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兔干眼細(xì)胞模型的建立與生物學(xué)特征評(píng)價(jià)

2021-02-01 09:01:06朱夢(mèng)晨楊婷婷
國(guó)際眼科雜志 2021年2期
關(guān)鍵詞:檢測(cè)模型

李 玲,朱夢(mèng)晨,李 點(diǎn),楊婷婷,邱 婷,王 健

0引言

隨著現(xiàn)代生活計(jì)算機(jī)、手機(jī)的普及,外界環(huán)境風(fēng)沙、煙塵的侵襲,隱形眼鏡和冷暖空調(diào)的廣泛使用,干眼的發(fā)病率呈逐年升高趨勢(shì)[1-2]。因此,對(duì)干眼發(fā)病機(jī)制與藥物防治的研究具有重要的現(xiàn)實(shí)意義。基于淚腺細(xì)胞原代培養(yǎng)構(gòu)建穩(wěn)定的干眼細(xì)胞模型成為本課題組研究的首要工作,然而,干眼細(xì)胞模型雖有報(bào)道,但不盡詳細(xì),模型的穩(wěn)定性也有待考究,不利于以原代淚腺細(xì)胞為工具的相關(guān)的基礎(chǔ)和臨床研究。因此,本研究使用原代培養(yǎng)兔淚腺上皮細(xì)胞,采用脂多糖(LPS)和腫瘤壞死因子-α(TNF-α)干預(yù)的方式構(gòu)建干眼細(xì)胞模型,并通過免疫熒光、流式和ELISA方法,對(duì)原代細(xì)胞進(jìn)行活性和純度檢測(cè),并對(duì)比兩種建模方式的差異,為進(jìn)一步篩選干眼防治藥物和評(píng)價(jià)藥效學(xué)奠定基礎(chǔ)。

1材料和方法

1.1材料新西蘭白兔,雄性,12只,90日齡,1~1.2kg,普通級(jí),由湖南中醫(yī)藥大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心提供(SPF級(jí))。湖南許可證號(hào):SCXK(湘)2013-0004。飼養(yǎng)溫度20~25℃,濕度50%~70%。所有動(dòng)物實(shí)驗(yàn)操作均經(jīng)過湖南中醫(yī)藥大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理委員會(huì)審議并通過。流式細(xì)胞儀(美國(guó)Beckman,coulter-cytexpert),細(xì)胞培養(yǎng)箱(美國(guó)Thermo,3111),臺(tái)式高速冷凍離心機(jī)(美國(guó)Thermo),ELX800-酶標(biāo)儀(美國(guó)Bio-tek,ELX800),微量移液器(德國(guó)Eppendorf);FBS、DMEM/F12的培養(yǎng)液購自美國(guó)Gibco,Ⅱ型膠原酶(V900892)、LPS(Sigma,L2880),TNF-α因子(美國(guó)Immunochemistry,6519),Pan-cytoeratin抗體(bs-1712R)、FITC-羊抗兔IgG(bs-0370R)、Annexin V-FITC細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒(BA00101)、CCK-8細(xì)胞增殖-毒性檢測(cè)試劑盒(Biosharp,BS350A)。

1.2方法

1.2.1完全培養(yǎng)液的配置取10mL FBS、40mL DMEM/F12基礎(chǔ)培養(yǎng)基混合,配成含20%FBS的DMEM/F12完全培養(yǎng)液。Ⅱ型膠原酶:0.01gⅡ型膠原酶粉溶于基礎(chǔ)培養(yǎng)基中定容至5mL,配制成2g/L應(yīng)用液。

