回收率良好,符合要求,見表6。

表6 回收率試驗(yàn)Tab 6 Recovery test
2.2.6 檢測(cè)限與定量限 分別精密量取1 mL陰性對(duì)照供試品置50 mL量瓶中,再精密吸取1.3.2項(xiàng)下混合對(duì)照品溶液0.5、1、1.5、2 mL加入相應(yīng)量瓶中,加50%甲醇稀釋至刻度,搖勻,照1.3.1項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣檢測(cè)。按照3倍噪音計(jì)算檢測(cè)限濃度,并參考紫外吸收光譜圖進(jìn)行綜合評(píng)價(jià)。梔子苷、黃芩苷的檢測(cè)限濃度分別為0.5、1.0 μg/mL,S/N值均為4.5;按照10倍噪音計(jì)算定量限濃度,梔子苷、黃芩苷的定量限濃度分別為1.0、2.0 μg/mL,S/N值分別為15.6、11.9。
2.2.7 耐用性試驗(yàn) 分別從色譜柱類型和柱溫對(duì)方法的耐用性進(jìn)行考察。
2.2.7.1 色譜柱類型考核 取清瘟解毒口服液供試品溶液,照1.3.1項(xiàng)下色譜條件,分別考察Waters SunFire C18(4.6 mm×250 mm,5 μm;S.N:01623329013880),Shiseido MGⅡ C18(4.6 mm×250 mm,5 μm;S.N:A4AD06200),Dikma C18(4.6 mm×250 mm,5 μm;S.N:6012835),Grace Apollo C18(4.6×250 mm,5 μm;S.N:210100396)對(duì)兩種被測(cè)成分保留時(shí)間、分離度、拖尾因子、理論塔板數(shù)的影響。結(jié)果見表7。

表7 色譜柱類型考察Tab 7 Investigation of chromatographic column types
2.2.7.2 色譜柱柱溫考察 取清瘟解毒口服液供試品溶液,改變色譜柱柱溫分別在20 ℃、25 ℃、30 ℃進(jìn)行測(cè)定。結(jié)果顯示,隨柱溫升高,梔子苷和黃芩苷保留時(shí)間有所提前,但峰面積、分離度、拖尾因子、理論塔板數(shù)基本沒有變化。
上述耐用性試驗(yàn)結(jié)果表明,該方法耐用性良好。
2.3 樣品含量測(cè)定 為摸排市場(chǎng)現(xiàn)有清瘟解毒口服液的質(zhì)量差異,進(jìn)而為產(chǎn)品質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)的完善提供科學(xué)依據(jù)。照1.3.1項(xiàng)下色譜條件,本次研究共對(duì)來自河南、山東、江蘇等8家獸藥企業(yè)的8批樣品及實(shí)驗(yàn)室自制的1批樣品進(jìn)行了梔子苷、黃芩苷含量的測(cè)定。結(jié)果顯示,一是本實(shí)驗(yàn)研究所建立的HPLC含量測(cè)定方法可行,適用于不同廠家產(chǎn)品中兩種成分的同時(shí)測(cè)定;二是不同廠家的產(chǎn)品質(zhì)量差異較大,在9批樣品中,梔子苷含量范圍為0.39 mg/mL~12.48 mg/mL,最大相差32倍;黃芩苷含量范圍為1.11~18.91 mg/mL,最大相差17倍;見表8。該結(jié)果表明,不同廠家的工藝水準(zhǔn)、質(zhì)控水平參差不齊,或?qū)е庐a(chǎn)品質(zhì)量及臨床療效存在嚴(yán)重差異。基于此,完善清瘟解毒口服液的質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)極為必要。

