曹冰冰,王秋霜,秦丹丹,傅冬和,方開星,姜曉輝,李紅建,王青,潘晨東,李波,吳華玲
紅紫芽茶花青素合成關鍵酶活性與重要酚類物質相關性研究
曹冰冰1,2,王秋霜1*,秦丹丹1,傅冬和2,方開星1,姜曉輝1,李紅建1,王青1,潘晨東1,李波1,吳華玲1*
1. 廣東省農業科學院茶葉研究所,廣東省茶樹資源創新利用重點實驗室,廣東 廣州 510640;2. 湖南農業大學,湖南 長沙 410128
以廣東的紅葉1號、紅葉2號、丹妃和云南紫娟4種紅紫芽品種(系)為供試材料,以英紅九號綠芽品種為對照,通過分析酶活性研究了紅紫芽茶花青素合成關鍵酶活性變化規律,并揭示了其與花青素、茶多酚、兒茶素組分等重要酚類物質含量的相互關系。結果表明,紅紫芽茶花青素合成過程中,同一季節不同品種(系)類黃酮-3--糖基轉移酶(UFGT)活性與茶多酚總量和花青素含量均顯著正相關,為花青素合成的關鍵酶;而苯丙氨酸解氨酶(PAL)、查爾酮合成酶(CHS)、類黃酮-3-羥化酶(F3H)、二氫黃酮醇-4-還原酶(DFR)、黃酮醇合成酶(FLS)、花青素合成酶(ANS)和花青素還原酶(ANR)等活性能力與花青素含量變化趨勢不存在密切的相關性;春季各樣品兒茶素(C)含量與PAL酶活性顯著正相關,表兒茶素沒食子酸酯(ECG)含量與DFR酶活性存在顯著正相關;同一季節不同品種(系)CHS、F3H、ANS以及ANR酶活性與酚類物質含量無顯著相關性。
紅紫芽茶;花青素;酶;多酚
花青素作為自然界中植物色素的重要組成部分,不僅賦予了植物的觀賞價值,良好的保健功效使其在醫藥和食品行業得到了廣泛的應用[1-2]。茶樹作為多年生常綠葉用植物,其鮮葉內的花青素含量較少,一般占干物重的0.01%左右,因其單體的不穩定性,常與葡萄糖、半乳糖、鼠李糖等縮合成苷類物質,形成花青苷,其中較為重要的組分包括飛燕草花青素及其苷、芙蓉花青素及其苷、翹搖紫苷元(又稱三策啶)[3]。紅紫芽茶樹是從自然變異群體選育出的性狀穩定、全年新梢呈紫色或紫紅色的一種特異茶樹資源,其花青素含量都在1%以上,很多研究證實茶樹芽葉紫化程度與花青素含量呈極顯著的正相關性[4]。由于味覺上花青素呈現出苦味,因此紅紫芽茶樹鮮葉制作的成品茶葉一般滋味苦澀、葉底發暗、品質不佳[5]。然而,由于近年來研究發現紅紫芽茶具有良好的保健功效和應用前景,這種特異類型茶樹資源受到了國內外學者的廣泛關注。
花青素屬于酚類物質中的一大類,其合成途徑是類黃酮代謝途徑的一個支路,所涉及的酶類在擬南芥、矮牽牛、玉米等多種物種上已有深入研究。在植物體內,苯丙氨酸經由苯丙氨酸解氨酶(PAL)、查爾酮合成酶(CHS)、類黃酮-3-羥化酶(F3H)、二氫黃酮醇-4-還原酶(DFR)、花青素合成酶(ANS)等一系列關鍵酶的酶促反應生成花青素,最后經花青素糖基轉移酶(GT)和花青素?;D移酶(AT)等關鍵酶的糖基化、?;刃揎椬饔眯纬煞€定的花青苷[6-7]。茶樹中花青素作為酚類物質的一個重要組成部分,其合成途徑已被探明(圖1),花青苷既是茶樹類黃酮合成途徑某一分支的最終產物,也有部分作為中間產物,合成兒茶素類物質以及黃酮苷等[8]。為了研究紅紫芽茶樹高花青素的形成機理,國內外學者目前進行了大量的研究,基因方面主要開展了合成關鍵酶和調控基因的克隆與表達[9-14]以及外界環境因素對其表達的影響等研究[15-16];生物學特性[17]和生化組分方面則在花青素組成及含量[18-20]、分離純化工藝[21-25]、抗病活性[26]等方面做了探討。但是,對于花青素合成過程中主要酶類活性和花青素、兒茶素等茶葉重要酚類物質的變化趨勢,以及二者之間的相關性研究較為鮮見。因此,本文以自主選育出的紅葉系列(紅葉1號、紅葉2號)、紫芽品種(丹妃)和云南的紫娟4個不同品種(系)為供試材料,研究不同階段紅紫芽茶花青素合成中主要酶類活性和酚類物質的變化規律,并對二者的相互關系進行了初步探討,為進一步解析紅紫芽茶樹花青素形成機理提供科學依據和理論基礎。
以紅紫芽品種(系)紅葉1號、紅葉2號、丹妃、紫娟為供試材料,以綠芽品種英紅九號為對照,上述樣品均來源于廣東省茶樹資源庫(廣東省農業科學院茶葉研究所坑口咀茶葉基地)。分別于2016年的9月(秋茶)、2017年4月(春茶)、7月(夏茶)3個季節采摘嫩梢一芽二葉。樣品采集放入液氮速凍后轉入–80℃冰箱冷凍保存,用于酶活性和鮮葉理化分析。

