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溫陽化濁方對阿霉素腎病大鼠保護作用及TRPC6表達的影響

2021-10-09 07:03:32李星瑤趙延紅蔡子墨葉冰玉安鵬張愛軍石興民董盛吳喜利
中醫藥學報 2021年9期
關鍵詞:劑量模型

李星瑤,趙延紅,蔡子墨,葉冰玉,安鵬,張愛軍,石興民,董盛,吳喜利*

(1.西安交通大學第二附屬醫院,陜西 西安 710004;2.陜西省中西醫結合醫院,陜西 西安 710082;3.西安交通大學醫學部,陜西 西安 710061;4.陜西中醫藥大學附屬醫院,陜西 咸陽 712023)

1 材料

1.1 動物

60只SPF級雄性SD大鼠,體質量(200±20)g,飼養溫度保持在25 ℃,相對濕度為40%~60%,每天人工照明12 h。由西安交通大學醫學部實驗動物中心提供,許可證號:SCXK(陜)2012-003,所有操作均通過西安交通大學動物倫理委員會批準。

1.2 藥物及試劑

復方由黑附片15 g(先煎),生黃芪15 g,山萸肉15 g,金櫻子45 g,芡實30 g,生大黃10 g(后下),澤蘭15 g,川芎15 g,桂枝25 g,茯苓15 g,車前子20 g(包煎)等組成。經煎煮、減壓、過濾、濃縮得復方溶液,相當于生藥濃度1.55 g/mL,實驗時配制為高、中、低3種劑量溶液。注射用鹽酸多柔比星(阿霉素),海正輝瑞制藥有限公司(H33021980);醋酸潑尼松片,浙江仙琚制藥股份有限公司(071 088);蛋白抽提試劑盒,碧云天生物技術研究所(P0033);兔抗TRPC6 IgG單克隆抗體,美國Abcam公司(ab137028);小鼠抗β-Actin單克隆抗體,美國CMCTAG公司(AT0001);HRP標記山羊抗兔IgG二抗,西安壯志生物科技有限公司(P48010)。SP法免疫組化染色法檢測試劑盒,北京中杉金橋有限公司(SP-9000)。

1.3 儀器

TCS SP8激光共聚焦顯微鏡(德國Lecia公司);Ti-E全自動熒光倒置顯微鏡(日本Nikon Eclipse);G:Box凝膠成像系統(英國Syngene公司);Revco Elite超低溫冰箱(美國Thermo公司);5810R冷凍型臺式大容量高速離心機(德國Eppendorf公司);蛋白電泳儀(美國Bio-Rad公司);半干轉移槽(美國Bio-Rad公司)。

2 方法

2.1 分組及模型的制備

60只健康雄性SD大鼠隨機分為6組(對照組、模型組、潑尼松組、溫陽化濁方高劑量組、溫陽化濁方中劑量組、溫陽化濁方低劑量組),每組10只,除對照組外,其余各組大鼠均按CHEN Z B[7]法經尾靜脈分兩次注射阿霉素進行造模,第一次經尾靜脈注射阿霉素4 mg/kg,1周后第二次經尾靜脈注射阿霉素3.5 mg/kg,對照組采用相同方法注射同體積的生理鹽水。于第二次注射阿霉素1周后收集尿液,若檢測出尿蛋白陽性,則模型制備成功。

2.2 給藥

造模成功后,治療組分別給予潑尼松組6.45 mg/(kg·d),溫陽化濁方高劑量組7.26 g/(kg·d)、中劑量組2.42 g/(kg·d)、低劑量組0.81 g/(kg·d),用蒸餾水配成混懸液進行灌胃,灌胃按照動物和人的等效計量換算灌胃量,模型組和對照組給予2 mL蒸餾水灌胃,每日1次,連續灌胃56 d。

2.3 一般情況觀察

觀察實驗大鼠精神狀態、活動度、體質量、尿量、背毛色澤等。

2.4 尿液指標及甲狀腺功能檢測

分別于尾靜脈注射阿霉素前1 天、第2次尾靜脈注射阿霉素后第1周、灌胃干預后的第2、4、8周將各組大鼠放入代謝籠,收集24 h尿液,20 ℃,3 000 r/min,離心15 min,吸取上清液,采用鄰苯三酚紅比色法測定尿液24 h尿蛋白定量。實驗結束時給予3%戊巴比妥麻醉,分離血清,放射免疫分析法檢測樣品中促甲狀腺激素(TSH)、三碘甲腺原氨酸(T3)、四碘甲腺原氨酸(T4)。

