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miR-516b-5p靶向ATM調控鼻咽癌細胞HONE1 DNA修復的機制研究

2021-04-27 11:59:14范崇盛
實用癌癥雜志 2021年4期
關鍵詞:水平

張 勇 張 煒 范崇盛

DNA雙鏈斷裂(DSB)是DNA損傷的最危險形式,因為無法修復它們可能導致細胞死亡,基因組不穩定或腫瘤發生[1]。真核細胞中有兩種主要的DSB修復途徑,即非同源末端連接(NHEJ)和同源重組(HR)[2]。DSB還激活了1個復雜的信號網絡,稱為DNA損傷響應(DDR),它協調DSB的修復和細胞周期檢查點的激活[3]。腫瘤是1種具有無限增殖能力的細胞組織[4]。DNA損傷及其修復機制是導致腫瘤形成的重要因素[5]。基于此,本研究使用鼻咽癌細胞HONE1為研究對象,旨在探討鼻咽癌細胞HONE1中抑制DNA修復的潛在機制。

1 材料與方法

1.1 材料

pBABE-dd-I-PpoI購自addgene公司(貨號:49052)。他莫昔芬購自sigma公司(貨號:T5648-1G)。pDNA-PKcs抗體購自abcam公司(貨號:ab32566)。GAPDH抗體購自上海機純實業有限公司(貨號:ml4041550(s))。ATM抗體購自廣州市左克生物科技發展有限公司(貨號:BF0374-100ul)。鼻咽癌細胞HONE1購自廣州一駿生物制品有限公司(貨號:JNO-1861-2)。miRNA mimics,miRNA inhibitor,siRNA和ATM過表達質粒均由上海權陽生物提供。Etoposide(ETP)購自深圳市益百順科技有限公司(貨號:Etoposide)。Shield-1購自上海皓元生物醫藥科技有限公司(貨號:HY-112210)。熒光素酶報告質粒pEZX-MT01購自復能基因(貨號:CmiT000001-MT05)。

1.2 方法

1.2.1 細胞培養與轉染 鼻咽癌細胞HONE1在含有10%胎牛血清的DMEM中培養細胞。miRNA mimics,miRNA inhibitor,siRNA和ATM過表達質粒與轉染試劑混合,在室溫下靜止20 min后,緩緩滴入鼻咽癌細胞HONE1中。使用500 nM Etp,處理鼻咽癌細胞HONE1 48 h。

1.2.2 免疫印跡 用PBS洗滌一次后,將細胞重懸于預冷的RIPA緩沖液(50 mM Tris-HCl,pH 7.4、1 mM EDTA,0.5 mM EGTA,1%Triton-X-100、0.1%萘二酚,0.1%SDS,150 mM NaCl,蛋白酶抑制劑(完全不含Mini EDTA,#4,693,159,001,Roche)和磷酸酶抑制劑,然后超聲處理,以14,000 rpm的轉速在4離心10 min除去細胞碎片收集上清液,并通過Bradford蛋白質測定法定量蛋白質濃度,將等量的蛋白質上樣至SDS-PAGE或Criterion 4%~12%預制凝膠上。電泳時,將蛋白質在4 ℃下轉移到硝酸纖維素膜上90 min,然后在室溫下將膜與5%脫脂牛奶孵育1 h,然后在4倍于稀釋的一抗4 ℃孵育過夜,然后在5%脫脂牛奶中與二抗一起孵育室溫下放置1 h。使用蛋白質簡單分析儀,使用增強的化學發光(ECL)Western印跡底物進行檢測。

1.2.3 RNA抽取與實時熒光定量PCR 用于檢測DNA水平的引物序列如下:(SLCO5a1-F-cut:CCCAGTGCTCTGAATGTCAA; SLCO5a1-R-cut:CCATTCATGCGCGTCACTA)。使用GAPDH(GAPDH-F:TCAGCCAGTCCCAGCCCAAG;GAPDH-R:GAGAAAGTAGGGCCCGGCTAC)引物對將DNA水平標準化為實時PCR值。