注:Phenylalanine:苯丙氨酸;Naringenin chalcone:柚皮素查爾酮;Leucocyanidin:無色花青素;Catechin or epicatechin:兒茶素或沒食子兒茶素;Eriodictyol:圣草酚;Dihydrokaempferol:二氫山柰素;Kaempferol:山奈素;Flavonol glycosides:黃酮醇糖苷;Proanthocyanins:原花青素;Flavonoid glycosides:黃酮苷;Leuco deiphinidin:無色飛燕草色素;Gallocatechin or gallo epicatechin:兒茶素或沒食子兒茶素;Gallic acid:沒食子酸;β-Glucogallin:β-沒食子酸葡萄糖;Epigallocatechin-3-gallate:沒食子兒茶素-3-葡萄糖;Naringenin:柑橘素;Pentahydroxy flavanone:五羥基黃烷酮;Dihydro quercetin:二氫槲皮素;Dihydro myricetia:二氫楊梅素;Cyanidin:矢車菊素;Quercetin:槲皮素;Myricetia:楊梅素;Deiphinidin:飛燕草色素;Anthocyanins:花青苷;PAL:苯丙氨酸解氨酶;C4H:肉桂酸羥化酶;4CL:對香豆酰CoA連接酶;CHI:查爾酮異構酶;CHS:查爾酮合成酶;F3H:黃烷酮-3-羥化酶;F3'H:黃烷酮-3'-羥化酶;ANR:花青素還原酶;F3'5'H:黃烷酮-3',5'-羥化酶;DFR:二羥基黃酮醇還原酶;FLS:黃酮醇合成酶;ANS:花色素合成酶;UFGT:黃酮-3-O-糖基轉移酶

圖2 試驗樣品
試驗試劑主要包括:85%的磷酸、酒石酸亞鐵、茚三酮、蒽酮、交聯聚乙烯吡咯烷酮(PVPP)、苯甲基磺酰氟(PMSF)、考馬斯亮藍、-巰基乙醇、牛血清蛋白、抗壞血酸、Tris-base、亮抑蛋白酶肽(Leupeptin),均為分析純;表兒茶素(Epicatechin,EC)、兒茶素(Catechin,C)、表沒食子兒茶素(Epigallatecatechin,EGC)、表兒茶素沒食子酸酯(Epicatechin gallate,ECG)、表沒食子兒茶素沒食子酸酯(Epigallatecatechin gallate,EGCG)、兒茶素沒食子酸酯(Catechingallate,CG)、沒食子兒茶素沒食子酸酯(Gallate catechingallate,GCG)和沒食子兒茶素(Gallate catechin,GC),均為標準品,購于Sigma公司;酶聯免疫吸附試劑盒(ELISA KIT)購于上海酶聯生物科技有限公司。
722S型可見分光光度儀(上海精密科學儀器有限公司);5417型冷凍式離心機(德國艾本德有限公司);1500型全波長酶標儀(賽默飛世爾科技有限公司);1200型安捷倫液相色譜(美國安捷倫科技有限公司);55-4型冷凍干燥機(Scanlaf公司)。
1.3.1 酶含量及酶活性測定[27]
粗酶液的制備:稱取茶鮮葉1~3?g,加入少量石英砂和等量的PVPP,在液氮中研磨至粉狀,分裝到預冷的離心管中,取其中1管加入預冷的酶提取緩沖液,振蕩渦旋混勻,4℃、12?000?r·min-1離心,取上清液移至新離心管中冰浴,用于酶的含量測定和酶活性分析。
酶提取緩沖液:50?mmol·L-1Tris-HCI(pH=8.9)、10?μmol·L-1亮抑蛋白酶肽、5?mmol·L-1EDTA、15?mmol·L-1-巰基乙醇、5?mmol·L-1Vc、1?mmol·L-1PMSF、0.15%(∶)的PVPP。
酶含量測定:采用Bardford法測定。在3組微量離心管中分別加入0.1?mg·mL-1的標準牛血清白蛋白(BSA溶液)0、30、60、90、120?μL和150?μL,用酶提取緩沖液將其稀釋到1?000?μL,加入500?μL考馬斯亮藍蛋白試劑后振蕩混勻,室溫放置2?min,利用全波長酶標儀在波長595?nm測定吸光度值,以吸光度為縱坐標,以牛血清白蛋白含量(μg)為橫坐標,繪制出標準曲線。取酶粗提液樣品10?μL,按照上述方法測定595?nm吸光度,根據上述標準曲線,計算出酶粗提液樣品中所含的蛋白質濃度。