2.5 腎臟病理指標

左腎分離被膜后分成2份,-80 ℃保存。取腎皮質切成小塊后分別置于4%多聚甲醛固定,備用。腎組織進行HE染色,光學顯微鏡下觀察并拍照。

2.6 激光共聚焦顯微鏡檢測腎組織TRPC6蛋白表達

將腎組織冰凍切片后浸于丙酮固定,山羊血清封閉,加一抗孵育4 ℃過夜,次日加二抗室溫孵育1 h,PBS清洗后DAPI染色,加熒光淬滅劑封片,在激光共聚焦顯微鏡下觀察,TRPC6的陽性染色分布。

2.7 免疫組化法檢測腎組織TRPC6蛋白表達

石蠟切片脫蠟水化,微波修復抗原,采用SP法免疫組化試劑盒,TRPC6(1∶300稀釋)孵育,4 ℃過夜,二抗室溫孵育30 min,DAB顯色10 min,鏡下觀察后蘇木素復染核10 min,所有步驟均參照說明書進行操作。在每張切片中隨機選擇20個連續不重復視野(×400)進行觀察,拍照。

2.8 Western Blot法檢測腎組織TRPC6的表達

稱取200 mg腎組織,加RIPA組織裂解液,勻漿3次,冰上裂解30 min后4 ℃,12 000 r/min,離心15 min,取上清液。10 000 r/min離心5 min得蛋白提取液,BCA法測定蛋白濃度。取40 μg蛋白,以SDS-PAGE電泳法分離蛋白,轉膜、封閉、孵育一抗TRPC6(1∶10 000)、HRP標記的二抗(1∶5 000)孵育2 h后洗膜,顯色、拍照,統計分析。

2.9 統計學分析

3 結果

3.1 一般情況

注射阿霉素后第1周除對照組外,其余各組大鼠精神稍差,食欲可,活動及大小便均尚可。在第2次注射阿霉素后約3 d大鼠逐漸出現精神和食欲明顯變差,并有脫毛及腹瀉表現,約第5天時部分大鼠出現口鼻有血性分泌物及爛尾現象。溫陽化濁方高、中、低劑量組及潑尼松組于灌胃后第4周開始,大鼠體質量明顯增加,精神及食欲狀況不同程度好轉,但開始出現較為明顯的水腫;模型組大鼠一般情況無明顯改善且水腫程度相對其余各組較重。

3.2 對ADR腎病大鼠24 h尿蛋白定量的影響

與對照組比較,其余各組經造模處理后第2、4、8周24 h尿蛋白量均有不同程度升高;造模后2周,與模型組比較,各治療組的大鼠24 h尿蛋白定量變化顯著(P<0.05);造模后4周時,與模型組比較,各治療組大鼠24 h尿蛋白定量明顯降低(P<0.05);經藥物治療8周后,與模型組比較,各治療組大鼠24 h尿蛋白定量明顯降低(P<0.05),提示各治療組均有降低尿蛋白作用,且溫陽化濁方高劑量組與潑尼松組相比較有統計學意義(P<0.05),提示高劑量溫陽化濁方降蛋白效果更好,見表1。

表1 各組對ADR腎病大鼠24 h尿蛋白定量的影響

3.3 對ADR腎病大鼠血清甲狀腺激素水平的影響

與對照組比較,模型組大鼠血清中TSH、T3水平顯著升高,T4水平降低(P<0.05);與模型組比較,各治療組大鼠血清T4水平明顯升高,而T3及TSH水平明顯降低(P<0.05);溫陽化濁方高、中、低劑量組對血清T4水平的影響有統計學意義(P<0.05);溫陽化濁方高劑量對TSH水平的影響有統計學意義(P<0.05)。綜合3項血清水平,提示溫陽化濁方改善甲狀腺功能的效果優于激素,見表2。

表2 各組對大鼠血清甲狀腺激素水平的影響

3.4 對ADR腎病大鼠腎組織病理學的影響

HE染色結果顯示,對照組大鼠腎小球結構正常,基底膜完整,系膜及基質未見增生,腎小管間質正常,皮髓質分界清晰(圖1A,圖2A)。模型組可見系膜細胞及基質輕度增生,毛細血管內皮細胞空泡變性,管腔變窄并有瘀血,腎小管上皮細胞腫脹、脫落,管腔內存在大量蛋白管型,腎間質可見炎性細胞浸潤,少部分腎小球出現球囊壁纖維化及毛細血管襻節段性硬化(圖1B,圖2B);各治療組球囊腔變窄減輕,蛋白管型明顯減少,且溫陽化濁方高、中劑量組腎臟整體病理損傷輕于潑尼松組及溫陽化濁方低劑量組(圖1WM、圖1WH、圖2WM、圖2WH)。

3.5 對ADR腎病大鼠腎臟組織TRPC6蛋白水平的影響

免疫組化法染色結果顯示,對照組TRPC6蛋白在腎小球和腎小管均有表達,在腎小球中分布不均,染色強度較弱,面積較少,呈團塊狀或僅有顆粒狀分布;在腎小管近曲及遠曲小管上皮細胞中有棕黃色的陽性染色顆粒(圖3A、圖4A)。與對照組比較,模型組腎小球及腎小管中TRPC6染色強度增加(圖3B、圖4B);與模型組比較,各治療組腎小球及腎小管中TRPC6表達呈不同程度減少(圖3WL、圖3WM、圖3WH、圖4WL、圖4WM、圖4WH)。