1.2.2淚腺上皮細(xì)胞的原代培養(yǎng)[3-4]隨機(jī)選取1只雄兔,選用20%烏拉坦1.5g/mL耳緣靜脈注射,在超凈工作臺(tái)上常規(guī)無菌操作,用眼科剪取出淚腺組織。置于培養(yǎng)皿中用含雙抗的PBS清洗兩遍,換成DMEM/F12基礎(chǔ)培養(yǎng)基,剝離小血管及纖維結(jié)締組織,并剪碎淚腺小組織塊,整個(gè)過程在冰上操作。轉(zhuǎn)移至15mL BD管中,1500r/min,離心5min去上清,加入5mLⅡ型膠原酶,置于搖床80r/min消化20~30min后加入完全培養(yǎng)液終止消化。1500r/min離心5min,棄部分上清,加入5mL 0.25%胰蛋白酶后于培養(yǎng)箱消化5min。終止消化后進(jìn)行吹打并吸走絮片狀組織塊,經(jīng)200目篩網(wǎng)過濾,1500r/min,離心5min去上清。加入含20% FBS的DMEM/F12完全培養(yǎng)基,制備細(xì)胞懸液。細(xì)胞按(4~6)×104cells/mL的密度接種于培養(yǎng)瓶,常規(guī)培養(yǎng),12h后換液,以去除沒有貼壁的細(xì)胞及碎片。此后每12h換液一次。

1.2.3免疫熒光法檢測(cè)Pan-cytoeratin蛋白取第二代細(xì)胞,接種于預(yù)置在12孔板的爬片上,當(dāng)細(xì)胞基本融合,及時(shí)取出作4%多聚甲醛固定30min。冷0.01mol/L PBS洗5min×3次,5%BSA封閉30min后,每孔加入一抗兔源Pan-cytoeratin(1∶200)50μL,4℃孵育過夜。PBS洗爬片5min×3次,吸水紙吸干多余液體后加入FITC標(biāo)記抗兔IgG(1∶200),室溫避光孵育1h,棄液,PBS洗5min×5次。細(xì)胞骨架羅丹明(1∶100)染色,避光孵育20min,棄液,PBS洗5min×5次。滴加DAPI(1∶200)避光孵育5min,棄液,PBS洗5min×8次。防熒光淬滅劑封片。檢測(cè)淚腺上皮細(xì)胞特異性蛋白Pan-cytoeratin表達(dá)情況。

1.2.4干眼細(xì)胞模型[5]根據(jù)LPS和TNF-α的IC50值,結(jié)合預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果,分別選取LPS(10μg/mL)和TNF-α(2.5ng/mL)作為干預(yù)淚腺細(xì)胞的施加因素,干預(yù)12h后,處理細(xì)胞,收集樣本,對(duì)相關(guān)炎性因子的細(xì)胞損傷關(guān)鍵元件進(jìn)行檢測(cè),擬構(gòu)建淚腺細(xì)胞的炎癥微環(huán)境,模擬干眼的生物學(xué)特征,同步設(shè)空白對(duì)照組。

1.2.4.1藥物IC50的測(cè)定淚腺細(xì)胞接種于96孔板(6000cells/well)。分別用不同濃度(0、5、10、20、40μg/mL)的LPS和TNF-α(0、2.5、5、10、20ng/mL)孵育12h。根據(jù)試劑盒說明書,使用CCK-8測(cè)定細(xì)胞毒性。在450nm處測(cè)量光密度(OD)。根據(jù)光密度(OD)計(jì)算細(xì)胞抑制率IR(%)=(對(duì)照-干預(yù))/(對(duì)照-空白)×100%,以及IC50。選取半數(shù)IC50值作為干預(yù)濃度。

1.2.4.2流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)各組細(xì)胞的凋亡情況淚腺原代細(xì)胞接種于6孔板(10000cells/well)中,采用上述細(xì)胞模型建立的不同干預(yù)方式處理12h后,收集各組細(xì)胞,按照Annexin V-FITC/PI試劑盒說明書,使用流式細(xì)胞儀檢測(cè)各組細(xì)胞凋亡率。

圖1 兔淚腺上皮原代細(xì)胞提取與培養(yǎng) A:兔淚腺取材;B:兔淚腺上皮原代細(xì)胞鏡下觀察(×40);C:兔淚腺上皮原代細(xì)胞鏡下觀察(×100)。

圖2 兔淚腺上皮原代細(xì)胞標(biāo)志蛋白Pan-cytoeratin的表達(dá)(×200) A:合成B+C+D;B:FITC標(biāo)記Pan-cytoeratin蛋白;C:DAPI標(biāo)記細(xì)胞核;D:羅丹明標(biāo)記細(xì)胞骨架。

