高羊茅FaGST1基因克隆、亞細胞定位及表達分析

陳錫 趙德剛 陳瑩 吳佳海 袁暘暘 王小利

摘要：【目的】克隆高羊茅谷胱甘肽-S-轉移酶（GST）基因FaGST1，并進行亞細胞定位及表達分析，為深入研究該基因的抗逆分子調控提供理論依據。【方法】采用RT-PCR和RACE從高羊茅黔草1號中克隆FaGST1基因，對其進行生物信息學分析，構建植物融合表達載體pCAMBIA1300-FaGST1-GFP，通過農桿菌介導轉入煙草葉片表皮細胞，觀察FaGST1基因亞細胞定位情況，并利用實時熒光定量PCR檢測高鹽、高溫、干旱及低氮脅迫處理下高羊茅葉片中該基因的表達情況?！窘Y果】克隆獲得FaGST1基因cDNA全長序列為1003 bp，開放閱讀框（ORF）為681 bp，編碼227個氨基酸殘基，其編碼蛋白的分子量約25.60 kD，理論等電點（pI）為5.58，親水指數平均值-0.342，不穩定系數32.96，為穩定的親水蛋白，定位于細胞核。FaGST1蛋白二級結構中，α-螺旋占50.44%，β-轉角占5.75%，無規則卷曲占30.54%，延伸鏈占13.27%。FaGST1蛋白的保守結構區域為含有G位點的N末端結構域和含有H位點的C末端結構域。FaGST1蛋白與黑麥草GST蛋白（AMY26594.1）的氨基酸序列相似性最高，為93%，其次是海濱雀稗GST蛋白（AMN87043.1），為91%，與玉米（ACG39365.1）和小米（KQK86785.1）GST蛋白氨基酸序列相似性均在80%以上，與系統發育進化樹分析結果基本相符，即FaGST1蛋白與黑麥草、海濱雀稗、玉米和小米等禾本科植物GST蛋白親緣關系較近。高羊茅FaGST1基因在干旱、高溫、高鹽脅迫和低氮脅迫處理下均出現抑制表達?！窘Y論】FaGST1基因負向調控高羊茅逆境脅迫響應。

關鍵詞： 高羊茅;谷胱甘肽-S-轉移酶（GST）;基因克隆;亞細胞定位;生物信息學分析;非生物脅迫;表達分析

中圖分類號： S543.9? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?文獻標志碼： A 文章編號：2095-1191（2020）07-0000-11

Abstract：【Objective】Glutathione-S-transferase（GSTs） gene FaGST1 form tall fescue was cloned，subcellular locali-zation and expression analysis was analyzed in order to provide reference for molecular regulation of stress resistance study of the gene. 【Method】FaGST1 gene was cloned by RT-PCR and RACE from tall fescue Qiancaoyihao， the structure and function of the protein were analyzed by bioinformatic software，and plant fusion expression vector pCAMBIA1300-FaGST1-GFP was constructed，which injected to tobacco epidermal cells through agrobacterium-mediated method，the subcellular localization of FaGST1 gene was observed，and FaGST1 gene expression level in tall fescue leaves under salt stress， heat stress，drought stress and low nitrogen stress was analyzed by qRT-PCR. 【Result】The sequence analysis results showed that the full-length cDNA（1 003 bp） was obtained with a 681 bp open reading frame（ORF），which encoded a small molecular protein containing 227 amino acids，the relative molecular weight of FaGST1 protein was about 25.60 kDa and its theoretical isoelectric point（pI）? was 5.58. The grand average of hydropathicity was -0.342 and the instability index was 32.96， which was a stable hydrophilic protein. Subcellular localization results showed that FaGST1 was located on the cell uncleus. In the secondary structure of FaGST1 protein，including 50.44% of alpha helix， 5.75% of beta turn， 30.53% of random coil and 13.27% of extended strand were observed. FaGST1 protein conserved domain contained the GST-specific N-terminal domain （G site） and the C-terminal domain （H site）. FaGST1 protein had the highest amino acid sequence similarity with GST （AMY26594.1） of Lolium perenne，at 93%，and followed the amino acid sequence similarity with GST（AMN87043.1） of Paspalum vaginatum， at 91%. Its amino acid sequence similarities with GST （AMY26594.1） of Zea mays（ACG39365.1） and Setaria? italica（KQK86785.1） were over 80%， the results were basically consistent with phylogenetic evolution tree analysis. FaGST1 had close genetic relationship with the GST protein of Lolium perenne，P. vaginatum，Z. mays and S. italica. The qRT-PCR results showed that FaGST1 expression was down-regulated under drought stress，heat stress，salt stress and low nitrogen stress. 【Conclusion】The study results show that FaGST1 gene has negative regulation function under adversity stress response of tall fescue.

