HPLC測定維藥玫瑰花瓣中金絲桃苷 異槲皮苷和槲皮苷的含量△

吳光翠，閆順華，嚴麗

新疆維吾爾自治區藥品檢驗研究院，新疆 烏魯木齊 830054

玫瑰花瓣系維吾爾醫習用藥材，為薔薇科植物突厥薔薇RosedamasceneMill.或玫瑰R.rugusaThunb.的干燥花瓣[1-3]，為春、夏季初花期采收，陰干，除去花托、花萼、枯朽花瓣等雜質。玫瑰花含有多種生物活性成分，具有理氣解郁、鎮靜安神、活血散瘀等功效[4-6]。傳統中醫使用玫瑰花蕾，但維吾爾醫則用盛開的花瓣。維吾爾民族藥理論闡述玫瑰花為性平，主治膽液質性疾病，如干熱性肝炎、神經衰弱、頭暈腦脹、心悸失眠、心肌炎、結核引起的消耗性疾病、大便不通等，或黏液質性疾病，如胃納不佳、消化不良，及各種風濕疼痛、面色蒼自等[7-9]，因玫瑰花具有較高的藥用價值，在維吾爾醫學中具有悠久的藥用歷史，收載于《新疆維吾爾自治區維吾爾藥材標準》2010年版(第一冊)[7]中，玫瑰花瓣檢測項只有性狀、檢查(雜質)，標準較簡單。本研究以金絲桃苷、異槲皮苷和槲皮苷3個主要黃酮類成分作為指標成分，建立用高效液相色譜法(HPLC)測定上述3個成分含量的方法，為玫瑰花質量標準的建立提供參考。

1 材料

1.1 藥材

10批不同產地玫瑰花瓣樣品，經新疆維吾爾自治區食品藥品檢驗所蘇來曼·哈力克主任藥師鑒定均為薔薇科植物突厥薔薇R.damasceneMill.或玫瑰R.rugusaThunb.的干燥花瓣，樣品編號、批號和產地見表1。

表1 玫瑰花瓣樣品來源

1.2 藥品與試劑

對照品金絲桃苷(批號：111521-201204，純度：93.9%)、槲皮苷(批號：111538-200301，純度：94.5%)均購自中國食品藥品檢定研究院，供含量測定用；對照品異槲皮苷(批號：MUST-14070211，純度：95.2%)購自成都曼思特生物科技有限公司；甲醇為色譜純(Fisher公司)，水為自制超純水，其他試劑均為分析純。

1.3 儀器

LC-20AT型高效液相色譜儀、Lab solution色譜工作站(日本Shimadzu公司)；1260型高效液相色譜儀(美國Agilent Technologies公司)；XS205 DU型電子天平(瑞士Mettle Toledo公司)；UPT-Ⅱ-20L型超純水機(成都優普超純水科技有限公司)。

2 方法與結果

2.1 色譜條件與系統適用性試驗

AgilentEclipse TC-C18色譜柱(250 mm×4.6 mm，5 μm)和Agilent SB-C18色譜柱(150 mm×4.6 mm，5μm)。以乙腈-0.2%磷酸水溶液(15∶85)為流動相，流速1.0 mL·min-1，檢測波長360 nm，柱溫35 ℃，進樣量10 μL。理論板數按槲皮苷計算，不低于4000，分離度均大于1.5。分別取混合對照品溶液和供試品溶液進樣，色譜圖見圖1。色譜圖顯示樣品中各目標峰能夠較好的分離。

注：A.對照品；B.樣品(9號)；1.金絲桃苷；2.異槲皮苷；3.槲皮苷。圖1 混合對照品和樣品(9號)HPLC色譜圖

2.2 溶液的配制

2.2.1對照品溶液配制 取金絲桃苷、異槲皮苷及槲皮苷對照品適量，精密稱定，置于棕色量瓶中，加甲醇制成含金絲桃苷40 μg·mL-1、異槲皮苷80 μg·mL-1及槲皮苷80 μg·mL-1的混合對照品溶液，即得。

2.2.2供試品溶液配制 精密稱取玫瑰花瓣藥材粉末(過三號篩)0.5 g，至25 mL棕色量瓶中，加入甲醇適量，超聲處理30 min，放至室溫，加甲醇至刻度，搖勻，0.45 μm微孔濾膜濾過，即得。

2.3 線性關系考察

精密稱取金絲桃苷對照品13.5 mg、異槲皮苷對照品14.5 mg及槲皮苷對照品10.9 mg，分別置50 mL量瓶中，用甲醇溶解并定容至刻度，搖勻，即得金絲桃苷253.5 μg·mL-1、異槲皮苷290.0 μg·mL-1、槲皮苷218.0 μg·mL-1的儲備液。

分別精密量取儲備液金絲桃苷6.0 mL、異槲皮苷15.0 mL及槲皮苷20.0 mL，分別置50 mL量瓶中，加甲醇至刻度，搖勻，即得金絲桃苷30.4 μg·mL-1、異槲皮苷87.0 μg·mL-1、槲皮苷87.2 μg·mL-1的中間液。

