NaCl處理對(duì)中秋酥脆棗采后裂果的影響

張萍 張方秋 趙秀娟 陽(yáng)桂芳 羅號(hào)

摘 要：多年來(lái)，鮮食棗采后裂果給農(nóng)戶造成巨大的經(jīng)濟(jì)損失，嚴(yán)重影響了農(nóng)戶生產(chǎn)積極性。為探明鮮食棗采后裂果的機(jī)理，尋找出有效防治裂果的方法，以南方鮮食棗中秋酥脆棗為試材，用不同濃度NaCl（0.01%、0.1%、1%）分別于光照、黑暗條件下浸泡10min后再進(jìn)行清水浸泡誘導(dǎo)裂果，研究NaCl對(duì)棗裂果率、果實(shí)硬度、棗果吸水率、棗果相對(duì)電導(dǎo)率及果肉中可溶性蛋白、丙二醛含量的影響。結(jié)果顯示：（1）1%NaCl光照與黑暗處理均能降低棗果裂果指數(shù)，且1%NaCl光照處理能有效降低裂果率。（2）光照處理?xiàng)椆扇苄缘鞍缀烤哂诤诎堤幚恚?%NaCl光照組棗果可溶性蛋白含量為0.0842mg/g。（3）光照處理?xiàng)椆麑?shí)硬度均高于對(duì)照組，1%NaCl光照組棗果為12.01mg/cm3。由此可見(jiàn)，1%NaCl光照浸果處理能增加果實(shí)中可溶性蛋白含量，提高棗果總代謝水平，增強(qiáng)棗果自身抗脅迫能力，從而提高果實(shí)硬度，增加棗果防護(hù)能力。

關(guān)鍵詞：中秋酥脆棗;采后裂果;NaCl處理;影響

中圖分類(lèi)號(hào) S665.1文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼 A文章編號(hào) 1007-7731（2021）02-0046-05

Effects of NaCl Treatment on Postharvest Fruit Cracking of “Zhongqiusucui” Jujube

ZHANG Ping1 et al.

（1 Guangdong Eco-engineering Polytechnic， Guangzhou510520， China）

Abstract： For many years， the post-harvest cracking of fresh jujube has brought huge economic losses to farmers and seriously affected farmers enthusiasm for production. In order to explore the mechanism of fruit cracking in fresh jujube after harvest and find effective methods to prevent fruit cracking ， “zhongqiusucui”jujube were used as materials. They were immersed by different concentrations of NaCl in the light or in darkness to study effects of NaCl on jujube cracking rate、fruit firmness、water absorption、relative conductivity and the content of malondialdehyde and soluble protein in fruit pulp. The result indicated that：（1） 1% NaCl in the light or in darkness can both reduce the indices of crack fruit， and 1% NaCl in the light can effect reduce the jujube fruit cracking.（2）The content of soluble protein in fruit pulp with light treatment were both more than the content of soluble protein in fruit pulp with dark treatment. The content of soluble protein in fruit pulp with 1% NaCl light treatment was 0.0842mg/g.（3） The fruit firmness with light treatment is higher than the fruit firmness with dark treatment， and the fruit firmness with 1% NaCl light treatment is 12.01mg/cm3. The study showed that the treatment with 1% NaCl under light can increase the soluble protein content in fruits and improve the total metabolism of jujube. The anti-stress ability of jujube fruit also was enhanced. Thereby fruit firmness was increased and the protective ability of the jujube fruit was increased.