酶活性分析:采用ELISA試劑盒測定酶活性。利用酶提取緩沖液將粗酶液濃度稀釋為1?μg·μL-1,置于冰浴上,用于酶的活性分析,測定步驟如下:從室溫平衡20?min后的鋁箔袋中取出所需板條,剩余板條用自封袋密封放回4℃;設置標準品孔和樣本孔,標準品孔加入不同濃度的標準品50?μL;待測樣本孔先加入待測樣本10?μL,再加入樣本稀釋液40?μL;隨后標準品孔和樣本孔中分別加入辣根過氧化物酶(HRP)標記的檢測抗體100?μL,用封板膜封住反應孔,37℃水浴鍋或恒溫箱溫育60?min;棄去液體,于吸水紙上拍干,每孔加滿洗滌液,靜置1?min去除洗滌液,于吸水紙上拍干,如此重復洗板5次;每孔加入底物A、B各50?μL,37℃避光孵育15?min;每孔加入終止液50?μL,15?min內,在450?nm波長完成樣品的吸光度測定和標準曲線繪制。根據所得標準曲線,計算出樣品的酶活性(U·mL-1)。
1.3.2 花青素含量的測定[28]
準確稱取1.0?g茶葉磨碎干樣,沸水浸提,過濾,定容至50?mL作為供試液。吸取2?mL供試液加入8?mL酸性乙醇,顯色30?min,離心后在535?nm下比色測定。
1.3.3 茶多酚及兒茶素含量測定[28]
茶多酚含量的測定采用比色法;兒茶素含量的測定采用HPLC分析法,色譜柱為安捷倫C18色譜柱(150?mm×4.6?mm);流動相A相:0.05%的磷酸水;B相:乙腈;梯度洗脫,檢測時長為45?min,流速為1?mL·min-1,進樣量為10?μL,檢測波長為278?nm,柱溫35℃。
1.3.4 茶樹鮮葉中含水量的測定[28]
稱取5.0?g茶樹鮮葉樣品,置于120℃烘箱內烘干2?h,測定烘干前后的質量差,計算含水量(%),用于換算花青素及其兒茶素等物質的含量。
茶樹鮮葉中花青素含量因季節和品種不同存在顯著差異。由圖3可知,春夏秋三季綠芽對照組花青素含量均極顯著低于供試組樣品。紅葉1號、紅葉2號的花青素含量春季最低,夏秋季顯著高于春季;而丹妃花青素含量趨勢為春季含量最高,夏秋顯著減少,與前期研究結果一致[4]。紫娟鮮葉中花青素含量在夏季最高,秋季次之,春季最低。紅紫芽品種(系)春夏秋三季花青素含量分別是對照的10.28~23.64倍、6.79~10.88倍和11.07~23.40倍。這與紅紫芽品系芽葉外觀呈紅紫色,而綠芽品種芽葉呈綠色的表型一致[17]。
不同季節茶樹鮮葉中茶多酚含量如圖4所示。春夏秋三季對照組和供試組茶多酚含量存在顯著性差異,其中紅葉1號、紅葉2號、丹妃中茶多酚含量顯著高于對照??傮w來說,茶樹鮮葉中茶多酚含量相對較高,達到干重的30%以上,除紫娟外,同一品種不同季節茶多酚的變化規律與花青素的變化趨勢基本一致。
兒茶素組分及含量測定結果如表1所示。所有樣品中EC、C、GC、CG含量均較低,酯型兒茶素EGCG含量最高,EGC次之。研究表明,紅紫芽茶鮮葉中酯型兒茶素含量高于普通綠芽茶樹鮮葉[11],但本研究中的規律并不明顯。紅葉1號(4.27%)、紅葉2號(4.75%)的ECG的含量大于對照(3.58%),且存在顯著性差異;紫娟(2.47%)和丹妃(2.08%)低于對照。紫娟中EGC含量春夏兩季顯著高于對照;紅葉1號、紅葉2號及丹妃含量則顯著低于對照組(紅葉2號的春季樣品除外)。丹妃和紫娟鮮葉中C和CG含量低于其他兒茶素組分,其中丹妃在春夏秋三季C的平均含量只有0.28%。不同品種中EGCG含量有所差別,在平均含量上對照組綠芽種鮮葉中C、EC、GC及GCG含量高于供試組樣品;在兒茶素總量上,對照綠芽種顯著高于供試組,與前期研究結論一致[13]。本研究中供試組樣品的兒茶素總量低于對照,可能有兩方面原因:一是兒茶素和花青素共用一條合成途徑,有此消彼長的關系,相同條件下紫芽茶的花青素含量高則兒茶素含量較低[14];二是對照種英紅九號為大葉種茶樹,自身具有較高的兒茶素含量。

表1 不同品種茶樹在不同季節鮮葉的兒茶素組分及含量
注:*表示供試組與對照同一季節樣品存在顯著差異(<0.05)
Note: * indicates that there is significant difference between test group and control in the same season (<0.05)

注:**表示供試組與對照同一季節樣品存在極顯著差異(P<0.01)

注:*表示供試組與對照同一季節樣品存在顯著差異(P<0.05)