1.2.4 高通量測序 通過trizol法抽取ETP誘導DNA損傷后的鼻咽癌細胞HONE1總RNA。RNA樣品被送到北京基因組研究所進行商業性RNA-Seq服務和數據分析。使用SOAPaligner/SOAP2不匹配,將明確的讀段映射到human數據庫。計算每個基因讀數,然后將其標準化為每百萬分之一讀數(kbKM),該讀數與基因表達水平相關。利用log2比率來確定基因調控。選擇log2比率為-1或log2比率為1的學差異基因進行進一步分析。

1.2.5 基于I-PpoI的可誘導DSB系統 將pBABE-dd-I-PpoI質粒轉染至鼻咽癌細胞HONE1中,使用嘌呤霉素篩選穩定細胞株。為了進行DNA切割和修復分析,將Shield-1的以終濃度1 mM添加到細胞中3 h,以穩定dd-I-PpoI,然后再與4 mM 4-OHT一起孵育30 min。 處理后,將藥物在PBS中沖洗掉,以便隨時間推移進行DNA修復。通過實時PCR進一步定量I-PpoI位點的DNA水平。通過實時PCR分析富集的染色質。引物序列(SLCO5a1F-F:GCATGAATGGATGAACGAGAT;用于實時PCR的SLCO5a1R-F:CAAGCTCAACAGGGTCTTCT)位于200 b.p.的5'上游區域的兩側、切割部位的遠端。斷裂期間的實時PCR分析用于測量I-PpoI位點的完整性,并將每個樣品中的值均以GAPDH標準化。繪制3個獨立實驗的平均值和SEM。將非同源末端連接因子占用率和每個時間點的輸入值歸一化為GAPDH。所有數據均以未處理樣品的值標準化為1。

1.2.6 熒光素酶報告實驗 熒光素酶報告質粒pEZX-MT01包含AMT的野生型或突變型3'UTR。使用熒光素酶報告基因系統分析熒光素酶活性前,將miRNA mimic或陰性對照(NC)和熒光素酶報告基因共轉染至鼻咽癌細胞HONE1(1×104)48 h。

1.3 統計學分析

每個實驗至少重復3次,結果顯示為平均值±標準差(SD)。使用SPSS 19.0進行統計分析。進行雙尾t檢驗以比較組之間的差異。P<0.05表示差異顯著。

2 結果

2.1 ETP誘導鼻咽癌細胞HONE1 DNA損傷的miRNA表達譜

使用ETP處理鼻咽癌細胞HONE1造成DNA損傷后,通過高通量測序發現ETP處理后hsa-miR-9983-3p,hsa-miR-4731-5p,hsa-miR-3675-5p,hsa-miR-516b-5p,hsa-miR-4437,hsa-miR-7114-5p,hsa-miR-637,hsa-miR-5008-5p的表達水平上升至少8倍。

2.2 miR-516b-5p導致DSB的DNA-PKcs含量減少

可誘導的I-PpoI核酸內切酶系統可在人類基因組中的已知位置切割[6]。他莫昔芬處理并加入Shield-1使鼻咽癌細胞HONE1中的酶穩定,從而誘導了與ER核定位序列融合的I-PpoI核酸內切酶的核定位[7]。通過洗掉他莫昔芬和Shield-1使I-PpoI不穩定并輸出到細胞質中,從而使修復得以實現[8]。使用此系統對人類SLCO5A基因中I-PpoI位點的定量PCR分析后發現miR-516b-5p mimics導致DSB的DNA-PKcs含量減少(P<0.05),而miR-516b-5p inhibitor導致DSB的DNA-PKcs含量增加(P<0.05),見圖1A和圖1B。