Key words： “Zhongqiusucui”jujube; Postharvest fruit cracking; Treatment with NaCl; Effect

中秋酥脆棗（Ziziphus jujubevc. Zhongqiusucui）為鼠李科（Rham-naceae）棗屬（Ziziphus）植物，是一個(gè)從“糖棗”芽變品種選育出的品種[1]，營(yíng)養(yǎng)豐富，富含人體所需的多種氨基酸、微量元素及維生素[2]，含糖量高達(dá)29.41%，肉質(zhì)細(xì)膩、酥脆，多汁，風(fēng)味濃甜適口，是湖南省內(nèi)第一個(gè)綜合性狀優(yōu)良的高檔鮮食棗品種，深受農(nóng)戶喜愛(ài)[3]。但鮮食棗含水量極高，呼吸強(qiáng)度大，皮薄肉脆，對(duì)環(huán)境中的CO2反應(yīng)敏感[2]，常溫下極易發(fā)生裂果腐爛，即使低溫貯藏裂果率也極高，嚴(yán)重影響其商品價(jià)值[4]。NaCl作為有關(guān)植物鹽害的脅迫因子，目前的研究主要集中在高濃度對(duì)植物的脅迫作用與植物耐鹽性[5]，也有部分關(guān)于低濃度NaCl對(duì)植物有益的研究。已有研究證明Na+與Cl-是植物生長(zhǎng)所需的[6]，低濃度NaCl能夠提高玉米的光合速率，促進(jìn)玉米生長(zhǎng)[7]，添加低濃度NaCl能夠顯著降低韭菜硝酸鹽的積累[5];適宜濃度的NaCl處理對(duì)果實(shí)硬度有一定影響，能提高果實(shí)品質(zhì)[8]，1000mg/L NaCl和高質(zhì)量濃度營(yíng)養(yǎng)液混合使用能提高果實(shí)可溶性固形物含量[9]。氯化鈣作為采后處理保鮮劑，可以延緩褐化、提高果實(shí)硬度、推遲果實(shí)后熟等[10];0.1mol/L氯化鈉可通過(guò)降低總酚含量以及抑制POD活性來(lái)顯著降低鮮切粉葛的褐變率[11];0.1%的氯化鈉能夠減少鮮切梨片的失重率，抑制其水分散失，對(duì)鮮切蘋(píng)果片具有良好的防褐變效果[12]。

目前科研人員對(duì)鮮棗田間防裂果技術(shù)作了很多研究，但對(duì)鮮食棗采后儲(chǔ)藏過(guò)程的裂果現(xiàn)象鮮有研究。為了探明儲(chǔ)藏期鮮食棗發(fā)生裂果病的機(jī)理，以更好地降低儲(chǔ)藏期鮮食棗的裂果率，筆者借鑒前人的實(shí)驗(yàn)條件，應(yīng)用于中秋酥脆棗的鮮棗采后處理，擬通過(guò)對(duì)中秋酥脆棗鮮棗進(jìn)行不同濃度NaCl處理，檢測(cè)采后果實(shí)的裂果率、裂果指數(shù)、可溶性蛋白、丙二醛、相對(duì)電導(dǎo)率、果實(shí)硬度、吸水率，尋求能有效降低中秋酥脆棗采后裂果病發(fā)生率的最佳方法。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)材料 南方鮮食棗新品種中秋酥脆棗采自湖南省衡陽(yáng)市祁東縣新豐果業(yè)公司紫沖實(shí)驗(yàn)基地，選擇長(zhǎng)勢(shì)良好、無(wú)病蟲(chóng)害的3年生中秋酥脆棗棗樹(shù)，采摘時(shí)挑選大小均勻、無(wú)果皮開(kāi)裂、無(wú)機(jī)械傷、無(wú)病蟲(chóng)害的果實(shí)，置入內(nèi)襯保鮮袋的紙箱中。試驗(yàn)儀器設(shè)備包括硬度計(jì)、紫外可見(jiàn)光分光光度計(jì)、恒溫水浴鍋、高速冷凍離心機(jī)、電導(dǎo)率儀。

1.2 試驗(yàn)方法

1.2.1 樣品制備 分別配制濃度為0.01%、0.1%、1%的3組NaCl水溶液，將棗果完全浸入溶液（水溫20℃），轉(zhuǎn)入不同環(huán)境（光照（1000lx）與黑暗）浸泡10min，撈出并吸干表面溶液，再于室內(nèi)進(jìn)行清水浸泡誘裂實(shí)驗(yàn)。每組處理50個(gè)棗果，清水浸泡10min作為對(duì)照，每組處理3次重復(fù)。