Key words： tall fescue; glutathione-S-transferase（GST）; gene cloning; subcellular localization; bioinformatics analysis，abiotic stress; expression analysis

Foundation item： Special Fund Project of the Guizhou Science and Technology Platform and Talent Team（QKHPTRC〔2018〕5634）; Science and Technology Plan Project of Guizhou（QKHJC〔2019〕1302）; Open Foundation of Key Laboratory of Ministry of Education（MOELP-201702）; Youth Foundation of Guizhou Academy of Agricultural Sciences（QNKYQNJJXM〔2018〕80）

0 引言

【研究意義】高羊茅（Festuca arundinacea）是禾本科羊茅屬多年生冷季型牧草，廣泛種植于溫帶地區，因具有四季常綠和耐踐踏的優點，又被作為草坪草，應用于園林綠化設計、保持水土及生態環保等方面。貴州是典型的喀斯特地區，地表崎嶇、土壤貧瘠、干旱頻發，氣候變化多樣，冷季型牧草或草坪草生長較差（吳佳海等，2002）。谷胱甘肽-S-轉移酶（Glutathione-S-transferase，GST）是廣泛存在于真核生物中催化還原型谷胱苷肽與各種疏電或親電化合物發生反應的一種多功能蛋白酶，主要作用于植物代謝、誘導脅迫和信號轉導中（Gong et al.，2005;Eliana et al.，2006），還可作為天然植物生長素（IAA）的載體（陳秀華等，2013）。因此，克隆高羊茅GST基因（FaGST1），并進行亞細胞定位及表達分析，以探究該基因在高羊茅非生物脅迫響應中的調控機制，對培育抗性強且適宜貴州生態環境的高羊茅新品種具有重要意義。【前人研究進展】1970年Frear和Swanson首次在玉米植株中發現GST基因序列。隨著相關研究的深入，已從17個物種中相繼克隆獲得GST基因及其類似序列（Basantani and Srivastava，2007;Conn et al.，2008），其中，玉米（Zea mays）42個（Shimabukuro et al.，1970），擬南芥（Arabidopsis thaliana）54個（Dixon et al.，2002），水稻（Oryza sativa）59個（Moons，2003），楊樹（Populus）81個（Lan et al.，2009）。研究表明，GST是一類多功能蛋白家族，由分子量約26 kD的兩個亞基組成二聚體（同源或異源），兩個亞基均具有2個結構域，其中N端結構域的G位點是谷胱甘肽（GSH）特異結合的位點，氨基酸序列較保守，C端結構域的H位點結合疏水底物，氨基酸序列可變性較大（Chen et al.，2003）。GST在重金屬、冷、熱、鹽、除草劑等非生物脅迫及病原侵染等生物脅迫過程中發揮重要作用（Dudler et al.，1991;胡廷章等，2007）。如水稻OsGST2基因受稻瘟病菌誘導表達上調，植株的抗病性提高（Agrawal et al.，2002）;橡膠HbGSTU1是一個典型的GST Tau家族基因，在橡膠樹割膠、傷害、低溫等逆境過程中發揮作用，可作為橡膠樹抗逆分子育種的靶標基因（范玉潔等，2011）;小麥GST基因參與白粉病的應答，提高植株的抗病性（吳金華等，2013）;番茄中多個GST基因家族成員受水楊酸和鹽脅迫誘導表達上調，植株的抗脅迫能力明顯提高（Csiszár et al.，2014）;蘋果被斑點落葉病原菌侵染后MdGSTU1基因表達顯著上調，植株的抗病性明顯提高（安秀紅等，2014）;向日葵HaGSTU1基因表達上調，抗核盤菌能力明顯提高（馬立功等，2015），且向日葵GST基因表達受鹽、ABA、冷和熱等脅迫影響（凌云鶴等，2019）;山羊草GST基因也受干旱和鹽脅迫影響，在不同組織中表達水平存在明顯差異（馬建輝等，2018）;大蒜AsGST基因在鹽脅迫下表達上調（梁志樂等，2019）。【本研究切入點】高羊茅是禾本科六倍體植物，已知的基因組信息量較少，至今鮮見關于高羊茅GST基因的相關研究報道?！緮M解決的關鍵問題】以高羊茅品種黔草1號（Festuca arundinacea Schreb. cv. ‘Qiancao No.1）為材料，基于前期試驗轉錄組測序拼接獲得的GST基因序列，通過RT-PCR和RACE克隆FaGST1基因，對其進行生物信息學分析，通過構建融合表達載體進行亞細胞定位，并通過實時熒光定量PCR檢測非生物脅迫下FaGST1基因的表達情況，為深入研究高羊茅GST基因的抗逆分子調控功能提供理論依據。