圖3 LPS和TNF-α干預(yù)兔淚腺原代上皮細(xì)胞12h的IC50 A:LPS的IC50;B:TNF-α的IC50。

1.2.4.3 ELISA檢測(cè)各組細(xì)胞上清液中相關(guān)炎性因子的含量淚腺原代細(xì)胞接種于6孔板(8000cells/well)中,采用上述細(xì)胞模型建立的不同處理方法,收集各組細(xì)胞上清液,按照ELISA試劑盒說明書,測(cè)定白細(xì)胞介素1β(IL-1β)和白細(xì)胞介素6(IL-6)的含量。

2結(jié)果

2.1兔淚腺上皮原代細(xì)胞培養(yǎng)情況原代培養(yǎng)12h后細(xì)胞基本貼壁,48h可見細(xì)胞形態(tài)舒展,呈長(zhǎng)三角形。待細(xì)胞增殖至覆蓋培養(yǎng)瓶70%~80%時(shí)進(jìn)行胰蛋白酶消化傳代。用CCK-8法檢測(cè)細(xì)胞活性,達(dá)92%以上,見圖1。

2.2免疫熒光法檢測(cè)兔淚腺上皮原代細(xì)胞標(biāo)志蛋白Pan-cytoeratin的表達(dá)免疫熒光結(jié)果顯示:兔淚腺上皮原代細(xì)胞標(biāo)志角化蛋白(Pan-cytoeratin)主要表達(dá)在細(xì)胞質(zhì),且陽性率>90%,符合實(shí)驗(yàn)要求,見圖2。

2.3 LPS和TNF-α的IC50結(jié)果CCK-8結(jié)果顯示:LPS和TNF-α干預(yù)兔淚腺上皮細(xì)胞12h的IC50分別為20μg/mL、4.996ng/mL,擬后續(xù)兩種方法制備兔干眼細(xì)胞模型時(shí),選擇LPS的0.5倍,即10μg/mL和TNF-α的0.5倍IC50,即2.5ng/mL進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn),見表1,圖3。

表1 不同濃度LPS和TNF-α干預(yù)兔淚腺原代上皮細(xì)胞的抑制率

2.4流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)各組細(xì)胞的凋亡情況流式細(xì)胞術(shù)結(jié)果顯示:三組細(xì)胞凋亡率比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=225.30,P<0.01)。LPS(10μg/mL)和TNF-α(2.5ng/mL)組細(xì)胞凋亡率明顯高于空白對(duì)照組,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=12.34,P<0.01;t=16.53,P<0.01)。兩種造模干預(yù)組組間比較,TNF-α組細(xì)胞凋亡率高于LPS組,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=4.18,P<0.01),提示TNF-α模擬干眼的炎癥反應(yīng)效果優(yōu)于LPS,見表2,圖4。

圖4 兩種干預(yù)方式細(xì)胞凋亡情況的比較 A:空白對(duì)照組;B:LPS組;C:TNF-α組;D:各組凋亡率比較。b P<0.01 vs空白對(duì)照組;d P<0.01 vs LPS組。

表2 各組細(xì)胞凋亡率和細(xì)胞上清液中IL-1β、IL-6的含量比較

2.5 ELISA檢測(cè)各組細(xì)胞上清液中炎性因子的含量ELISA結(jié)果顯示:三組細(xì)胞上清液中IL-1β和IL-6的含量比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.01)。LPS(10μg/mL)和TNF-α組(2.5ng/mL)細(xì)胞上清液中IL-1β和IL-6的含量均明顯高于空白對(duì)照組,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。兩種造模干預(yù)組組間比較,TNF-α組IL-1β和IL-6的含量明顯高于LPS組,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),提示TNF-α模擬干眼的炎癥反應(yīng)效果優(yōu)于LPS,見表2。