1.2.2 果實(shí)裂果率與裂果指數(shù)測(cè)定 果實(shí)裂果率及裂果指數(shù)通過(guò)公式1、2計(jì)算。依據(jù)棗果裂口及裂口數(shù)劃分為5個(gè)級(jí)別。0級(jí)：果實(shí)無(wú)裂口;1級(jí)：果實(shí)裂口數(shù)為1;2級(jí)：果實(shí)裂口數(shù)為2;3級(jí)：果實(shí)裂口數(shù)為3;4級(jí)：果實(shí)裂口數(shù)為4;5級(jí)：果實(shí)裂口數(shù)≧5。

裂果率（%）= [裂果數(shù)總果數(shù)×100] （1）

裂果指數(shù) = [（裂果數(shù)×該級(jí)別果數(shù)）5×總果數(shù)] （2）

1.2.3 可溶性蛋白含量測(cè)定 參照郗鑫等[13]的方法，采用考馬斯藍(lán)G-250染色法測(cè)定。繪制蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線，得到回歸方程為 [y=0.0758x-0.0757（R2=0.993）]。可溶性蛋白的提取：準(zhǔn)確稱(chēng)取0.5g果實(shí)組織于預(yù)冷的研缽中，加入少許的石英砂和預(yù)冷的0.2mmol/L、pH 7.0磷酸緩沖液2mL研磨成勻漿，補(bǔ)加6mL緩沖液洗凈并全部轉(zhuǎn)移至離心管中，在4℃下5000r/min 離心15min，取上清液為粗酶液。測(cè)定：取粗酶液1mL，加入5mL考馬斯亮藍(lán)（G-250），充分混合。在溫室下放置2min后，于分光光度計(jì)上595nm測(cè)定吸光度，并通過(guò)標(biāo)準(zhǔn)曲線查得蛋白質(zhì)含量。以蒸餾水代替提取液作空白，重復(fù)測(cè)定3次。按公式3進(jìn)行計(jì)算。

蛋白質(zhì)含量（mg/g）=[C×VTVs×WF×1000] （3）

式中：C為查標(biāo)準(zhǔn)曲線值（?g）;VT為提取液總體積（mL）;WF為樣品鮮重（g）;VS為測(cè)定時(shí)加樣量（mL）。

1.2.4 丙二醛（MDA）含量測(cè)定 參照硫代巴比妥酸煮沸法測(cè)定[14]。丙二醛（MDA）的提取：準(zhǔn)確稱(chēng)取1.0g棗果組織于預(yù)冷的研缽中，加入2mL 10%（W/V）三氯乙酸（TCA）和少量石英砂，研磨至勻漿，再用8mL TCA分3次洗滌研缽，將所有勻漿轉(zhuǎn)移至離心管中，在4℃下4000r/min離心10min，取上清液為樣品提取液。測(cè)定：吸取上清液2mL（以2mL蒸餾水作為對(duì)照），加入2mL、0.61%（W/V）的硫代巴比妥酸溶液，混勻，沸水浴15min，迅速冷卻后再離心。取上清液分別測(cè)定其在450、532、600nm處的吸光值，并按公式4計(jì)算出MDA濃度，再進(jìn)一步算出單位鮮組織中MDA含量（?mol/g）。