激光共聚焦熒光顯微鏡檢測TRPC6蛋白,對照組大鼠腎臟TRPC6表達微弱(圖5A),在模型組中,TRPC6表達最強,分布最廣(圖5B);溫陽化濁方低、中、高劑量組以及潑尼松組干預后TRPC6熒光強度明顯減弱,分布區域也相對減少,但其組間無明顯差異性(圖5C、圖5WL、圖5WM、圖5WH)。

注:A.對照組;B.模型組;C.潑尼松組;WL.溫陽化濁方低劑量組;WM.溫陽化濁方中劑量組;WH.溫陽化濁方高劑量組。圖1 各組對ADR腎病大鼠腎小球病理學的影響(HE染色)

注:A.對照組;B.模型組;C.潑尼松組;WL.溫陽化濁方低劑量組;WM.溫陽化濁方中劑量組;WH.溫陽化濁方高劑量組。圖2 各組對ADR腎病大鼠腎小管病理學的影響(HE染色)

注:A.對照組;B.模型組;C.潑尼松組;WL.溫陽化濁方低劑量組;WM.溫陽化濁方中劑量組;WH.溫陽化濁方高劑量組。圖3 各組對大鼠腎小球中TRPC6蛋白表達的影響(Masson染色)

注:A.對照組;B.模型組;C.潑尼松組;WL.溫陽化濁方低劑量組;WM.溫陽化濁方中劑量組;WH.溫陽化濁方高劑量組。圖4 各組對大鼠腎小管中TRPC6蛋白水平的影響(Masson染色)

注:A.對照組;B.模型組;C.潑尼松組;WL.溫陽化濁方低劑量組;WM.溫陽化濁方中劑量組;WH.溫陽化濁方高劑量組。圖5 激光共聚焦檢測各組對大鼠TRPC6 的表達情況

Western Blot法檢測各組大鼠腎組織中TRPC6蛋白的表達。與模型組比較,各治療組均能不同程度的下調大鼠腎組織TRPC6蛋白的表達(P<0.01)(表3,圖6)。

表3 溫陽化濁方對大鼠腎組織TRPC6蛋白水平的影響

注:A.對照組;B.模型組;C.潑尼松組;WL.溫陽化濁方低劑量組;WM.溫陽化濁方中劑量組;WH.溫陽化濁方高劑量組。與對照組比較,**P<0.01;與模型組比較,#P<0.01,##P<0.01。圖6 Western Blot檢測TRPC6蛋白表達情況

4 討論

溫陽化濁方是在陜西省名老中醫喬成林教授“治水必先溫通”的學術理論指導下創立的治療腎性蛋白尿的臨床有效方劑[8]。該方由黑附片、生黃芪、山萸肉、金櫻子、芡實、生大黃、澤蘭、川芎、桂枝、茯苓、車前子等藥物組成。現代藥理研究認為,附子具有抗炎、增強免疫、擴張外周血管、保護腎功能的作用[9-10];大黃能夠抑制腎單位高代謝,延緩腎小球硬化,抑制系膜細胞增生[11],還可改善腎衰患者的高凝狀態,減少蛋白尿[12];黃芪可改善全身血流,以及調節蛋白質和脂質代謝[13-14];山茱萸雙向調節免疫,促進巨噬細胞發揮吞噬功能[15];澤蘭具有抗凝血、調節血脂代謝、升高血清總蛋白和白蛋白的作用[16];川芎可改善患者高凝狀態,具有一定抗炎作用[17]。

TRPC6屬于一種壓力激活的機械敏感性鈣離子通道,其可產生由機械和滲透作用而誘導的膜牽張反應,在壓力的誘導下TRPC6的活化不依賴于磷脂酶C,TRPC突變可以改變靜水壓驅動的超濾作用,從而引起蛋白尿和腎小球硬化[18-19],并且其開放可觸發感受器細胞胞內Ca2+濃度升高以及胞膜的去極化,繼而促進動作電位發出,激活胞內信號轉導機制,對細胞生理功能進行調控[20]。本研究顯示溫陽化濁方可明顯減少尿蛋白、改善甲狀腺功能及減輕腎臟病理損害。同時中藥各治療組均能不同程度下調腎臟組織TRPC6蛋白的表達,提示這可能是溫陽化濁方防治腎病的作用機制之一。但由于TRPC6信號通路相當復雜,還需進行更深層次的探討,而對于臨床治療NS,使用抑制TRPC6表達或降低其活性的藥物可能是未來一個理想的治療方案。

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