1 材料與方法

1. 1 試驗材料

供試材料高羊茅黔草1號是貴州省農業科學院草業研究所牧草研究團隊培育的牧草新品種，2005年通過國家審定（登記號299），種植于貴州獨山縣試驗基地資源圃。該品種適應性廣、坪用性好、抗逆性強、耐踐踏、產量高，且種子成熟期集中，是草坪草、綠化環境及生態治理的優良草種。

TRIzolTM Kit RNA提取試劑、反轉錄試劑盒、RACE試劑盒和SYBR Green I熒光定量染料均購自寶生物工程（大連）有限公司。瓊脂糖DNA回收試劑盒購自Omega Bio-Tek Inc（美國）。引物均由上海捷瑞生物工程有限公司合成。主要儀器設備：實時熒光定量PCR儀（TaKaRa PCR Thermal Cycler Dice Real Time System，Promega A6001）、PCR儀（Bio-Rad My-Cycler、GeneAmp PCR system 9700）、瓊脂糖凝膠電泳儀（Bio-Rad Mini-Protean/Power Pac 300）和凝膠成像系統（Bio-Rad GelDoc）。

1. 2 樣品處理及采集

選取飽滿、品質優良的高羊茅種子，播種于裝有標準Hoagland營養液容器中，存放于光照培養箱中進行培養，光強度5400 lx，光培養16 h/d，暗培養8 h/d，相對濕度60%，溫度（24±2）℃，常規管理7 d后分別進行高鹽、高溫、干旱和低氮脅迫處理。高鹽脅迫處理：取健康生長的高羊茅植株置于含有400 mmol/L NaCl的Hoagland營養液中處理24 h。高溫脅迫處理：取健康生長的高羊茅植株在42 ℃培養箱中處理24 h。干旱脅迫處理：采用模擬干旱的方法將健康生長的高羊茅植株置于30% PEG-6000溶液（滲透勢為-1.0 MPa）中處理24 h。低氮脅迫處理：將健康生長的高羊茅植株轉移至無氮的水培液（營養液中Cl-取代NO3-）中處理24 h。上述處理均以在標準Hoagland營養液中生長的高羊茅為對照。各處理的采樣時間均為0、0.5、1.0、2.0、6.0、12.0和24.0 h共7個時間點，每處理3次重復。分別將同一時間采集的高羊茅鮮嫩葉片混合，液氮速凍后，置于-80 ℃保存備用。

1. 3 RNA提取及cDNA合成

稱取高羊茅新鮮葉片0.1 g，參照TRIzol? Kit RNA試劑盒說明提取總RNA，于-80 ℃冰箱保存備用。取2 μg總RNA，以Oligo（dT）為引物，按照反轉錄試劑盒（RevertAid H Minus First Strand cDNA Synthesis Kit）說明反轉錄合成cDNA第一鏈，于-20 ℃冰箱保存備用。