PAL是苯丙烷代謝途徑第一個催化酶,催化苯丙氨酸形成肉桂酸進入次級代謝(圖1)。本研究分析了不同季節紅紫芽茶樹鮮葉中的PAL酶活性(圖5)。結果表明,與其他花青素合成代謝的關鍵酶相比,PAL酶活性最低。整體來看,夏季PAL活性最低(平均酶活力10?mU·mL-1),除丹妃外,其他3個供試組紅紫芽品種(系)顯著高于對照;春季丹妃和紫娟樣品PAL活性顯著低于對照;大部分樣品秋季PAL活性高于其他季節,平均酶活力約60?mU·mL-1。
CHS催化形成了茶樹花青素合成途徑中的第一個中間產物查兒酮(圖1)。由圖6-A可知,CHS在茶樹體內的活性相對較高(167~363?mU·mL-1),供試組夏季活性最高(254~362?mU·mL-1),春季和秋季較低,尤其是紫娟,夏季的酶活性最高。紅葉1號、丹妃及紫娟夏季CHS酶活力均顯著高于對照。
F3H和DFR的酶活在3個季節的變化趨勢相反(圖6-B、圖6-C),F3H一般在秋季的活性最高,春季最低;而DFR在春季活性最高,秋季最低;且前者的酶活性相對較大。春季紅紫芽茶鮮葉F3H活性與對照差異不顯著;夏季大部分紅紫芽茶鮮葉F3H活性顯著低于對照,而紫娟顯著高于對照,可能與紫娟夏季鮮葉中高EGC含量有關;秋季F3H活性紅葉1號顯著高于對照,丹妃顯著低于對照,其他樣品與對照差異不顯著。
與綠芽品種英紅九號相比,不同季節不同紅紫芽品種(系)的DFR酶活性差異較大(圖6-C):春季紅葉1號、紅葉2號酶活顯著高于對照,而紫娟DFR酶活顯著低于對照,丹妃與對照無顯著差異;夏季紅葉1號、紅葉2號、紫娟DFR酶活顯著高于對照,丹妃與對照種無顯著差異;秋季紫娟DFR酶活顯著高于對照,而紅葉2號顯著低于對照,紅葉1號和丹妃與對照無顯著差異。
ANS是將無色花青素轉化為有色花青素的關鍵酶,不同季節ANS酶活力變化如圖6-D所示。由圖6可知,ANS酶活力遠遠高于本試驗中的其他酶活力,整體酶活力范圍在300~400?mU·mL-1,且在不同季節較穩定,不同茶樹品種每個季節變化趨勢不同。春季,紅葉1號、紅葉2號、丹妃的ANS酶活力顯著低于對照;夏季,紅葉1號、紫娟ANS酶活力顯著高于對照,而紅葉2號顯著低于對照;秋季,丹妃ANS酶活力顯著高于對照。

注:*表示供試組與對照同一季節樣品存在顯著差異, P<0.05。下同

注:A:查爾酮合成酶;B:類黃酮-3-羥化酶;C:二氫黃酮醇-4-還原酶;D:花青素合成酶;E:花青素還原酶;F:類黃酮-3-O-糖基轉移酶
由圖6-E可知,ANR整體酶活力較低,平均酶活力處于54.04~75.81?mU·mL-1。春季樣品中紅葉1號ANR酶活顯著低于對照,其他紅紫芽樣品與對照差異不顯著;夏季樣品中紅葉2號和紫娟ANR酶活顯著高于對照,紅葉1號和丹妃與對照差異不顯著;秋季樣品ANR酶活力高于其他季節,其中紫娟酶活力最高,達到86.75?mU·mL-1,顯著高于對照,而其他紅紫芽品種(系)與對照無顯著差異。
UFGT是花青素合成代謝末端的一類酶,最常見的是類黃酮3--葡萄糖基轉移酶(UFGT),它能夠催化糖苷轉移,使不穩定的花青素轉化為穩定的花青苷。不同季節UFGT酶活力變化情況如圖6-G所示。春夏秋三季供試組樣品酶活度均顯著高于對照組(<0.05)。除對照組外,紅紫芽品種(系)UFGT的活性變化趨勢一致,均呈現秋季>夏季>春季(圖6-G)。
各品種(系)在春、夏、秋三季花青素合成關鍵酶活性與花青素、茶多酚、兒茶素的相關性分析如表2所示。PAL酶活性與包括花青素在內的大部分酚類物質含量無明顯的相關性,較為特殊的是紅葉1號和紫娟鮮葉中C含量與PAL酶活性存在顯著的相關性,前者為正相關,后者為負相關。除丹妃外,其他品種(系)鮮葉中PAL酶活力都與鮮葉中EGCG含量有正向相關性,但未達到顯著水平。
CHS酶活力與對照樣品英紅九號的花青素含量顯著正相關,相關系數達到0.999,而與紅紫芽品種(系)花青素含量不存在顯著相關性。紅紫芽品種(系)鮮葉的EGC、ECG、GC、CG含量與CHS酶活性均呈現負相關,其中紫娟的CG含量與CHS酶活性的相關性達顯著水平。丹妃的EGCG含量與CHS酶活力有正相關的趨勢,但不顯著,其余樣品均呈負相關,其中對照樣品英紅九號鮮葉中EGCG含量與CHS酶活力呈顯著負相關。
F3H酶活力與紅葉1號、紅葉2號和紫娟3個紅紫芽茶鮮葉的花青素含量存在一定的正相關性,而與丹妃花青素含量呈負相關,但均不顯著。丹妃鮮葉F3H酶活性與茶多酚含量顯著負相關。F3H酶活力與兒茶素各組分均沒有顯著的相關性。
DFR酶活性與丹妃花青素含量有一定的正相關性,與其他參試樣品花青素含量呈負相關,但均未達到顯著水平,而與丹妃的茶多酚含量呈顯著正相關。各品種(系)中DFR酶活性與兒茶素組分無明顯相關性。
