新疆環境保護科學研究院 新疆 烏魯木齊 830011
Cd是對植物危害較大的重金屬元素之一,有關植物受Cd毒害及植物體內緩解Cd毒害的機制已有大量報道[1]。S和Se均為植物體內的必須元素,且對Cd毒性具有一定的抑制作用[2-6]。同時S和Se屬于同一元素周期位的化學元素,化學性質相似,在吸收、轉運和進入生物大分子中的途徑有相同之處,植物中Se和S相互作用表現在植物對Se的吸收、同化及植物的生長發育等各方面。高等植物同化Se6+的途徑與同化的途徑基本相同。
水稻作為亞洲使用最多的糧食作物,其體內重金屬含量以及會對人類造成的損害多見報道。金屬硫蛋白[7](metallothionein,簡稱MT)為一類廣泛地存在于生物界的低分子量、富含半胱氨酸的金屬結合蛋白,尤其對Cd,Zn,Cu,Au,Ag等有較強的親和力。有很多實驗證明MT在提高植物重金屬抗性、解除對Cu,Zn,Pb,Ag,Hg,Cd等重金屬毒性方面具有重要作用,多數MT在C端和N端有兩個富含Cys的結構域,其中的巰基既可以與重金屬螯合形成無毒或低毒的絡合物[8]。
因此本文主要研究在不同S濃度下硒鎘協同作用對水稻生長特性的影響。設計實驗在無添加S條件以及10d后添加S兩種條件下,硒鎘的交互作用對水稻幼苗的影響,以闡明植物體內S對Se與Cd交互作用的影響及初步機理。
1.1 試驗材料 供試植物:淮稻6號,由江蘇農科院提供。植物培養液為霍格蘭溶液。
取籽粒飽滿、均勻的水稻種子,用1.2%NaClO溶液消毒20min,均勻擺在墊有濾紙的培養皿中,加入適量去離子水,放入人工氣候箱中避光發芽5天。選取發芽情況較好,平均長度在5cm左右的水稻芽于三角燒瓶,每個三角燒瓶中放同等根數,加入適量營養液,在人工氣候箱中繼續培養5d,過程中補充消耗的營養液。人工氣候培養箱條件:光照16h,溫度28℃,濕度:75。暗室8h,溫度20℃,濕度70%。
試驗濃度的設定:處理中,配制Se濃度為0,5mg·L-1,Cd濃度為1,10mg·L-1溶液,添加S(以MgSO4形式)分別為0,48mg·L-1。霍格蘭溶液培養為對照,每組處理均設3個重復。
采樣時間:曝毒溶液培養10天后,部分處理加入48mg·L-1S,另一部分無添加S,分別在0,5,10,15,20d取樣測定,每組處理均設3個重復。
1.2 試驗方法
1.2.1 水稻幼苗生物量的測定 取樣后,將根部與莖葉分離,在100℃烘箱中烘干,用電子天平稱量干重,記下數據,并計算出每組處理的平均干重。
1.2.2 水稻幼苗葉綠素含量的測定 稱取0.1g的葉片,置于10ml比色管中,加入10m L丙酮和無水乙醇等量混合成的提取液,加塞置于4℃冰箱中下進行浸提24h后,用分光光度計測定在663nm和645nm處的吸光度,記下數據并計算。
1.2.3 水稻幼苗Cd含量的測定 將樣品的地下部分(根)和地上部分(莖葉)分開,各自保存后烘干,稱重。分別測定地上部分和地下部分的Cd含量。稱取烘干磨碎后的樣品0.01g~0.08g置于消化罐內,加入4mL硝酸和2mL雙氧水,靜置5min,加蓋后消化13min。將消化液置于錐形瓶中趕酸,冷卻后轉移至10ml容量瓶中,加入1%HNO3定容,靜置30min同時做空白試驗。微波消解后用原子吸收光譜法測出地上部分和地下部分的Cd含量。
1.2.4 水稻幼苗金屬硫蛋白(MT)含量的測定 金屬硫蛋白(MT)含量的測定:將曝毒后的水稻從燒杯中取出,用電子天平稱取水稻幼苗鮮樣組織lg,并置于研缽中,加入0.01mol/L,p H8.6的Tris-HCI緩沖液10m L,研磨后于4℃冰箱過夜抽提。抽提液于4℃,1×104r/min離心30min,收集上清。上清于100℃水浴加熱2-3min,再于4℃下,1×104r/min離心20min。收集上清,加入3倍體積-20℃預冷的無水乙醇,-20℃過夜沉淀后,4℃下,1.2×104r/min離心20min。取沉淀加入0.01mol/LTris-HCl緩沖液5mL,溶解數小時后,在4℃下1.5×104r/min離心20min,收集上清即為MT提取液。取提取液1m L用Ag飽和法測定MT含量[9]。
由圖1a可知,在無S,無Se條件下低濃度Cd對水稻幼苗根干重的抑制比高濃度Cd小。在無Se條件下,無論是低濃度Cd還是高濃度Cd,在第10 d加入S之后,水稻幼苗根干重明顯高于無添加S組,且由圖可知,Cd為10 mg/L時,添加S之后,水稻幼苗根干重的數值高于Cd為1mg/L,未添加S時的根干重。且當Cd濃度為1mg/L,添加S之后,在第20d時,水稻幼苗根干重數值高于對照組。由此證明,S的添加對Cd的毒性起到了一定的緩解作用。