MDA（[μmol/g]）=[6.45（D532-D600）-0.56D450W] （4）

式中：D450、D532、D600分別代表450、532、600nm波長(zhǎng)下的吸光度值;W為材料鮮重（g）。

1.2.5 電導(dǎo)率測(cè)定 參考趙世杰等[15]的方法測(cè)定。取樣：取3個(gè)果實(shí)，分別用打孔器打取果實(shí)和果肉后，用刀片將果肉和果皮分別切成厚度相同的2mm薄片。從每個(gè)棗果稱(chēng)取質(zhì)量相同的果實(shí)圓片和果皮圓片，再?gòu)拿總€(gè)棗果選取3個(gè)果肉圓片和3個(gè)果皮圓片。將果肉與果皮圓片分別置于小燒杯中，加入20mL去離子水浸泡且震蕩10min，倒掉廢液，再用去離子水沖洗3次，最終用干凈濾紙吸干圓片上的水分。測(cè)定：將果肉與果皮分別放入2個(gè)大試管中，用干凈尼龍網(wǎng)壓住，加入20mL去離子水，浸沒(méi)圓片，在0.05MPa下真空干燥10min，緩慢放入空氣，使圓片下沉。取出大試管，放入搖床震蕩1h，20～25℃常溫下測(cè)定溶液電導(dǎo)率。之后將大試管放在水浴鍋中沸水浴15min，迅速冷卻至20～25℃，測(cè)定沸水浴后的電導(dǎo)率。

1.2.6 果實(shí)硬度和吸水率測(cè)定 參照王靜等的方法[16]。沿棗果赤道部位在對(duì)角線取4個(gè)點(diǎn)，削去棗皮，用直徑為3mm的GY-4型果實(shí)硬度計(jì)的測(cè)頭垂直均勻插入，讀取并記錄數(shù)據(jù)，單位為kg/cm2。

1.3 數(shù)據(jù)處理 采用Microsoft Excel 2007軟件處理數(shù)據(jù)并計(jì)算標(biāo)準(zhǔn)偏差，用SPSS 22.0軟件進(jìn)行方差分析和多重差異顯著性分析，顯著水平為P<0.05。

2 結(jié)果與分析

2.1 NaCl對(duì)采后中秋酥脆棗裂果的影響 由圖1可知，在光照條件下，棗果裂果率及裂果指數(shù)隨著NaCl濃度的增加而降低。其中裂果率及裂果指數(shù)最高的是經(jīng)0.01%NaCl處理的棗果，分別為84.23%、41.33%，與對(duì)照組差異不顯著;裂果率及裂果指數(shù)最低的是經(jīng)1%NaCl處理的棗果，分別為55.03%、15.00%，較對(duì)照組分別下降了26.10%、17.33%，與對(duì)照組差異極顯著。在黑暗條件下，棗果裂果率及裂果指數(shù)也隨著NaCl濃度的增加而降低，所有處理的裂果率均比對(duì)照組高，1%NaCl處理的棗果裂果指數(shù)較對(duì)照組低，較對(duì)照組下降了5.33%，且與對(duì)照組差異極顯著，其他處理裂果指數(shù)均高于對(duì)照組。綜上可知，采后在光照條件下，用1%NaCl預(yù)處理中秋酥脆棗，能夠有效抑制其儲(chǔ)藏期間裂果病的發(fā)生。

2.2 NaCl對(duì)采后中秋酥脆棗可溶性蛋白含量的影響 植物體內(nèi)的可溶性蛋白大部分是參與各種代謝的酶類(lèi)，其含量可以作為植物總代謝水平的一個(gè)重要指標(biāo)。由圖2可知，在光照條件下，隨著NaCl濃度的增加，可溶性蛋白含量先增加后降低。0.01%NaCl處理組可溶性蛋白含量最低，僅為0.0694mg/g，較對(duì)照組下降了0.0154mg/g，且與對(duì)照組差異極顯著;0.1%NaCl、1%NaCl處理組可溶性蛋白含量分別為0.0905、0.0842mg/g，均與對(duì)照組差異不顯著。在黑暗條件下，可溶性蛋白含量隨著NaCl濃度的增加也呈先增加后降低的趨勢(shì)，最低的是經(jīng)0.01%NaCl處理的棗果，為0.0626mg/g，較對(duì)照組降低了0.0002mg/g，且與對(duì)照差異不顯著;最高的是經(jīng)0.1%NaCl處理的棗果，為0.0798mg/g，較對(duì)照組增加了0.0170mg/g，且與對(duì)照差異顯著。