除紫娟外,ANS酶活性與花青素含量整體呈現負相關趨勢。丹妃鮮葉中花青素和CG的含量與ANS酶濃度活性有顯著的負相關關系,相關系數均為–1.000。不同季節的ANR酶活力與其他酚類物質含量無明顯的相關性。
紅葉1號、紅葉2號茶鮮葉在春夏秋三季的UFGT活性變化與花青素含量有顯著的正相關,而丹妃的UFGT活性則與其存在顯著的負相關,對照英紅九號和紫娟UFGT活性與其無顯著正相關性。此外,丹妃和紅葉2號的UFGT活性分別與CG含量和GC含量呈顯著負相關。
同時,通過對同一季節的兩組樣品花青素合成關鍵酶與重要酚類物質含量的相關性分析發現(表3),春季所有樣品茶多酚含量與UFGT酶活性存在顯著正相關,C的含量與PAL酶活性顯著正相關,ECG的含量與DFR酶活性存在顯著正相關;春、夏、秋三季UFGT酶活性與所有樣品鮮葉中花青素的含量都有顯著的正相關性,春季UFGT酶活性與茶多酚總量顯著正相關。
茶樹體內酚類物質含量受品種遺傳和外界環境的雙重影響[16]。本研究中,常規綠芽品種對照組和紅紫芽品種(系)供試組茶多酚含量存在顯著差異,但并非紫芽品種(系)茶多酚含量均大于對照;而紅紫芽茶鮮葉中花青素含量極顯著高于對照組,是對照品種的6.79~23.64倍,這與紫芽品種(系)芽葉呈紅紫色,綠芽品種芽葉呈綠色或黃綠色的表型是一致的。花青素合成代謝關鍵酶活性與各兒茶素組分的顯著性差異分析表明,對照組和供試組樣品無一致規律性。春季不同品種(系)C含量與PAL酶活性顯著正相關,ECG含量與DFR酶活性顯著正相關,茶多酚總量與UFGT酶活性正相關;春夏秋三季CHS、F3H、ANS以及ANR酶活性與兒茶素組分無顯著相關性。總體來說,受遺傳決定因素的限制,供試組和對照組因茶樹品種的差異性,導致其體內多酚類物質的合成代謝存在一定差別,因此不適于在兩組之間進行比較;而對于同一茶樹品種(系)來說,其體內的多酚在合成時會受到季節環境因素影響,從而導致其合成量的改變,體內的花青素含量也隨之變化。

表2 不同茶樹品種的花青素合成關鍵酶活性與酚類物質含量相關系數
注:*表示該成分與花青素合成相關酶活性呈顯著相關性,<0.05。下同
Note: * indicates that there is a significant correlation between this component and enzyme activity involving in anthocyanin synthesis,<0.05. The same below

續表2

表3 不同季節的茶樹花青素合成關鍵酶活性與酚類物質含量的相關系數
花青素合成關鍵酶活性測定結果顯示,PAL、ANR等酶活性相對較低,ANS、CHS的酶活性較高,其中ANS活性最高且比較穩定,在不同的品種(系)及季節波動性較?。徊煌竟澆铇漉r葉PAL、CHS、F3H、FLS、ANS、ANR等酶活性變化趨勢與花青素含量變化無顯著的相關性,供試組和對照組的各個酚類組分的含量與F3H和DFR的相關性呈現大致相反的趨勢,但相關性均不顯著,可能與樣本數量較少有關。本次試驗所選的綠芽對照品種(英紅九號)茶多酚及兒茶素含量都相對較高,而茶樹體內花青苷的合成途徑又是類黃酮合成途徑的分支,所涉及酶類不僅參與花青素的合成,而且大部分會參與到包括兒茶素在內的其他類黃酮物質的合成,因而導致大部分的酶活性與花青苷或兒茶素等無明顯的相關性。
本研究還發現,同一季節UFGT酶活性在供試組及對照組之間存在顯著差異,UFGT酶活性與同一季節不同品種(系)中花青素含量呈正相關。UFGT是紅紫芽茶花青素合成過程的關鍵酶,為茶葉中酚類物質的組成提供了一定生化動力,進而影響著紅紫芽茶的主要理化成分。但由于茶樹UFGT家族包含大量基因,它們的功能不同,具體哪些基因是花青素合成的關鍵基因仍需要深入研究。各品種(系)花青素含量的季節性變化趨勢與UFGT酶活性相關性不一致,紅葉品種(系)與其呈顯著正相關,而紫葉的丹妃與其呈顯著負相關,紫娟與其無顯著相關性(表2)。UFGT酶活性在不同品種(系)中季節性的差異表現,可能是因為不同的品種(系)體內花青苷的組分不同,而由于本研究測定的UFGT是對類黃酮類的3位進行糖基化,如果酶體內主要的花青苷組分是甲基化、酰化花青素或5位糖基化等,那么該酶的活性變化趨勢可能會與其體內花青苷的含量變化趨勢有所偏差[29]。因此針對不同的茶樹品種(系),其所含花青苷組分的差異可能導致UFGT酶活性的差異,后期還需對這些品種(系)中關鍵的UFGT進一步鑒定。此外,對花青素的修飾,除葡萄糖糖苷化作用外,對鼠李糖、阿拉伯糖等糖苷修飾酶的修飾作用,以及?;图谆傅男揎椬饔茫灿写M一步研究分析,以獲得對紫芽茶花青苷合成機理更加全面的了解。