1. 4 FaGST1基因克隆

根據前期試驗獲得高羊茅轉錄組數據基因注釋，從中找出高羊茅GST基因對應的Unigene序列，用Premier primer 5.0設計FaGST1基因的中間片段特異引物FaGST1-F1/FaGST1-R1（表1）。以高羊茅鮮嫩葉片的cDNA為模板，PCR反應體系50.0 μL：2×PCR Buffer for KOD FX Neo 25.0 μL，2 mmol/L dNTPs 10.0 μL，10 μmol/L上、下游引物（FaGST1-F1/FaGST1-R1）各2.0 μL，cDNA模板1.0 μL，KOD FX Neo（1 U/μL） 1.0 μL，用ddH2O補充至50.0 μL。擴增程序：98 ℃預變性5 min;98 ℃ 10 s，60 ℃ 15 s，68 ℃ 5 min，進行30個循環，4 ℃保存備用。經1.8%瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產物并照相記錄，置于紫外燈下迅速切下與目的片段大小一致的條帶，參照瓊脂糖DNA膠回收試劑盒說明回收目的片段，連接至pMD19-T載體，轉化大腸桿菌DH5α感受態細胞后涂板，挑取陽性克隆送至生工生物工程（上海）股份有限公司測序。利用DNAMAN 6.0分析測序結果。結合5'-RACE和3'-RACE試劑盒說明設計引物（FaGST1-F2/FaGST1-R2和FaGST1-F3/FaGST1-R3）（表1），然后參照5'-RACE和3'-RACE試劑盒說明進行操作，最終獲得高羊茅FaGST1基因的5'端和3'端序列。利用瓊脂糖DNA膠回收試劑盒回收純化目的片段，使用DNAMAN 6.0將5'端和3'端序列與中間片段序列進行拼接，獲得FaGST1基因的cDNA全長序列。

1. 5 生物信息學分析

應用ORF Finder在線網站查找FaGST1基因的開放閱讀框（ORF）。使用ExPASy Proteomics Server中的ProtParam和ProtScale預測FaGST1蛋白的理化性質。通過NCBI中的BLAST比對，搜索下載其他植物同源GST蛋白，并用DNAMAN 6.0進行多重比對，最后利用MEGA 6.0的鄰接法（Neighbor jointing，NJ）構建系統發育進化樹。分別用SOPMA和SWISS-MODEL預測FaGST1蛋白的二級結構和三級結構。

1. 6 融合表達載體構建和亞細胞定位

以FaGST1-GFP-F/FaGST1-GFP-R為引物，利用高保真酶KOD FX Neo擴增獲得FaGST1基因，反應體系和擴增程序見方法1.4，用1.8%瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產物，用瓊脂糖DNA膠回收試劑盒回收目的片段。用Kpn I和Xba I對目的片段和質粒pCAMBIA1300-GFP進行雙酶切，回收酶切產物進行體外連接，以構建融合表達載體pCAMBIA1300-FaGST1-GFP（圖1），用冷卻法將其轉入GV3101農桿菌感受態細胞，涂布于含卡那霉素（Kan）和利福平（Rif）的固體培養基中進行抗性篩選，挑取單菌落培養后進行菌液PCR驗證，將陽性克隆菌液送至生工生物工程（上海）股份有限公司測序。從測序正確的陽性克隆菌液中抽提質粒備用。

將被轉入融合表達載體pCAMBIA1300-FaGST1-GFP的農桿菌過夜培養后，轉接至含Kan和Rif的LB液體培養基中，28 ℃搖床培養16 h，再加入乙酰丁香酮和嗎啉乙磺酸（MES）。常溫下4000 r/min離心菌液10 min，丟棄上清液，用MgCl2溶液重懸菌體，加入MAS混勻，靜置3 h，作為后續試驗的侵染液。取正處于生長期的煙草葉片，葉片反面用針頭扎數個小孔，用注射器吸取侵染液，將其從葉片下表皮注射到葉片內，作為處理組，以轉入空載體pCAMBIA1300-GFP的煙草葉片為對照。注射72 h后，撕取煙草表皮細胞置于激光共聚交熒光顯微鏡下檢測熒光信號[綠色熒光蛋白（GFP）激發光為488 nm，4'，6-二脒基-2-苯基吲哚（DAPI）激發光為405 nm]。

1. 7 實時熒光定量PCR檢測

分別稱取干旱、高溫、高鹽和低氮脅處理的高羊茅葉片各0.1 g，提取其總RNA，并反轉錄合成cDNA第一鏈，具體方法與1.2.1相同。將合成的cDNA稀釋20倍作為模板，以FaGST1-F4/FaGST1-R4為引物（表1），實時熒光定量PCR檢測不同脅迫處理下高羊茅葉片FaGST1基因的表達情況。在冰上配制反應體系20.0 μL： cDNA模板2.0 μL，10 μmol/L上、下游引物（FaGST1-F4/FaGST1-R4）各1.0 μL，SYBR Premix Ex Taq（2×） 10.0 μL，ddH2O補足至20.0 μL。將反應體系置于實時熒光定量PCR儀進行擴增。擴增程序：95 ℃ 2 min;95 ℃ 15 s，55 ℃ 15 s，共進行45個循環;72 ℃延伸5 min。內參基因為Ubiquitin，其引物為UBI-F1/UBI-R1（李小冬等，2017）。生物學技術各設3次重復，樣品也各設3次重復。