2.3 NaCl對(duì)采后中秋酥脆棗丙二醛含量的影響 丙二醛（MDA）是細(xì)胞膜脂質(zhì)過(guò)氧化產(chǎn)物，常作為膜質(zhì)過(guò)氧化的重要指標(biāo)[2]。由圖3可知，在光照條件下，隨著NaCl濃度的增加，MAD含量呈先增加后減少的趨勢(shì)，經(jīng)0.01%NaCl處理的棗果MAD含量最低，為2.49?mol/g;經(jīng)0.1%NaCl、1%NaCl處理的棗果MAD含量分別為3.29、3.04?mol/g，較對(duì)照分別增加0.27、0.02?mol/g，但所有處理組與對(duì)照組均差異不顯著。在黑暗條件下，MAD含量隨著NaCl濃度增加呈先減少后增加的趨勢(shì)，MAD含量最低的是經(jīng)0.1%NaCl處理的棗果，為2.28?mol/g;最高的是經(jīng)1%NaCl處理的棗果，為2.57?mol/g，較對(duì)照組增加了0.60?mol/g，但所有處理組與對(duì)照組均差異不顯著。

2.4 NaCl對(duì)采后中秋酥脆棗果皮及果肉電導(dǎo)率的影響 電導(dǎo)率是反映鮮棗細(xì)胞膜透性變化的指標(biāo)，細(xì)胞膜透性增大是細(xì)胞衰老的重要特征。細(xì)胞內(nèi)膜結(jié)構(gòu)被破壞，內(nèi)含物滲透率增大，相對(duì)電導(dǎo)率上升[17]。由圖4可知，在光照條件下，隨著NaCl濃度的增加，果皮相對(duì)電導(dǎo)率呈逐漸上升的趨勢(shì)，果皮相對(duì)電導(dǎo)率最高的是經(jīng)1%NaCl處理的棗果，為0.08S/m;其次是經(jīng)0.1%NaCl處理的棗果，為0.78S/m;果皮相對(duì)電導(dǎo)率最低的是經(jīng)0.01%NaCl處理的棗果，為0.77S/m;所有處理組果皮相對(duì)電導(dǎo)率均高于對(duì)照組，且與對(duì)照組均差異極顯著，其中經(jīng)1%NaCl處理的棗果與對(duì)照組差異最顯著，且較對(duì)照組增加0.11S/m。在黑暗條件下，隨著NaCl濃度的增加，果皮相對(duì)電導(dǎo)率也呈逐漸上升的趨勢(shì)，果皮相對(duì)電導(dǎo)率最高的是經(jīng)1%NaCl處理的棗果，為0.78S/m，較對(duì)照組增加了0.01S/m，與對(duì)照組差異顯著;最低的是經(jīng)0.01%NaCl處理的棗果，為0.74S/m，較對(duì)照組減少了0.02S/m，與對(duì)照組差異顯著。

由圖5可知，在光照條件下，果肉相對(duì)電導(dǎo)率隨著NaCl濃度的增大呈先下降后上升的趨勢(shì)，最低的是經(jīng)0.1%NaCl處理的棗果，為0.78S/m，較對(duì)照組增加了0.03S/m;最高的是經(jīng)1%NaCl處理的棗果，為0.81S/m，比對(duì)照組增加了0.06S/m;所有處理的果肉相對(duì)電導(dǎo)率均高于對(duì)照組，且均與對(duì)照組差異極顯著，尤其是經(jīng)1%NaCl處理的棗果。在黑暗條件下，果肉相對(duì)電導(dǎo)率隨著NaCl濃度的增大呈先上升后下降的趨勢(shì)，最低的是經(jīng)0.01%NaCl處理的棗果，為0.80S/m;最高的是經(jīng)0.1%NaCl處理的棗果，為0.86S/m;所有處理組果肉相對(duì)電導(dǎo)率均高于對(duì)照組，且均與對(duì)照組差異極顯著。