[1] Fernandes I, Faria A, Calhau C, et al. Bioavailability of anthocyanins and derivatives [J]. Journal of Functional Foods, 2014, 7: 54-66.
[2] Santhakumar A B, Kundur A R, Sabapathy S, et al. The potential of anthocyanin-rich Queen Garnet plum juice supplementation in alleviating thrombotic risk under induced oxidative conditions [J]. Journal of Functional Foods, 2015, 14(15): 747-757.
[3] 宛曉春. 茶葉生物化學[M]. 3版. 北京: 中國農業出版社, 2003.Wan X C. Tea biochemistry [M]. 3rd ed. Beijing: China Agriculture Press, 2003
[4] 吳華玲, 何玉媚, 李家賢, 等. 11個紅紫芽茶樹新品系的芽葉特性和生化成分研究[J]. 植物遺傳資源學報, 2012, 13(1): 42-47.Wu H L, He Y M, Li J X, et al. Shoot traits and biological compositions among eleven new tea germplasms with reddishviolet shoots [J]. Journal of Plant Genetic Resources, 2012, 13(1): 42-47.
[5] 蕭力爭, 胡祥文, 龔志華. 紫芽茶葉紅茶適制性研究[J]. 湖南農業大學學報, 2002, 26(1): 89-193. Xiao L Z, Hu X W, Gong Z H. Research of suitability of purple bud tea black tea [J]. Journal of Hunan Agricultural University, 2002, 26(1): 89-193.
[6] Holton T A, Cornish E C. Genetics and biochemistry of anthocyanin biosynthesis [J]. Plant Cell, 1995, 7(7): 1071-1083.
[7] Araceli C, Madelourdes P H, Maelena P, et al. Chemical studies of anthocyanins: a review [J]. Food Chemistry, 2009, 113(4): 859-871.
[8] Wang Y S, Xu Y J, Gao L P, et al. Functional analysis of flavonoid 3',5'-hydroxylase from tea plant (): critical role in the accumulation of catechins [J]. BMC Plant Biology, 2014, 14(1): 347. doi: 10.1186/s12870-014-0347-7.
[9] 馬春雷, 姚明哲, 王新超, 等. 利用基因芯片篩選茶樹芽葉紫化相關基因[J]. 茶葉科學, 2011, 31(1): 59-65. Ma C L, Yao M Z, Wang X C, et al. Young shoot purple-related gene screening in tea plant () by using cDNA microarray [J]. Journal of Tea Science, 2011, 31(1): 59-65.