1. 8 統計分析

根據2-ΔΔCt法計算分析FaGST1基因的相對表達量。采用Excel 2007整理分析數據及作圖。

2 結果與分析

2. 1 FaGST1基因cDNA克隆結果

以高羊茅鮮嫩葉片的cDNA為模板、FaGST1-F1/FaGST1-R1為引物，PCR擴增出一條長度約600 bp的清晰條帶（圖2-A），與預期結果相符。測序結果顯示，該片段為FaGST1基因的中間片段，長度為644 bp。采用RACE擴增FaGST1基因的3'端和5'端，結果如圖2-B和圖2-C所示。測序結果顯示，該基因5'端為174 bp，3'端為326 bp。利用DNAMAN 6.0將5'端和3'端序列與中間片段序列進行拼接，獲得高羊茅GST基因cDNA序列全長為1003 bp，ORF長度為681 bp，編碼227個氨基酸殘基（圖3）。

2. 2 生物信息學分析結果

由圖4可知，FaGST1蛋白的保守結構區域為含有G位點的N末端結構域（藍色）和含有H位點的C末端結構域（綠色）。ProtParam預測結果顯示，FaGST1蛋白分子式為C1182H1798N294O336S3，原子總數為3613個，分子量約25.60 kD，理論等電點（pI）為5.58，親水指數平均值-0.342，不穩定系數32.96，為穩定的親水蛋白（圖5）。SOPMA和SWISS-MODEL預測結果顯示，FaGST1蛋白的二級結構中，α-螺旋占50.44%，β-轉角占5.75%，無規則卷曲占30.54%，延伸鏈占13.27%（圖6）。利用SWISS-MODEL在線軟件預測該蛋白的三級結構，結果（圖7）顯示，其與二級結構預測結果相符。

2. 3 系統發育進化樹分析結果

通過NCBI數據庫的BLAST比對，下載GenBank收錄的16種植物GST蛋白氨基酸序列，利用DNAMAN 6.0進行多重序列比對，FaGST1蛋白與黑麥草GST蛋白（AMY26594.1）的氨基酸序列相似性最高，為93%，其次是海濱雀稗GST蛋白（AMN87043.1），為91%，與玉米（ACG39365.1）和小米（KQK86785.1）GST蛋白氨基酸序列相似性均在80%以上（圖8）。由圖9可知，FaGST1蛋白先與黑麥草GST蛋白聚在一起，然后與海濱雀稗GST蛋白聚在一起，表明三者親緣關系較近，此外，FaGST1蛋白與玉米和小米GST蛋白親緣關系也較近，其原因可能是這些植物同屬禾本科，尤其是前三者均為禾本科牧草。

2. 4 FaGST1蛋白亞細胞定位結果

將克隆獲得的FaGST1基因連接至pCAMBIA1300-GFP載體上，成功構建融合表達載體pCAMBIA1300-FaGST1-GFP，通過農桿菌介導轉入煙草表皮細胞，撕取煙草表皮細胞置于激光共聚交熒光顯微鏡下觀察熒光信號，結果發現，對照組整個煙草表皮細胞中分布非常強的綠色熒光，但處理組煙草表皮細胞僅細胞核能檢測到熒光信號，表明FaGST1蛋白定位于細胞核（圖10）。

2. 5 不同脅迫處理下FaGST1基因表達分析結果

采用實時熒光定量PCR檢測高鹽、高溫、干旱及低氮脅迫處理下高羊茅葉片中FaGST1基因表達情況，結果（圖11）顯示，FaGST1基因的表達水平受到不同程度影響，與對照相比，高鹽脅迫6.0 h FaGST1基因極顯著下調表達（P<0.01，下同）（圖11-A）;高溫脅迫2.0 h FaGST1基因極顯著上調表達，但脅迫處理6.0和12.0 h時，其表達極顯著下調（圖11-B）;干旱脅迫0.5和12.0 h時FaGST1基因表達顯著上調（P<0.05，下同），但處理1.0 h時其表達顯著下調（圖11-C）;低氮脅迫0.5～24.0 h（除脅迫1.0 h外），FaGST1基因的表達呈極顯著下調（圖11-D）?？梢?，FaGST1基因在干旱、高溫、高鹽和低氮脅迫處理下均出現抑制表達，表明FaGST1基因負向調控高羊茅逆境脅迫響應。