2.5 NaCl對(duì)采后中秋酥脆棗果實(shí)硬度及吸水率的影響 由圖6可知，在光照條件下，果實(shí)硬度隨著NaCl濃度的增加呈先減小后增大的趨勢(shì)。當(dāng)NaCl濃度為0.1%時(shí)，果實(shí)硬度最小，為11.45mg/cm3，NaCl濃度為0.01%、1%時(shí)果實(shí)硬度分別為11.75、12.01mg/cm3，所有處理果實(shí)硬度均大于對(duì)照組，且與對(duì)照組差異不顯著。在黑暗條件下，果實(shí)硬度隨著NaCl濃度的增加也呈先減小后增大的趨勢(shì)。當(dāng)NaCl濃度為0.1%時(shí)，果實(shí)硬度最小，為11.81mg/cm3，NaCl濃度為0.01%、1%時(shí)果實(shí)硬度分別為12.51、12.42mg/cm3，所有處理組果實(shí)硬度均小于對(duì)照組，且與對(duì)照組差異不顯著。

如圖7所示，在光照條件下，果實(shí)吸水率隨著NaCl濃度的增加呈先上升后降低的趨勢(shì)。吸水率最大的是0.1%NaCl處理的棗果，為9.03%，較對(duì)照組增大了3.76%，且與對(duì)照組差異極顯著;吸水率最小的是經(jīng)0.01%NaCl處理的棗果，為3.82%，較對(duì)照組減小了1.44%，且與對(duì)照組差異不顯著。在黑暗條件下，吸水率隨著NaCl濃度的增加呈先上升后降低的趨勢(shì)。吸水率最大的是經(jīng)0.1%NaCl處理的棗果，為8.76%;吸水率最小的是經(jīng)1%NaCl處理的棗果，為7.14%;所有處理組吸水率均低于對(duì)照組，且與對(duì)照組差異極顯著。

2.6 相關(guān)性分析 利用 IBM SPSS Statistics 22.0 軟件進(jìn)行雙變量相關(guān)分析，T檢驗(yàn)結(jié)果如表1所示。由表1可知，采后NaCl浸泡處理后的棗果裂果率、裂果指數(shù)、吸水率、丙二醛含量、果皮相對(duì)電導(dǎo)率、果肉相對(duì)電導(dǎo)率、可溶性蛋白含量之間具有相關(guān)性。其中裂果指數(shù)與裂果率Person相關(guān)性系數(shù)為0.91;果肉相對(duì)電導(dǎo)率與吸水率、果皮相對(duì)電導(dǎo)率呈極顯著正相關(guān)，Person相關(guān)性系數(shù)分別為0.55、0.48;果皮相對(duì)電導(dǎo)率與裂果率、裂果指數(shù)呈極顯著負(fù)相關(guān)，Person相關(guān)性系數(shù)分別為-0.55、-0.47;吸水率與丙二醛、可溶性蛋白含量呈極顯著負(fù)相關(guān)，Person相關(guān)性系數(shù)分別為-0.60、-0.58;果實(shí)硬度與其余指標(biāo)均無(wú)顯著相關(guān)性。

3 結(jié)論與討論

試驗(yàn)結(jié)果表明：1%NaCl處理能顯著降低中秋酥脆棗裂果率與裂果指數(shù)，且以光照條件下效果最佳，并且其可溶性蛋白含量高于對(duì)照組，說(shuō)明其代謝總水平高。這可能是由于光照條件刺激棗果代謝，產(chǎn)生預(yù)防性次生代謝物質(zhì)來(lái)調(diào)節(jié)自身生理狀況以適應(yīng)新環(huán)境。此外，該處理的果實(shí)硬度也高于對(duì)照組，說(shuō)明該處理可以提高果實(shí)硬度。

除了受基因的控制，植物對(duì)環(huán)境作出反應(yīng)還受個(gè)體所處的生存環(huán)境和生理狀況的影響[18]。由于碳同化量減少、滲透調(diào)節(jié)能耗和維持生長(zhǎng)能耗增加等原因，多數(shù)植物在鹽脅迫下生長(zhǎng)發(fā)育會(huì)受到顯著抑制[19]，但在遭受鹽脅迫時(shí)，植物通常也會(huì)通過(guò)產(chǎn)生防御性次生代謝物質(zhì)和滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)等來(lái)抵御鹽脅迫引起的氧化脅迫[20，21]。

參考文獻(xiàn)

[1]王森，謝碧霞，鐘秋平，等.棗新品種“中秋酥脆棗”[J].園藝學(xué)報(bào)，2009，4：771.