[10] 陳林波, 夏麗飛, 孫云南, 等. 特異茶樹品種“紫娟”葉色轉變的基因表達差異分析[J]. 茶葉科學, 2012, 32(1): 59-65.Chen L B, Xia L F, Sun Y N, et al. Analysis of differential gene expression on specific tea cultivar ‘Zijuan’ for leaf color changing [J]. Journal of Tea Science, 2012, 32(1): 59-65.
[11] 周瓊瓊, 孫威江. 茶樹芽葉紫化的生理生化分析及其關鍵酶基因的表達[J]. 生物技術通報, 2015, 31(1): 86-91. Zhou Q Q, Sun W J. Physiological and biochemical analysis of young shoot purple-related and gene expression of key enzymes in tea plant () [J].Biotechnology Bulletin, 2015, 31(1): 86-91.
[12] 劉飛, 郭美麗. 花色苷生物代謝途徑中相關酶的研究進展[J]. 藥學服務與研究, 2011, 11(1): 34-38. Liu F, Guo M L. Advances in research on enzymes related to the biometabolism pathway of anthocyanins [J]. Pharmaceutical Care Research, 2011, 11(1): 34-38.
[13] 周天山, 王新超, 余有本, 等. 紫芽茶樹類黃酮生物合成關鍵酶基因表達與總兒茶素、花青素含量相關性分析[J].作物學報, 2016, 42(4): 525-531.Zhou T S, Wang X C, Yu Y B, et al. Correlation analysis between total catechins (or anthocyanins) and expression levels of genes involved in flavonoids biosynthesis in tea plant with purple leaf [J]. Acta Agronomica Sinica, 2016, 42(4): 525-531.
[14] Wei K, Wang L, Zhang Y, et al. A coupled role forandin anthocyanin hyperaccumulation in purple tea [J]. The Plant Journal, 2019, 97(5): 825-840.
[15] 金琦芳, 孫威江, 陳志丹. 光照對紫色芽葉茶花青素合成的調控機理[J]. 生物技術通報, 2015, 31(6): 20-27. Jin Q F, Sun W J, Chen Z D. Regulation mechanism of anthocyanin synthesis in purple shoots of tea by lighting [J]. Biotechnology Bulletin, 2015, 31(6): 20-27
[16] 李智. 不同環境因子調控茶樹紫色芽葉形成的分子機制研究[D]. 泰安: 山東農業大學, 2014. Li Z. Molecular mechanisms of different environmental factors regulating the formation of purple buds and leaves in tea plants [D]. Tai'an: Shandong Agricultural University, 2014.
[17] 吳華玲, 喬小燕, 李家賢, 等. “紅紫芽”茶樹新品系的生物學特性研究[J]. 熱帶作物學報, 2011, 32(6): 1009-1015. Wu H L, Qiao X Y, Li J X, et al. Biological characters of new tea germplasms with reddishviolet shoots [J].Chinese Journal of Tropical Crops, 2011, 32(6): 1009-1015.
[18] Lv H P, Dai W D, Tan J F, et al. Identification of the anthocyanins from the purple leaf coloured tea cultivar Zijuan (var.) and characterization of their antioxidant activities [J]. Journal of Functional Foods, 2015, 17: 449-458.
[19] 李智, 王日為, 張麗霞, 等. 茶樹紫色芽葉花青苷組分分析及結構推測[J]. 茶葉科學, 2014, 34(3): 279-287. Li Z, Wang R W, Zhang L X, et al. Analysis and structural identification of anthocyanin components in purple buds and leaves of tea plant [J]. Journal of Tea Science, 2014, 34(3): 279-287.
[20] 蕭力爭, 蘇曉倩, 李勤, 等. 紫芽品種茶樹芽葉多酚類物質組成特征[J]. 湖南農業大學學報(自然科學版), 2008, 34(1): 77-79. Xiao L Z, Su X Q, Li Q, et al. The composition and characteristics of tea polyphenols in purple tea varieties [J]. Journal of Hunan University of Science & Technology (Natural Science Edition), 2008, 34(1): 77-79
[21] 王秋霜, 凌彩金, 劉淑媚, 等. 花青素分離純化及其組分鑒定研究進展[J]. 食品工業科技, 2013, 34(3): 358-364. Wang Q S, Ling C J, Liu S M, et al. Research progress in separation purification and component identification of anthocyanins [J]. Science and Technology of Food Industry, 2013, 34(3): 358-364.
[22] 王秋霜, 凌彩金, 劉淑媚, 等. 紅紫芽茶葉花青素提取分離及pH穩定性初探[J]. 中國農學通報, 2014, 30(9): 291-296. Wang Q S, Ling C J, Liu S M, et al. Anthocyanins in red and purple tea extraction & separation and pH stability exploration [J]. Chinese Agricultural Science Bulletin, 2014, 30(9): 291-296.