3 討論

植物正常生長發育過程中，體內活性氧（ROS）的產生和清除處于動態平衡，當受到不利生物環境條件如高溫、低溫、干旱、鹽漬等逆境脅迫影響時，植物體內會大量積累ROS，對蛋白質、脂質等大分子物質造成不可逆性氧化損傷，從而引起細胞代謝異常，導致植株的生長發育受阻（Mohsenzadeh et al.，2011;毛小輝等，2014）。由于GST的GSH具有還原作用，可清除植物細胞中產生的ROS以修復受氧化損傷的細胞，維持植物體內正常代謝，且GSH能結合除草劑，以致不傷害目的酶，說明GST還具有降低異源物質毒性的作用（陳秀華等，2013）。Moons（2003）研究發現，水楊酸（SA）、茉莉酸（JA）和生長素（IAA）能誘導水稻根中GST基因表達上調，產生大量GST蛋白清除ROS，表明該基因參與脅迫應答調控機制。此外，植物GST基因能應答脫水、冷害、干旱、高鹽和脫落酸（ABA）等非生物脅迫（Fang et al.，2002）。Roxas等（1997）研究發現，煙草植物中超表達GST/GPX基因可加速轉基因煙草幼苗在冷脅迫條件下的生長;Yang等（2014）研究顯示，剛毛怪柳中ThGSTZ1基因過量表達可增加植物的抗旱和耐鹽能力，從而減少細胞的損傷。可見，GST在植物響應生物逆境脅迫中發揮重要作用。

目前，已有較多關于GST生理生化活性與植物抗性的研究報道，有關GST基因在植物中的表達調控研究也較多，但以高羊茅為研究對象的相關研究鮮見報道，其原因可能是高羊茅為禾本科六倍體植物，已知的基因組信息量較少。本研究以高羊茅黔草1號為材料，通過RACE從高羊茅中獲得FaGST1基因cDNA全長序列，具有完整ORF序列，其編碼蛋白保守結構區域包括含有G位點的N末端結構域和含有H位點的C末端結構域，與黑麥草GST蛋白的氨基酸序列相似度最高，然后與海濱雀稗的GST蛋白聚在一起，表明三者親緣關系較近，此外，FaGST1蛋白與玉米和小米GST蛋白親緣關系也較近，其原因可能是這些植物同屬禾本科牧草。推測其與小麥GST蛋白和水稻GST蛋白（毛小輝等，2014）氨基酸序列相似性也較高，原因是小麥和水稻同屬禾本科植物。

GST基因家族龐大，不同植物中GST基因種類和亞細胞定位均存在差異。本研究發現，FaGST1基因亞細胞定位于細胞核。但Dixon等（2002）研究表明，大多數GST基因定位于細胞質中，少數定位于細胞核。前人研究發現，擬南芥AtGST1（Yang et al.，1998）和鹽角草SbGST（Jha et al.，2011）基因受干旱、高鹽、低溫脅迫等誘導表達上調。馬立功等（2015）研究發現，干旱、高鹽、草酸、核盤菌及其代謝物均能誘導向日葵HaGSTU1基因表達上調。本研究采用實時熒光定量PCR檢測高鹽、高溫、干旱和低氮脅迫處理下高羊茅葉片中FaGST1基因表達情況，結果顯示高羊茅FaGST1基因在干旱、高溫、高鹽和低氮脅迫處理下均出現抑制表達，推測高羊茅中FaGST1基因負向調控高羊茅逆境脅迫響應。該結論與前人研究結果存在差異，其原因是GST基因家族龐大復雜，其編碼蛋白具有多種功能，雖然家族成員間存在功能冗余的現象，但不同成員在不同物種中具有一定的表達特異性和特定的表達模式（Sappl et al.，2009）。今后，可通過構建FaGST1基因的過量表達載體遺傳轉化擬南芥驗證其調控功能。

4 結論

FaGST1基因負向調控高羊茅逆境脅迫響應，為進一步解析高羊茅FaGST1基因的抗性分子機制和功能特性提供理論基礎。

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（責任編輯 陳 燕）