分別精密吸取金絲桃苷、異槲皮苷和槲皮苷對照品的儲備液2、6、10、14、18、22、26 μL，分別置于10 mL量瓶中，用甲醇定容至刻度。

分別精密吸取上述3種溶液各10 μL注入液相色譜儀，以對照品質量濃度(C)為橫坐標(X)，峰面積(A)為縱坐標(Y)進行線性回歸，繪制標準曲線，求得各組分回歸方程及相關系數(r)。以信噪比(S/N)為3和10時的濃度為檢出下限(LOD)和定量下限(LOQ)，見表2。結果顯示3個成分均有良好的線性關系。

表2 線性關系考察

2.4 精密度試驗

精密吸取金絲桃苷、異槲皮苷及槲皮苷對照品的混合溶液(其中金絲桃苷30.42 μg·mL-1，異槲皮苷87.0 μg·mL-1，槲皮苷87.2 μg·mL-1)，按照2.1項下色譜條件重復進樣6次，每次10L，記錄金絲桃苷、異槲皮苷和槲皮苷的峰面積值，測得金絲桃苷、異槲皮苷、槲皮苷峰面積的RSD分別為0.16%、0.14%、0.14%，顯示精密度良好。

2.5 穩定性試驗

取同一供試品(9號)溶液，室溫下放置，按照2.1項下色譜條件每隔4 h進樣10L，連續進樣6次，記錄金絲桃苷、異槲皮苷及槲皮苷的峰面積值，測得金絲桃苷、異槲皮苷、槲皮苷峰面積RSD分別為0.55%、0.47%和0.56%。結果表明，供試品溶液在室溫下24 h內穩定。

2.6 重復性試驗

取同一樣品(9號)約0.5 g，按2.2.2項下方法分別制備供試品溶液6份，按照2.1項下色譜條件進行測定，結果金絲桃苷平均質量分數為0.20%，RSD為1.4%，異槲皮苷平均質量分數為0.56%，RSD為1.3%，槲皮苷平均質量分數為0.70%，RSD為1.0%，黃酮類總平均質量分數為1.45%，RSD為1.0%，測定結果表明重復性良好。

2.7 回收率試驗

精密稱取已知含量的供試品約0.25 g(9號，金絲桃苷質量分數為0.20%，異槲皮苷質量分數為0.56%，槲皮苷質量分數為0.70%，合并計算3個化合物質量分數為1.45%)，共取9份，置于9個25 mL棕色量瓶中，分別加入80%、100%、120%混合對照品的甲醇溶液(金絲桃苷96.34 μg·mL-1；異槲皮苷276.0 μg·mL-1；槲皮苷328.32 μg·mL-1)，再加入甲醇適量，超聲處理30 min，放置室溫，加甲醇至刻度，搖勻，0.45 μm微孔濾膜濾過，即得[10-12]。按照2.1項下色譜條件測定，計算回收率，結果金絲桃苷平均回收率109.4%(n=9)，RSD為3.8%，異槲皮苷平均回收率為101.2%(n=9)，RSD為2.9%，槲皮苷平均回收率為105.7%(n=9)，RSD為3.2%，加樣回收率符合要求。

2.8 樣品測定

分別精密稱取10批不同產地玫瑰花瓣粉末各0.5 g，按2.2.2項下方法分別制備供試品溶液，按照2.1項下色譜條件進行測定，記錄HPLC圖譜，外標法計算含量，計算時代入水分百分含量，結果見表3。

表3 樣品測定結果 %

3 討論

3.1 測定波長的選擇

經二極管陣列檢測器在線檢測，金絲桃苷在206、256、355、486 nm波長處有最大吸收，異槲皮苷在206、256、354、657 nm波長處均有最大吸收，槲皮苷在205、256、349、487 nm波長處均有最大吸收，考慮到能在同一波長下同時測定金絲桃苷、異槲皮苷和槲皮苷3個黃酮類化合物的含量，簡化含量測定操作過程，故選擇360 nm作為檢測波長。

3.2 供試品溶液制備方法的確定

分別對提取溶劑、提取時間進行了考察，以選出最優的供試品溶液制備方法。

取樣品(9號)粉末0.5 g，精密稱定，置于25 mL棕色量瓶，共4份，分別加入甲醇、80%甲醇水溶液、50%甲醇水溶液及80%乙醇水溶液，分別超聲處理30 min，放至室溫，加溶劑至刻度，搖勻，0.45 μm微孔濾膜濾過，依法測定金絲桃苷、異槲皮苷和槲皮苷3個黃酮類成分的總含量。測定結果中甲醇提取液的含量最高，為1.45%，故選用甲醇為提取溶劑。另取樣品(9號)粉末0.5g，精密稱定，置于25 mL棕色量瓶，共4份，加入甲醇適量，分別超聲處理10、20、30、40 min，放至室溫，加甲醇至刻度，搖勻，0.45 μm 微孔濾膜濾過，依法測定。測定結果超聲處理20、30 min，黃酮類組分含量基本穩定，且30 min略高，故超聲處理時間定為30 min。

3.3 含量測定結果

測定結果表明，金絲桃苷、異槲皮苷和槲皮苷3個黃酮類成分總質量分數為1.38%～1.94%，平均值為1.66%。10批樣品中產地為和田地區的有6批，其總質量分數在1.45%～1.94%，稍高于其他地區；同時10批樣品中，金絲桃苷的含量明顯小于異槲皮苷和槲皮苷的含量，而異槲皮苷和槲皮苷的含量相當。

本研究建立的HPLC測定玫瑰花瓣中3個黃酮類成分，方法簡單易行、重復性好，可為玫瑰花瓣藥材的質量控制提供參考[13-15]。