[23] 王燕, 楊曉萍, 陳波偉, 等. 紫娟茶花青素的研究進展[J]. 食品安全質量檢測學報, 2017, 8(11): 173-178. Wang Y, Yang X P, Chen B W, et al. Research progress of anthocyanins from Zijuan tea [J]. Journal of Food Safety & Quality, 2017, 8(11): 173-178.
[24] 李璐, 倪婷婷, 關文玉, 等. 基于響應面法提取“紫娟”茶花青素最佳工藝的優化研究[J]. 西南農業學報, 2014, 27(4): 1704-1709.Li L, Ni T T, Guan W Y, et al. Study on process of anthocyanins extraction from ‘Zijuan’ tea by response surface methodology [J]. Southwest China Journal of Agricultural Sciences, 2014, 27(4): 1704-1709.
[25] 費旭元, 林智, 梁名志, 等. 響應面法優化“紫娟”茶中花青素提取工藝的研究[J]. 茶葉科學, 2012, 32(3): 197-202. Fei X Y, Lin Z, Liang M Z, et al. Study on process of anthocyanins extraction from ‘Zijuan’ tea by response surface analysis [J]. Journal of Tea Science, 2012, 32(3): 197-202.
[26] 田野, 殷中瓊, 唐茜. 紫嫣茶中花青素水提工藝及其提取物抗癌活性[J]. 安徽農業大學學報, 2019, 46(1): 7-13. Tian Y, Yin Z Q, Tang Q. Water extraction process of anthocyanins from “Ziyan” tea and the antitumor activity of its extracts [J]. Journal of Anhui Agricultural University, 2019, 46(1): 7-13.
[27] Solecka D, Kacperska A. Phenylpropanoid deficiency affects the course of plant acclimation to cold [J]. Physiologia Plantarum, 2003, 119(2): 253-262.
[28] 黃意歡. 茶學實驗技術[M]. 北京: 中國農業出版社, 1997.Huang Y H. Technology of tea science [M]. Beijing: China Agriculture Press, 1997.
[29] Ogata J, Itoh Y, Ishida M, et al. Cloning and heterologous expression of cDNAs encoding flavonoid glucosyltransferases from[J]. Plant Biotechnology, 2004, 21(5): 367-375.
Study on the Correlation between the Activities of Key Enzymes Involving in Anthocyanin Synthesis and the Contents of Important Polyphenols in Purple Tea
CAO Bingbing1,2, WANG Qiushuang1*, QIN Dandan1, FU Donghe2, FANG Kaixing1, JIANG Xiaohui1, LI Hongjian1, WANG Qing1, PAN Chendong1, LI Bo1, WU Hualing1*
1. Tea Research Institute, Guangdong Academy of Agricultural Sciences, Guangdong Key Laboratory of Tea Plant Resources Innovation & Utilization Resources Innovation and Utilization, Guangzhou 510640, China; 2. Hunan Agricultural University, Changsha 410128, China
In this study, four purple tea cultivars (strains) namely Hongye 1, Hongye 2, Danfei from Guangdong and Zijuan from Yunnan were used as the testing materials. Yinghong 9 with green buds was used as the control. The activity changing patterns of the key enzymes involved in anthocyanin synthesis were studied by the enzyme activities analysis, which revealed the relationship between the enzyme activities and biochemical components in tea. The results show that the activity of flavonoid-3--glycosyltransferase (UFGT), a key enzyme involved in anthocyanin synthesis, was positively correlated with the total amount of tea polyphenols and the anthocyanin contents in different samples in the same season. However, the activities of phenylalanine ammonia lyase (PAL), chalcone synthase (CHS), flavonoid-3-hydroxylase (F3H), dihydroflavonol-4-reductase (DFR), flavonol synthase (FLS), anthocyanin synthase (ANS) and anthocyanin reductase (ANR) were not significantly correlated with the anthocyanin contents. There was a significant and positive correlation between catechin (C) content and PAL enzyme activity in spring. Epicatechin gallate (ECG) content and DFR enzyme activity showed the same result. In addition, there was no significant correlation between the activities of CHS, F3H, ANS and ANR enzymes and polyphenols contents in different cultivars (strains) in the same season.
purple tea, anthocyanin, enzyme, polyphenols
S571.1
A
1000-369X(2020)06-724-15
2020-03-03
2020-04-07
廣東省重點領域研發計劃(2020B020220004)、國家現代農業產業技術體系建設專項(CARS-19)、國家自然科學基金(31600550)、科技創新戰略專項資金(201619TD、R2016YJ-YB3002、R2017PY-QY009、R2018QD-100)
曹冰冰,女,碩士,主要從事茶樹育種研究,bbc@163.com。*通信作者:wqsh1113@163.com;wuhualing@163.com