[2]肖黎斌，韓軍歧，張潤(rùn)光，等.鮮棗采后生理、貯期病害及保鮮技術(shù)研究進(jìn)展[J].陜西農(nóng)業(yè)科學(xué)，2016，62（4）：87-91.

[3]陶愛(ài)群.中秋酥脆棗組培苗生根及移栽技術(shù)研究[J].湖南農(nóng)業(yè)科學(xué)，2015，3：65-67.

[4]沈靜，魏婷，翼曉龍，等.干制方式對(duì)鮮食棗食用及營(yíng)養(yǎng)品質(zhì)的影響[J].食品科學(xué)，2017，7：70-76.

[5]季延海，于平彬，吳震，等.低濃度NaCl對(duì)水培韭菜生長(zhǎng)、產(chǎn)量及品質(zhì)的影響[J].中國(guó)生態(tài)農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào)，2015，5：628-633.

[6]鄒邦基，何雪暉.植物的營(yíng)養(yǎng)[M].北京：農(nóng)業(yè)出版社，1985：264-270.

[7]王寶增，趙可夫.低濃度NaCl對(duì)玉米生長(zhǎng)的效應(yīng)[J].植物生理學(xué)通訊，2006，42（4）：628-632.

[8]周志才，王美蘭，李長(zhǎng)海，等.綠蘆筍自發(fā)氣調(diào)貯藏保鮮袋的設(shè)計(jì)和適宜氣體組成確定[J].食品科學(xué)，2005，26（12）：235-237.

[9]金同銘.CA貯藏對(duì)新鮮石刁柏的影響[J].華北農(nóng)學(xué)報(bào)，1992，7（3）：117-122.

[10]Yongxin Li，Ron B H Wills，John B Golding，et al. Effect of halide salts on development of surface browning on fresh-cut Granny Smith（ Malus domestica? Borkh ） apple slices during storage at low temperature[J].Sci Food Agric，2015，95：945-952.

[11]宋康華，張魯斌，谷會(huì)，等.氯化鈉處理延緩鮮切粉葛褐化機(jī)理研究[J].食品工業(yè)科技，2018，4：285-288.

[12]盧影.鮮切果品保鮮技術(shù)研究[D].廣州：華南理工大學(xué)， 2010.

[13]郗鑫，劉晨筱，陳虹，等.不同棗品種糖和可溶性蛋白質(zhì)含量與裂果相關(guān)性分析[J].山西農(nóng)業(yè)科技，2016，45（3）：2.

[14]李合生.植物生理生化實(shí)驗(yàn)原理和技術(shù)[M].北京：高等教育出版社，2001：164-167.

[15]趙世杰，史國(guó)安，董新純.植物生理學(xué)實(shí)驗(yàn)指導(dǎo)[M].北京：中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)技術(shù)出版社，2002.

[16]王靜，張輝，李學(xué)文，等.貯藏溫度對(duì)貨架期香梨品質(zhì)和生理活性的影響[J].北方園藝，2009（7）：231-235.

[17]潘儼，車(chē)?guó)P斌，張惠玲，等.不同貯藏方式對(duì)新疆梨棗采后生理和貯藏效果的影響[J].新疆農(nóng)業(yè)科學(xué)，2010，47（5）：870-875.

[18]邱收.幾個(gè)萱草屬植物的耐鹽性研究[D].長(zhǎng)沙：湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)，2008.

[19]陳曉亞，湯章城.植物生理與分子生物學(xué)[M].3版.北京：高等教育出版社，2007：533-551.

[20]于磊，劉宗林，徐宗藝，等.NaCl脅迫對(duì)大豆生理特征的影響[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué)，2019，47（24）：41.

[21]Ramakrishna A， Ravishankar GA. Influence of abiotic stress signals on secondary metabolites in plants[J].Plant Signal Behav， 2011，6：1720-1731.

（責(zé)編：徐世紅）