圖1 miR-516b-5p導致DSB的DNA-PKcs含量減少

2.3 miR-516b-5p靶向ATM抑制DNA-PKcs磷酸化水平

通過miRDB在線分析發現miR-516b-5p潛在靶向多種基因。在鼻咽癌細胞HONE1中過表達miR-516b-5p后,發現ATM mRNA的表達水平和蛋白表達水平下降,DNA-PKcs的磷酸化水平下降;而敲低表達miR-516b-5p后,發現ATM mRNA的表達水平和蛋白表達水平上升,DNA-PKcs的磷酸化水平上升。同時,miR-516b-5p靶向ATM的3端非編碼區報告基因活性下降。過表達ATM后,DSB的DNA-PKcs含量上升(P<0.05),而敲低ATM后,DSB的DNA-PKcs含量下降(P<0.05),見圖2。

圖2 miR-516b-5p靶向ATM抑制DNA-PKcs磷酸化水平

3 討論

DNA的完整性對于維持基因組的穩定性至關重要,而這對于所有生物的生存和正常運行至關重要[9]。使用DNA作為基于堿基配對的DNA復制的模板是1個嚴格而精確的事件[10]。但是,DNA容易受到多種因素造成的破壞,例如來自環境或體內的化學致癌物,正常代謝產生的氧化性自由基,端粒縮短,端粒酶活性變化,原癌基因激活,腫瘤抑制基因失活,紫外線(UV)輻射和電離輻射以及許多藥品,尤其是遺傳毒性抗癌藥[11]。自發性損害和環境損害均可導致DNA分子的損壞,包括DNA雙鏈斷裂(DSB)[12-13]。

在正常細胞中,大多數DNA損傷可以通過觸發眾多復雜而精確的調節機制來修復,包括激活細胞周期檢查點,啟動修復系統以及誘導細胞凋亡[14]。腫瘤是1種具有無限增殖能力的細胞組織,DNA損傷及其修復機制是導致腫瘤形成的重要因素[15]。在癌前病變中,經常會檢測到由損傷激活的DNA損傷和DNA損傷修復途徑,其中包括ATM,Chk1,Chk2,H2AX,p53和p16等檢查點激酶的激活以及DNA標記灶的形成[16]。本研究通過ETP誘導HONE1細胞發生DNA損傷后,發現hsa-miR-9983-3p,hsa-miR-4731-5p,hsa-miR-3675-5p,hsa-miR-516b-5p,hsa-miR-4437,hsa-miR-7114-5p,hsa-miR-637,hsa-miR-5008-5p的表達水平上升至少8倍。盡管僅僅檢測到hsa-miR-516b-5p能夠抑制DSB中DNA-PKcs的含量,但是其他miRNA是否參與DSB修復的其他功能仍然值得進一步探索。

在本研究中,過表達miR-516b-5p后,ATM mRNA的表達水平和蛋白表達水平下降,DNA-PKcs的磷酸化水平下降;而敲低表達miR-516b-5p后,ATM mRNA的表達水平和蛋白表達水平上升,DNA-PKcs的磷酸化水平上升。過表達ATM后,DSB的DNA-PKcs含量上升(P<0.05),而敲低ATM后,DSB的DNA-PKcs含量下降(P<0.05)。ATM和DNA-PKcs是磷酸肌醇3激酶樣(PIKKs)絲氨酸/蘇氨酸激酶[17]。DNA-PKcs和ATM在響應DNA DSB和協調DSB修復的早期就被激活[18]。DNA-PKcs被Ku70和Ku80異二聚體募集并在DSB處激活[19]。 Mre11-Rad50-Nbs1(MRN)復合體在DSB募集并激活了ATM[20]。激活后,ATM在細胞周期的G1期促進NHEJ,而在S/G2促進HR[21]。相反,DNA-PKcs主要在NHEJ的DSB修復中起作用[22]。ATM介導的DNA-PKcs磷酸化,從DNA末端取代了DNA-PKcs,而DNA-PKcs介導的ATM磷酸化抑制了ATM的催化活性[23]。提示ATM和DNA-PKcs能夠被募集到相同的DNA末端,它們在彼此之間進行調節。

綜上所述,miR-516b-5p通過靶向ATM mRNA的3端非編碼區,降解了ATM mRNA,抑制了ATM的翻譯,隨后DNA-PKcs的磷酸化水平下降,DNA-PKcs與DSB的結合減少,最終抑制了鼻咽癌細胞HONE1的DNA修復。

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