3討論

干眼是眼表的一種多因子疾病,特征是淚膜穩(wěn)態(tài)的喪失并伴有眼表癥狀,其病因包括淚膜不穩(wěn)定、淚液高滲性、眼表炎癥與損傷和神經(jīng)感覺異常,其中淚腺上皮炎癥浸潤(rùn)和病變是干眼的重要病理生理過程[6-7]。近幾年有研究發(fā)現(xiàn),眼表的慢性炎癥是干眼重要的病理機(jī)制[8]。人體內(nèi)的炎癥因子如TNF-α具有免疫調(diào)節(jié)、參加炎癥反應(yīng)的功能,生理狀態(tài)下炎癥因子表達(dá)較低[9],當(dāng)分泌量加大時(shí),能夠激活單核細(xì)胞和中性粒細(xì)胞,促進(jìn)白細(xì)胞聚集,誘發(fā)機(jī)體產(chǎn)生一系列炎癥反應(yīng)[10]。炎癥在延續(xù)和維持干眼中起著關(guān)鍵作用[11]。因此,通過離體兔淚腺并分離淚腺上皮細(xì)胞作為研究干眼的對(duì)象,有助于在體外模擬干眼。

本研究中兔淚腺上皮細(xì)胞的體外基礎(chǔ)培養(yǎng)基為DMEM/F12,含有更為豐富的營(yíng)養(yǎng)成分和多種微量元素,并加以15%~20%的FBS,能盡可能模擬體內(nèi)機(jī)體環(huán)境,有利于細(xì)胞的生長(zhǎng)和代謝。本研究對(duì)獲取的兔淚腺上皮細(xì)胞進(jìn)行活性和純度檢測(cè)結(jié)果顯示:兔淚腺上皮原代細(xì)胞標(biāo)志角化蛋白(Pan-cytoeratin)主要表達(dá)在細(xì)胞質(zhì),且陽性率>90%,符合實(shí)驗(yàn)要求。

目前研究表明,干眼發(fā)生的主要機(jī)制為炎癥反應(yīng)、細(xì)胞凋亡等,眾多炎癥細(xì)胞因子、促炎因子的交互作用參與了干眼的發(fā)病過程[12-13]。常規(guī)細(xì)胞炎癥模型的干預(yù)方法以LPS刺激為主,LPS是革蘭氏陰性菌細(xì)胞外膜的主要成分,與其受體結(jié)合后啟動(dòng)細(xì)胞內(nèi)信號(hào)傳遞鏈,促使核因子-κB(nuclear factor-kappa B,NF-κB)活化,從而啟動(dòng)炎癥介質(zhì)、黏附分子等轉(zhuǎn)錄,介導(dǎo)炎癥反應(yīng)[14]。而TNF-α是干眼炎癥反應(yīng)中活躍的炎癥因子,通過激活NF-κB通路誘導(dǎo)炎癥介質(zhì)的產(chǎn)生,介導(dǎo)細(xì)胞凋亡。我們前期研究也證實(shí)兔干眼動(dòng)物模型血清和淚腺組織勻漿液中TNF-ɑ表達(dá)與正常組差異最為顯著,而且干眼患者淚液中TNF-α的含量與角膜上皮的損傷程度呈正相關(guān)[15],由此可推測(cè),在一定程度上TNF-α干預(yù)淚腺上皮細(xì)胞更具備干眼模型的特征。因此,本研究采用LPS和TNF-α構(gòu)建干眼模型,并對(duì)兩者構(gòu)建干眼模型的IC50,細(xì)胞凋亡和炎性因子分泌等進(jìn)行檢測(cè)和比較,結(jié)果表明LPS和TNF-α干預(yù)兔淚腺上皮細(xì)胞12h的IC50分別為20μg/mL和4.996ng/mL,兩者的0.5倍IC50,即10μg/mL和2.5ng/mL干預(yù)下細(xì)胞凋亡和炎性因子分泌水平TNF-α高于LPS。由此可見,LPS和TNF-α皆可以構(gòu)建干眼模型,但是在相同IC50的干預(yù)下,TNF-α的造模效果優(yōu)于LPS。

本研究成功建立了一種細(xì)胞純度較高、相對(duì)簡(jiǎn)便、快速,模型穩(wěn)定的兔干眼細(xì)胞模型,為兔淚腺上皮細(xì)胞功能及干眼的基礎(chǔ)研究提供了更穩(wěn)定的體外實(shí)驗(yàn)?zāi)P汀?/p>

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