圖1 水稻幼苗根干重隨時間的變化(a:無Se;b:Se=5mg/L)
見圖1b,水稻幼苗添加Se之后,在無添加S情況下,Se與低濃度Cd產生一定拮抗作用,與高濃度Cd產生一定的協同作用。在添加S情況下,當Cd濃度為10mg/L時,第20d水稻幼苗根干重數值較其它有Cd脅迫條件下的數值高,說明雖然Se與高濃度Cd具有一定協同作用,但S的添加顯著抑制了二者協同時對水稻的毒害,證明S對兩種元素協同作用的抑制較為顯著。推測有可能是因為,S的添加分別抑制了水稻對Se、Cd的吸收,從而達到抑制作用。
見圖2a,無添加Se時,水稻幼苗莖干重的變化趨勢與根干重變化趨勢較類似,但由于莖干重數值與對照組相比,差別并不顯著所以推測,Cd對根部的毒性大于Cd對莖部的毒性,主要是因為水稻由根部吸收Cd,而向莖部轉移量較少,因此Cd對水稻幼苗莖的毒性低于對根的毒性。


圖2 水稻幼苗莖干重隨時間的變化(a:無Se;b:Se=5mg/L)
見圖2b,在添加Se條件下,Cd為10mg/L,添加S之后,第15d,水稻幼苗莖干重數值高于對照組,因此在一定意義上反映出,S的存在抑制了Se、Cd協同作用對水稻的毒害,甚至S的添加使得水稻長勢良好。
見圖3,4水稻幼苗根、莖長度的變化趨勢與水稻幼苗根、莖干重變化趨勢大體相同,在此不再贅述。

圖3 水稻幼苗根長隨時間的變化(硒為5mg/L)

圖4 水稻稻幼苗莖長隨時間的變化(硒為5mg/L)
由以上4張圖可以看出,水稻幼苗根生物量隨時間而增大。高濃度Cd較低濃度Cd對水稻的毒害更加明顯。
此外,可以看出在低濃度Cd條件下,加Se組水稻幼苗長勢比較良好,高濃度Cd條件下,為現明顯區別。故推測,Se在低濃度Cd下,與其產生拮抗,抑制了Cd對水稻的毒害。而在高濃度Cd下,與其產生一定的協同作用,故并未顯著減小其對水稻幼苗的毒性。
第10d加入S,水稻幼苗的生長趨勢隨時間逐漸變好,無添加S組,水稻幼
苗根莖生物量也有增加,但增長趨勢較添加S組,漲幅不明顯。
見圖5對比高濃度,在低濃度鎘情況下,低濃度鎘對水稻幼苗葉綠素的抑制相對高濃度不明顯。對比同濃度鎘,在第十天加入S之后,水稻幼苗葉綠素含量高于未加S組。

圖5 水稻幼苗葉綠素含量隨時間的變化(b:Se為5mg/L)
由圖6可以看出,無添加S情況下,水稻對Cd的吸收速率相對較快,在第10d加入S之后,雖然Cd仍在水稻體內累積,但相對于未加入S組,Cd的累積速率明顯受到抑制,說明S的添加抑制的水稻對Cd的吸收,從而達到緩解Cd毒害的作用。

圖6 水稻幼苗Cd含量隨時間的變化(a:根部,Se為5mg/L;b:莖部,Se為5 mg/L)
此外,可以看出,水稻幼苗莖和根部鎘累積隨時間均在增加,并且Cd在根部的累積量以及累積速率均高于莖部,高濃度鎘在水稻體內的含量明顯高于低濃度鎘在水稻體內的累積。對比10d加入S和無添加S組,可以看出在加入S后,水稻體內對Cd的吸收速率降低,且累積量也有所下降。證明S的添加減緩了水稻吸收Cd的速率。
對比圖7可以看出,高濃度Cd對金屬硫蛋白的誘導量高于低濃度Cd,并且對照組的金屬硫蛋白隨時間并未發生顯著變化,由此推斷只有在Cd存在時,金屬硫蛋白才可能被誘導。
添加S組水稻體內合成的金屬硫蛋白含量高于無S添加組,證明S的存在為水稻體內合成金屬硫蛋白提供了原料。此外,由于在無S情況下,MT也能夠被誘導產生,因此推測,Se的存在在一定程度上也能夠替代S產生MT。其可能的主要機制為,Se的存在誘導產生金屬硫蛋白,Se成為MT中心,即Se代金屬硫蛋白。
相較于低濃度Cd,高濃度Cd對水稻的毒害更加明顯,且高濃度Cd誘導產生更多的MT;相較于無Se組,添加Se,與低濃度Cd產生拮抗效應,抑制Cd的毒害,與高濃度Cd產生協同作用,相互促進水稻對二者的吸收,從而說明加硒未能抑制高濃度Cd的毒性;
第10d加入S,與無添加S組相比,對水稻的各項生理生化指標均有明顯的促進作用,且MT的含量也明顯增多。S的加入明顯抑制了水稻幼苗對Se、Cd的吸收,降低了Se與Cd在水稻幼苗體內的累積。MT在無S情況下也可產生,且添加Se組MT含量高于未添加Se組,推測水稻體內原始存在的S先被消耗合成MT,接著Se的供給在一定程度上代替S合成MT。