表8 樣品含量測(cè)定結(jié)果Tab 8 Determination results of sample content
3.1 提取溶劑考察 根據(jù)獸藥典及文獻(xiàn)相關(guān)方法,試驗(yàn)分別考察了水、30%甲醇、50%甲醇、70%甲醇的提取效率。即精密量取供試品1 mL置50 mL量瓶中,分別加入水、30%甲醇、50%甲醇、70%甲醇40 mL,超聲30分鐘,放置至室溫,再加相應(yīng)溶劑稀釋至刻度,搖勻,進(jìn)樣測(cè)定。結(jié)果發(fā)現(xiàn),供試品中黃芩苷在50%甲醇中的提取效果優(yōu)于其他溶劑,最終選擇50%甲醇為供試品提取溶劑。
3.2 提取方式考察 精密量取供試品1 mL置50 mL量瓶中,加50%甲醇40 mL,分別采取不超聲直接稀釋至刻度并振搖,超聲10 min、超聲20 min、超聲30 min后放置至室溫并稀釋至刻度,搖勻,進(jìn)樣測(cè)定。結(jié)果上述四種提取方式所得梔子苷峰面積RSD為0.18%,黃芩苷RSD為0.28%,均小于2%。該結(jié)果表明,振搖和超聲的提取效率基本相同,為確保供試品溶液混合均勻,兼顧測(cè)定效率,最終選擇超聲10 min作為供試品提取方式。
3.3 檢測(cè)波長(zhǎng)的選擇 試驗(yàn)中,在210~400 nm的波長(zhǎng)范圍內(nèi)對(duì)梔子苷、黃芩苷的最大吸收波長(zhǎng)進(jìn)行掃描。其中,黃芩苷的特征吸收在278 nm,梔子苷的特征吸收在238 nm。經(jīng)試驗(yàn)考察,發(fā)現(xiàn)在278 nm波長(zhǎng)處,梔子苷幾乎無響應(yīng)值,而在238 nm處,黃芩苷仍有較為明顯的特征峰,故最終將檢測(cè)波長(zhǎng)設(shè)定在238 nm。
3.4 流動(dòng)相的選擇 本試驗(yàn)在參考相關(guān)文獻(xiàn)[6]和《中國(guó)獸藥典》2015年版二部龍膽瀉肝散含量測(cè)定的基礎(chǔ)上,分別考察了“甲醇/乙腈-水”、“甲醇-磷酸水溶液”、“乙腈-磷酸水溶液”洗脫系統(tǒng),經(jīng)試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)使用“甲醇/乙腈-水”作為流動(dòng)相,基線分離效果較差;“甲醇-磷酸水溶液”作為流動(dòng)相,柱壓較高;而乙腈洗脫能力優(yōu)于甲醇,且在流動(dòng)相中加入少量磷酸可以起到改善峰形和分離度、減少拖尾的效果。故最終選擇“乙腈-0.2%磷酸水溶液”作為本含量測(cè)定方法流動(dòng)相。
3.5 結(jié)論 隨著我國(guó)集約化規(guī)模化養(yǎng)殖業(yè)的快速發(fā)展,以及社會(huì)公眾對(duì)動(dòng)物源性食品中獸藥殘留的擔(dān)憂,中獸藥因其綠色天然、毒副作用低、不易產(chǎn)生耐藥性等優(yōu)點(diǎn)在獸醫(yī)臨床中的使用日益廣泛[7]。伴隨中獸藥廣泛應(yīng)用而來的是其質(zhì)量控制問題日益突出,其質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)的研究與制定,對(duì)生產(chǎn)實(shí)際及臨床療效的影響越來越大。因此,質(zhì)控問題及研究也是決定中獸藥產(chǎn)業(yè)能否實(shí)現(xiàn)現(xiàn)代化和國(guó)際化的重要前提。基于此,提高中獸藥質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)并建立完善的質(zhì)控體系,不僅是為養(yǎng)殖業(yè)持續(xù)提供質(zhì)量可控、成份明確及品質(zhì)穩(wěn)定的產(chǎn)品,也是推動(dòng)行業(yè)健康發(fā)展的需要[8]。
作為清瘟解毒類的代表性方劑,清瘟解毒口服液現(xiàn)有質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)缺乏對(duì)主要活性成分的含量監(jiān)測(cè),已經(jīng)無法對(duì)產(chǎn)品質(zhì)量和臨床療效進(jìn)行有效控制。本研究選取方中主要藥味黃芩、梔子中的主要活性成分黃芩苷、梔子苷為研究對(duì)象,建立了HPLC同時(shí)對(duì)兩種活性成分進(jìn)行含量測(cè)定的方法。研究結(jié)果顯示,該方法操作簡(jiǎn)單,專屬性強(qiáng),準(zhǔn)確性、重復(fù)性、精密度、耐用性良好,適用于該制劑的質(zhì)量控制,并為制劑標(biāo)準(zhǔn)的完善和產(chǎn)品療效的有效控制提供了科學(xué)依據(jù)。